Gepaart Nanoinjection und Elektrophysiologie-Test zum Screening auf Bioaktivität der Verbindungen unter Verwendung des Drosophila melanogaster Riesen-Fiber System

1. Elektrophysiologie Rig Set-up

1. Die erforderliche Ausrüstung für die Elektrophysiologie Rig Set-up wird im Detail von Augustin et al. in diesem Journal ^14. Bitte beachten Sie in diesem Artikel für eine detaillierte Erklärung der elektrophysiologischen Geräte benötigt.
2. Ändern Sie den zuvor beschriebenen Elektrophysiologie Rig Set-up ¹⁴ durch das Hinzufügen eines sechsten Mikromanipulator, der die nanoinjector hält. Für einen einfachen Zugriff auf den Kopf des Tieres sie zwischen den beiden Stimulationselektrode Mikromanipulatoren platziert werden soll, wie in 2 gezeigt.
3. Vor dem Versuch, sicherzustellen, dass Sie einen komfortablen Bereich auf allen Drehachsen mit allen Mikromanipulatoren haben, und dass alle Elektroden sowie die Injektion Mikropipette (siehe Schritt 2) kann das Tier zu erreichen.

2. Nanoinjection Set-up

1. Die nanoinjection Set-up erfordert ein Nanoliter2000 (World Präzisiauf Instruments, Sarasota, FL, USA) oder eine ähnliche Art von Injektor, der kontrollierte Injektionen können in Nanolitermengen.
2. Planen Injektionsnadel mit den Glas-Mikropipetten mit dem Injektor, indem man sie auf einen Widerstand von 80-100 MOhm mit einer Elektrode Abzieher zugeführt.
3. Für einen reibungslosen Injektionen ist es erforderlich, die Fase Mikropipetten zu einer Öffnung am 17.11 um einem 45 Grad Winkel (Abbildung 3).
4. Langsam verfüllen die Injektion Mikropipette mit synthetischem Öl mit einer Hamilton-Spritze, wie durch die manuelle Nanoliter2000 angewiesen, sicherzustellen, dass keine Luftblasen vorhanden sind.
5. Sorgfältig sichern die Mikropipette auf dem nanoinjector und bereiten Sie es, die Verbindung durch das Entleeren überschüssiges Öl als durch die manuelle Nanoliter2000 angewiesen zu laden.
6. Setzen Sie den Injektor auf dem Mikromanipulator und laden Sie die Verbindung wie in der Anleitung beschrieben Nanoliter2000. Stellen Sie sicher, dass die Spitze der Mikropipette nicht während dieser brechenVerfahren.
7. Die gewünschte Menge von in Nanoliter des Injektors Steuergerät injiziert werden, durch die Nanoliter2000 Handbuch beschrieben. Bitte beachten Sie, dass der Gesamtbetrag injizierten sollte nicht mehr als 100 nl. Wir fanden, dass größere Mengen an Kochsalz-Control-Lösungen kann die Funktion des GFS-Schaltung auswirken.
8. Es ist wichtig, damit der Injektor von der Steuereinheit während der Aufnahme Übernahme unplugged mit Ausnahme der Injektion selbst, da die Stromversorgung des nanoinjector stört die Aufnahmen, die sichtbar als Hintergrundrauschen (4) ist. Jedoch nicht die Stromversorgung unterbrechen, um die Steuereinheit wie es neu eingestellt wird.

3. Drosophila melanogaster Vorbereitung

1. Anesthetize 2 bis 6 Tage alten Fliegen mit CO ₂ oder auf Eis, wie vorher beschrieben ^14,15.
2. Sobald unbeweglich, verwenden Sie eine Pinzette, um das Tier zu einer kleinen Platte übertragen with weichen Dentalwachs, indem man es von seinen Beinen. Bitte beachten Sie, dass ein männlicher Fruchtfliegen etwa 1,0 mg wiegt und eine weibliche Fruchtfliege wiegt etwa 1,2 mg, also Verbindung-zu-Körpergewicht-Verhältnis ist anders im Vergleich zu männlichen weibliche Fliegen. Daher ist es empfehlenswert, nur ein Geschlecht für die Experimente verwendet.
3. Wie bereits beschrieben, ^14,15, vorsichtig montieren die Fliege Rückenseite nach oben und sicherzustellen, dass der Brustkorb und Kopf mit weichen Dentalwachs um den Körper gelegt werden immobilisiert. Sorgfältig breitete die Flügel aus, so dass sie senkrecht zu legen, um den Thorax (Abb. 2, C). Die Fliege sollte mit so wenig Schaden wie möglich montiert werden.

4. Gepaart Nanoinjection / Elektrophysiologie

1. Stellen Sie das montierte Fliege an der Elektrophysiologie Rigg mit seinem Kopf in Richtung der stimulierenden Elektroden.
2. Aufspießen, das Tier mit dem entsprechenden anregende, Boden-und Aufzeichnungs-Elektroden wie zuvor ^14,15 (F beschriebenbbildung 2, C). Wenn nicht anders gewünscht, erfolgt eine Aufnahme Elektrode in die DLM und die andere in die TTM Muskel. Das DLM-Muskel im Brustkorb zwischen den vorderen Dorso-Central Haare und der Mittellinie des Fliege befindet. Die TTM Muskel wird in der Nähe der Flügel-Anhänge, zwischen den hinteren und vorderen Supra-Alar Haare der Fliege ^7.
3. Richten der Injektion Mikropipette, die die Verbindung mit dem Zentrum der drei Augenflecken auf der medialen hinteren Teil des Kopfes liegt, aber noch nicht zu injizieren (Abb. 2, C).
4. Vor der Verbindung Injektion erhalten eine Grundlinie Aufzeichnung des GF zu TTM und GF, Wege des Riesen Fiber System (GFS, Abbildung 1) über Hirnstimulation DLM. Dazu aktivieren Sie die Riesen-Fibers (GF) mit 10 Zügen von 10 Stimuli (40-50 mV) jeweils für eine Dauer von 0,03 ms bei 100 Hz gegeben mit einem 1-Sekunden-Verzögerung zwischen den Zügen ^14,15 (Abbildung 4). Wildtyp fliegt shOuld der Lage sein, eins-zu-eins in diesem Tempo folgen der Anregung sowohl für DLM und TTM Wege. Entsorgen Sie die Fliege, wenn der GF zu DLM und GF zu TTM Wege nicht folgen, die 100-Hz-Stimulation im Verhältnis 1:1.
5. Wechseln zu kontinuierliche Stimulation des GF mit einzelnen Pulsen bei 1 Hz (Abbildung 4).
6. Schnell stecken Sie den Injektor in das Steuergerät. Auch wenn Hintergrundgeräusche werden mit den 1-Hz-Stimulation Aufnahmen stören, nicht abbrechen.
7. Vorsichtig die Injektion Mikropipette in die Kopfkapsel der Fliege direkt unter der Kutikula und injiziert die gewünschte Menge der Verbindung in die Hämolymphe der Fliege, während die 1 Hz Stimulation (Abbildung 4). Aufgrund der offenen Kreislaufsystem der Fliege, wird das gesamte Nervensystem zu der Verbindung innerhalb weniger Sekunden belichtet werden. Obwohl ein bestimmter Injektionsstelle ist nicht kritisch für Verbindungen in die Hämolymphe liefern, finden wir in den Bereich der Augenflecken, die sich lokalisierend medialen am meisten dorsalen Seite des Kopfes Kapsel, eine geeignete Stellen, die für eine einfache Injektion, die eine schnelle und gleichmäßige Verteilung der Verbindung führt ermöglicht werden.
8. Unverzüglich entfernen Injektion Mikropipette aus der Injektionsstelle und ziehen Sie den Injektor aus dem Schaltkasten während der Fortsetzung des 1 Hz GF Stimulation bis zu 1 Min. nach der Injektion (Abb. 4).
9. Um subtilere Effekte von Verbindungen auf der GFS zeigen, betonen die Giant Fibers (GF) mit 10 Zügen von 10 Stimuli bei 100 Hz mit einer Verzögerung von 1 Sekunde zwischen den Zügen. Fortfahren, um die Funktion der GF Wege zu diesem Paradigma alle 5 Minuten bis zu 15 Minuten (4) zu testen. Allerdings sind kürzere Intervalle oder längere Überwachungszeiträume ebenfalls möglich.
10. Um zu testen, ob die Verbindung eine Wirkung an der neuromuskulären Endplatten (NMJ) der GFS hat, und möglicherweise verengen die Wirkungen der Verbindung, fahren Sie mit den Motoneuronen Richtungen aktivierenTLY von Brust-Stimulation. Dazu entfernen Sie die stimulierenden Elektroden aus den Augen und ersetzen Sie sie auf den vorderen Seiten des Thorax, um die motorischen Neuronen mit 10 von 10 Zügen Reize stimulieren bei 100 Hz.

Hinweis: Die Elektrophysiologie Spuren in dem Video gezeigt werden, sind nicht auf die Wirkungen von reinem Farbstoffinjektion entsprechen.

5. Repräsentative Ergebnisse

Wirkung eines Antagonisten am PSI zur Synapse des Riesen Fiber System DLM

Methyllycaconitine Citrat (MLA) ist ein nAChR-Antagonisten, die spezifisch für α7 nAChR-Subtypen ist. Die PSI zu Synapse in der GF-DLM Weg DLMn ist abhängig von der Dα7 nAChR-Subtyp für die ordnungsgemäße Funktion, während die genetische Entfernung von Dα7 nAChR-Subtyp hat keine Auswirkung auf die GF-Weg TTM ^5,6. Um die Spezifität und Sensitivität unserer Test zeigen wir, injiziert MLA in unterschiedlichen Konzentrationen (0, 0,02, 0,04, 0.08, injiziert 0,12 ng / mg, 46 nl) in den Kopf des Tieres (n = 10 pro Verbindung Behandlung, n = 15 für Kochsalzlösung Behandlung). Nur männlichen Fliegen (des Wildtyp-Genotyp Wildtyp 10E) verwendet wurden, und die Wirkung der Verbindung wurde für insgesamt 15 Minuten nach der Injektion überwacht.

Abbildung 5 zeigt den Unterschied zwischen Baseline-Aufnahmen vor der Injektion erhalten und diese nach der Injektion in Reaktion auf MLA und Kochsalzlösung Control-Lösung erhalten. Wir fanden, dass die Injektion von MLA resultierte in der Unfähigkeit der GF-DLM Weg zum Eins-zu-eins bei 100 Hz folgen durch Reize der GfS im Gehirn während der GF-TTM Weg unbeeinflusst blieb. (Abbildung 5, Top-und mittleren Spur, t-Test zwischen Kochsalzlösung bei den Kontrollen [0 ng / mg] und den verschiedenen Konzentrationen von MLA zu jedem Zeitpunkt durchgeführt werden, es sei denn die Daten sind nicht-parametrische [Normalität und gleiche Varianzen getestet], da wir sonst verwenden ein Mann-Whitney-Rangsummentest. * p <0,001). Jedoch eine Eins-zu-Eins-response des DLM wurde beobachtet, wenn die motorischen Neurone wurden direkt (Abbildung 5, untere Kurve) stimuliert, die belegen, dass die NMJ Funktion des DLM und TTM nicht durch MLA betroffen. MLA erschien auf seine maximale Wirkung 1 Minute nach der Injektion zu erreichen für 0,04, 0,08 und 0,12 ng / mg MLA injiziert, da keine weiteren signifikanten Veränderungen während der folgenden 15 Minuten der Testphase festgestellt wurden. Darüber hinaus erreicht die Verbindung eine maximale Wirkung bei 0,08 ng / mg seit stärkere Reaktionen wurden nicht mit der höheren Dosierung von 0,12 ng / mg beobachtet.

Abbildung 1. Der Riese Fiber System Diagram of the Giant Fiber System (GFS). The Giant Fibers (GFS, in rot dargestellt) elektrisch Synapse (Gap Junctions) sowie chemisch (cholinergen) auf eine periphere Synapsing Interneuron (PSI, in grün dargestellt) und die Tergo Trochanteral Muscle Neuron (TTMn, gelb dargestellt) ^5. Die PSIch DLMn (Dorsal Längsmuskulatur Neuron, in blau dargestellt) Verbindung ist abhängig von Dα7 nAChR-Subtyp ^6. Schließlich wird der neuromuskulären Synapse (NMJ) des TTMn und der DLMn auf dem Sprung (TTM, dargestellt in lila) und Flugmuskeln (DLM, dargestellt in lila) ist Glutamat.

Hinweis: Die GF zu PSI-Verbindung ist sowohl elektrische und chemische. In shakB Mutanten (die Gap Junctions fehlt), kann keine Antwort von der DLM bei der Stimulation des GF im Gehirn aufgenommen werden, zeigt, daß die chemische Komponente in Abwesenheit von elektrischen Verbindungen nicht ausreicht, um ein Aktionspotential in der hervorzurufen PSI ^5,16-18. Weil der GF zu PSI-Verbindung ist abhängig von Gap Junction zeigt diese Figur nur den Gap Junction an der Synapse der Einfachheit halber.

Abbildung 2.

Mikromanipulatoren set-up.

1. Eine modifizierte Set-up eines zuvor veröffentlichten Protokoll ¹⁴ wird verwendet, um die Injektion Mikromanipulator für gepaarte GFS-Aufnahmen mit gleichzeitiger nanoinjections passen. Die Zubereitung ist montiert Fliege mit dem Kopf der Fliege auf den Experimentator orientiert. Die Injektion Mikromanipulator (# 1) wird vor dem Experimentator zwischen den beiden Manipulatoren für die Wolfram-stimulierenden Elektroden (2 # und # 3) angeordnet ist. Die beiden Mikromanipulatoren für die Glas-Aufzeichnungselektroden (# 4 und # 5) auf der linken und rechten Seite angeordnet ist, jeweils. Der Mikromanipulator der Wolfram-Masseelektrode (# 6) angeordnet weitesten entweder auf der linken Seite (hier gezeigt) oder auf der rechten Seite in den Rücken.
2. Eine Nahaufnahme von der Spitze der Regelungen der verschiedenen Elektroden und Injektion Mikropipette.
3. Ein richtig montiert D. melanogaster aufgespießt mit Elektroden und Injektion Mikropipette bereit zur Injektion. Beachten Sie, dass der Körper des Tieresist mit seinen Brustkorb horizontal und mit den Flügeln montiert ausbreiten. Das Wachs wird fest um seinen Körper gewickelt zu verhindern, das Tier bewegt. Zusätzlich kann die Masseelektrode (Nr. 6, im Abdomen), die Glas Aufzeichnungselektroden (# 4 und # 5, des Thorax, durch dunkle Linien markiert), und die Stimulationselektroden (# 2 und # 3, einem für jedes Auge ) an ihrem Platz aufgespießt, wie zuvor ¹⁴ beschrieben. Die Injektion Mikropipette (# 1) ordnungsgemäß mit der Mitte der drei Ocellen (eingekreist) ausgerichtet ist. Angabe der Injektion Mikropipette sollte in diesem Bereich gespeichert.

Abbildung 3. Abgeschrägte Injektion Mikropipette. Ein Diagramm eines ordnungsgemäß abgeschrägt Mikropipette wird hier gezeigt. Die Elektrode Öffnung sollte in einem 45 Grad-Winkel abgeschrägt sein und eine Öffnung zwischen 11 und 17 um. Ein richtiges abgeschrägte Injektion Mikropipette ist von entscheidender Bedeutung für einen reibungslosen Injektion mit minimalem dAmage zur Fliege.

Abbildung 4. Allgemeine Systematik des nanoinjection / Elektrophysiologie-Protokoll. Eine repräsentative Darstellung des Gesamtkonzepts für die nanoinjection / Elektrophysiologie-Protokoll. Beginnen Sie mit dem Erhalt einer Grundlinie Aufnahme durch die Stimulierung der Riesen-Fibers (GF) bei 100 Hz mit 10 von 10 Zügen je Reize (nur ein Zug hier abgebildet). Vor der Injektion beginnen die 1-Hz-Stimulation eine Sekunde auseinander. Während der Injektion (während Injektor angeschlossen wird beim Control Box), werden Sie feststellen, erhebliche Geräuschkulisse, jedoch nicht beenden die Aufnahmen. Nach der Injektion (und Injektor wird vom Steuergerät unplugged), weiterhin die 1-Hz-Stimulation für etwa 1 Minute. Schließlich gehen Sie auf das GVS mit 10 Züge von 10 Stimuli Spannung bei 100 Hz und weiterhin die Funktion der GF Wege mit diesem Paradigma alle 5 Minuten bis zu 15 Minuten zu testen. Hinweis: Aufnahmen were manipuliert werden, um die allgemeine Systematik zu schaffen und repräsentieren nicht ein bestimmtes Ergebnis zu erhalten. Nicht maßstabsgetreu sind nicht alle Spuren gezeigt. Klicken Sie hier für ein größeres Bild .

Abbildung 5. Die Auswirkungen der MLA in der GFS.

1. Eine grafische Darstellung der Auswirkungen der α7 nAChR-Antagonist Methyllycaconitine Citrat (MLA) auf der GF-DLM Weg der Taufliege in verschiedenen Konzentrationen (0, 0,02, 0,04, 0,08, 0,12 ng / mg n = 10 pro Verbindung Behandlung. n = 15 für Kochsalzlösung Behandlung). Nur eine Minute nach der Injektion wurde eine deutliche und unmittelbare Wirkung mit 0,04 ng / mg MLA gesehen. Ein signifikanter Effekt wurde auch mit 0.8ng/mg und 0.12ng/mg von MLA bei 100Hz Stimulation der GfS gesehen. Wurde kein signifikanter Unterschied zwischen Kochsalzlösung bei den Kontrollen und 0,02 ng / mg MLA zur Kenntnis genommen. Außerdem, keine Veränderung in Effekt wurde nach 1 Minute nach der Injektion in der Zeit getestet (15 Minuten) zu sehen. Ein t-Test wurde zwischen Kochsalzkontrollen (0 ng / mg) und verschiedenen Konzentrationen von MLA zu jedem Zeitpunkt durchgeführt. SEM, * p <0,001 - Levels werden als Mittelwert + / berichtet.
2. Probe Spuren der DLM-Reaktionen bei 100 Hz Stimulation. Obere Kurve zeigt die Antworten der Muskel vor der Injektion zu MLA GF Stimulation im Gehirn. Beachten Sie, dass der Muskel in der Lage, auf jeden Reiz eins-zu-eins bei 100 Hz zu reagieren. Mittlere Spur zeigt die Antworten der DLM nach MLA Injektion (0,12 ng / mg). Beachten Sie, dass der Muskel nicht in der Lage ist auf jeden Reiz eins-zu-eins bei 100 Hz zu reagieren. (Sternchen). Untere Spur zeigt die Antworten der DLM aus dem gleichen Präparat (0,12 ng / mg) auf direkte Stimulation der motorischen Neuronen im Thorax. Da DLM reagiert eins-zu-eins bei 100 Hz mit thorakalen Stimulation, kann der Ausfall der Antworten mit Gehirn Stimulationen an das cholinerge PSI-Verbindung zugeschrieben werden DLMn.
3. Eine grafische Darstellung der Auswirkungen mit verschiedenen MLA Konzentrationen (0, 0,02, 0,04, 0,08, 0,12 ng / mg) auf dem GF-TTM Weg. Keine signifikanten Effekte wurden zwischen Saline (0 ng / mg) und Verbindung Injektionen jederzeit Punkt gesehen. Ein t-Test wurde zwischen Kochsalzlösung bei den Kontrollen (0 ng / mg) und den verschiedenen Konzentrationen von MLA zu jedem Zeitpunkt durchgeführt, * p <0,001.
4. Probe Spuren der TTM Reaktionen bei 100 Hz Stimulation. Obere Kurve zeigt die Antworten der Muskel vor der Injektion zu MLA GF Aktivierung mit Stimulation des Gehirns. Beachten Sie, dass der Muskel in der Lage, auf alle Reize reagieren bei 100 Hz liegt. Mittlere Spur zeigt die Antworten der DLM nach MLA Injektion (0,12 ng / mg). Antworten von der TTM Muskel auf die Stimulation des GF im Gehirn verbleiben eins-zu-eins. Untere Spur zeigt die Antworten der TTM der gleichen Vorbereitung bis 100 Hz Stimulation der motorischen Neuronen im Thorax (0,12 ng / mg).

Die nanoinjection / Elektrophysiologie Bioassay hier vorgestellten ermöglicht eine schnelle Screening von Verbindungen im Nervensystem der Fruchtfliege. Dies ist ein neues in vivo-Technik, die kleine Mengen einer Verbindung benötigt, um einen Effekt auf einer Vielzahl von molekularen Zielstrukturen in einer gut charakterisierten neuronalen Schaltung auszulösen. Dieses Verfahren kann verwendet werden, um die Bioaktivität von verschiedenen Verbindungen zu testen, von unbekannten Toxine im Handel erhältlich pharmakologische Mittel.

Hier haben wir gezeigt, die Funktion unseres Assay mit MLA, die einen Einfluss auf die Riesen-Fiber System (GFS) der Fruchtfliege (Abbildung 5) hatten. Wir fanden, dass es selektiv gestört GF zu den DLM-Weg, aber nicht die GF zu TTM Weg. Aktivierung der motorischen Neuronen direkt über Brust-Stimulation gezeigt, dass der Defekt in der GF zu DLM-Weg war nicht wegen einer Funktionsstörung an der neuromuskulären Synapse (NMJ), aber es war konsistent mit dem antagonistischen effektivt von MLA an den Dα7 nAChR-Subtypen präsentieren auf der PSI-DLMn Synapse (Abbildung 1). Obwohl die GF TTMn Verbindung wurde gezeigt, dass cholinerge, ist unbekannt, ob Dα7 nAChR-Untereinheiten, die an dieser Synapsen sind. Ferner, die genetische Abwesenheit des Cholinacetyltransferase (Cha)-Gens oder des Dα7 nAChR-Subtyp (Dα7)-Gen stört die Funktion des GF-TTMn Verbindung aufgrund der gleichzeitigen Gegenwart eines elektrischen Verbindung ^{5,6,17,19, 20,} mit dem sich der Weg kaum von MLA beeinflusst werden.

Nach Verbindung der Injektion sollte die Lösung sofort Tauchen Sie das gesamte Nervensystem des Tieres aufgrund seiner offenen Kreislaufsystem ^21. Wenn sie richtig injiziert, die Verbindung in der Regel erreicht die Thorax und Abdomen innerhalb von Sekunden, sondern eine homogene Dispersion kann bis zu einer Minute. Wenn jedoch die Verbindung nicht richtig in der Hämolymphe injiziert (dh Einspritzen des Mikropipette zu deEP geht in das Gehirngewebe), dann langsamer Dispersion während des Tieres beobachtet wird. Während Farbstoff kann verwendet werden, um eine korrekte Injektionstechnik üben wie im Video gezeigt wird, ist es nicht empfehlenswert, um gemeinsam zu injizieren die blaue Lebensmittelfarbe mit einer zu testenden Verbindung, da sie die Eigenschaften der Verbindung verändern können und damit ihre Bioaktivität werden. Zusätzlich kann, da die meisten Lösungen als Lösungsmittel verwendet klar in der Farbe (Kochsalzlösung, DMSO, etc.) sind, ist es schwierig, festzustellen, ob die Verbindung aus der Injektionsnadel ausgestoßen wurde. Wenn daher das Auflösen eines spezifischen Verbindung ist es wichtig, sicherzustellen, dass es vollständig in Lösung geht, andernfalls ungelöster Partikel rasch verstopfen Injektionsspitze, verhindert einen Ausstoß von Fluid. Ferner, obwohl Verbindung Dispersion kann in der Hämolymphe sofortige, das Erreichen der Ziele in der zentralen Nervensystems, sowie Erreichen der maximalen Dosierung, kann größer sein bezogen auf die Verbindung der chemischen Eigenschaften, wie Größe und Polarity, und seine Fähigkeit, die Fliege Blut-Hirn-Schranke. ²² So durchdringen können, ist es wichtig, auf die möglichen Auswirkungen der unbekannten Verbindungen mehrere Minuten nach der Injektion zu überwachen, da verschiedene Verbindungen können Variationen in Zeiten des Auftretens Effekte, die im Laufe der Zeit kann in einigen Fällen zu erhöhen haben . Starke und unmittelbare Wirkungen der Verbindung, die vollständig blockieren die Funktion der Neuronen kann bereits mit den ausgelösten Reaktionen bei 1 Hz zu sehen, während die Stimulation des GFS bei höheren Frequenzen (100 Hz) wird verwendet, um subtilere Effekte aufgrund niedrigerer Dosierung oder zu erkennen Wirksamkeit einer Verbindung. Wenn keine Wirkungen nach Verbindung Injektion beobachtet werden es sein kann, entweder aufgrund von geringen Medikamentendosis oder die Tatsache, dass die Verbindung die spezifische molekulare Zielstruktur nicht vorhanden ist, in der GFS.

Wenn darüber hinaus mittels des Bioassay hier als ein Screening-Werkzeug für neue Verbindungen (wie Conotoxine) dargestellt, ist es wichtig zu beachten, dass der Test auf die molekulare Zielstrukturen in der vor eingeschränktGFS der Fliege. Obwohl der Test selbst nicht zulässt Lokalisierung der tatsächlichen molekularen Ziele der Verbindung injiziert wird, bedeutet es für die Eingrenzung der möglichen Ziele innerhalb der GFS ermöglichen. Weitere Tests, wie zB Patch-Clamp auf Neuronen oder Muskeln oder genetische Studien zu Wechselwirkungen mit Drosophila melanogaster Mutanten, kann getan werden, um das genaue Ziel dieser Verbindungen zu bestimmen. Schließlich wurde die Aufnahme präsentiert Protokoll entwickelt, um antagonistische Wirkungen auf die Funktion der GFS zu erkennen. Jedoch kann die Aufnahme-Protokoll leicht eingestellt werden, um agonistischer Wirkungen passiv Überwachen für Antworten durch die Verbindung nicht überprüft, ob die GFS ist nicht in der Lage, zuverlässig zu reagieren, wenn die Verbindung durch den Experimentator stimuliert wird induziert überwachen.