Submit
Browse  

The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE Bioengineering

Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

*, *,

Department of Regenerative Medicine, United States Army Institute of Surgical Research

* These authors contributed equally

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE Bioengineering. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 50.19.155.235, User IP: 50.19.155.235, User IP Hex: 840145899

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

Zamora, D. O., Natesan, S., Christy, R. J. Constructing a Collagen Hydrogel for the Delivery of Stem Cell-loaded Chitosan Microspheres. J. Vis. Exp. (64), e3624, doi:10.3791/3624 (2012).

Abstract: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

Multipotent kök hücreleri rejeneratif tıp 1-3 alanında çok faydalı olduğu kanıtlanmıştır. Bununla birlikte, doku rejenerasyonu için etkili bir şekilde, bu hücrelerin kullanmak için, değişken bir dizi dikkate alınmalıdır. Bu değişkenler şunlardır: toplam hacmi ve implantasyon sitenin yüzey alanı, doku mekanik özellikleri ve damarlanma miktarını ve hücre dışı matris bileşenlerini kapsamaktadır doku mikro,. Ana doku taklit eden bir mekanik mukavemet korurken Bu nedenle, bu hücrelerin sağlamak için kullanılan materyallerin belirlenmiş bir kimyasal bileşimi ile biyo-uyumlu olmalıdır. Bu malzemeler ayrıca oksijen ve besin hücrelere tutunur ve çoğalırlar için elverişli bir mikro sağlamak için geçirgen olması gerekir. Chitosan, mükemmel biyouyumluluk bir katyonik polisakkarit, kolayca kimyasal olarak değiştirilmiş ve in vivo mac in ile bağlamak için yüksek afinite edilebilirromolecules 4-5. Chitosan, hücre yapışması, göçü ve çoğalması için bir substrat olarak işlev sağlayan, ekstraselüler matriksin glikozaminoglikan kısmı taklit eder. Bu çalışmada, üç boyutlu bir yapı iskelesi 6 göre kollajen bir içine adipoz-türevi kök hücreleri (Artan) sunmak üzere mikrosferler şeklinde kitosan kullanmaktadır. İdeal bir hücreden mikrosfer oranı inkübasyon süresi ve yüklenmesi olabilir hücrelerin sayısını elde etmek için hücre yoğunluğu açısından değerlendirildi. ASC kitosan mikroküreler (CSM) üzerine ekildikten sonra, bir kollajen iskele gömülü olan ve uzun süre kültüründe muhafaza edilebilir. Özetle, bu çalışmada hassas bir üç boyutlu yapı iskelesi biyomalzemenin içinde kök hücreleri sunmak için bir yöntem sağlar.

Protocol: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

1. Yalıtımlı Yağ-Türetilmiş Kök Hücre (ASC)

Not: aksi belirtilmediği sürece tüm işlemler oda sıcaklığında yapıldı.

  1. Sıçan perirenal ve epididimal adipoz yalıtmak ve daha önce 6 açıklandığı gibi% 1 fetal sığır serumu (FBS) içeren steril Hank tamponlu tuz solüsyonu (HBSS) ile yıkayın.
  2. Doku kıyma ve oda sıcaklığında 8 dakika boyunca 500 g'de 50 mL tüpü ve santrifüj içine% 1 FBS içeren HBSS 25 mL içine 1-2 g transfer.
  3. Serbest yüzen adipoz doku tabakası ve 125 mL erlen transfer toplayın ve 37 az 45 HBSS kollajenaz tip II (200 U / ml) 25 ml ile tedavi ° orbital çalkalayıcı (125 rpm) C.
  4. Dikkatle sıvı kısmı (petrol ve yağ tabakası altında) kaldırmak ve 100 mikron ve 70 mikron naylon örgü filtre üzerinden sırayla filtre. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 500 g'de santrifüje süzüntü, supernatan aspiret ve 25 ml HBSS ile iki kez pelet yıkayın.
  5. MesenPRO RS Büyüme katkısı, (100 U / penisilin G, 100 ug / mL streptomisin sülfat, ve 0.25 mg / mL Amphotericin B'nin mL) antibiyotik-antimikotik ile desteklenmiş büyüme medyumu (MesenPRO RS Bazal Medium) 50 mL hücre pelletini ve 2 T75 şişeler (25 mL / şişeye) içine 2 mM L-glutamin ve pipet hücreleri.
  6. Kültür 37 ° C (Artan Tüm deneyler için kullanılan Geçiş 2-4) de bir% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş ASC.

2. Chitosan Mikroküreler (CSM) hazırlanması

Not: aksi belirtilmediği sürece tüm işlemler oda sıcaklığında yapıldı.

  1. CSM önceki protokolü kullanılarak bir iyonik 6 Koaservasyon tekniği ile birlikte, bir su-içinde-yağ emülsiyonlaştırıcı işlemle hazırlanır. Soya oluşan bir yağ fazı karışımı, 100 mL kitosan, sulu bir solüsyonu (0.5 M asetik asit içinde% 3 ağırlık / hacim kitosan 6 mL), emülsifiyeYağ, n-oktanol (1:2 v / v) ve% 5-sorbitan mono-oleat (p 80) emülsiyonlaştırıcı, karşıt yönlerde, üstten (1700 rpm) ve eş zamanlı olarak manyetik olarak karıştırıldı (1000 rpm) kullanılarak. Erken çapraz bağlama meydana gelmeden önce üzerinde oluşan miseller çözüm kalır ve dibe olamaz karıştırma temin eder bu ikili yöntemi. Dahası, içinde manyetik karıştırıcı yardımcıları misel oluşumu ve rigidization sırasında kitosan de-toplamak.
  2. Karışım sürekli stabil bir su-içinde-yağ emülsiyonu elde edilene kadar yaklaşık 1 saat boyunca karıştırıldı. İyonik çapraz bağlama 4 saat (24 mL toplam) n-oktanol, her 15 dakika içinde% 1 w / v potasyum hidroksit ile 1.5 mL eklenmesi ile başlatılır.
  3. Çapraz bağlama Reaksiyonun tamamlanmasından sonra, karışıma yavaş yavaş içeren CSM yağ fazı boşaltacaktır ve hemen aseton 100 mL küreler ekleyin. Yağ fazı, tamamen çıkarılana kadar aseton ile yıkanır küreler.
  4. Bir vakum desikatörde ve anal olarak kurtarıldı küreler kurulayındaha fazla işlem olmadan yze. Ortalama partikül boyutu CSM, miligram başına yüzey alanı ve birim hacmi kübik parçacık boyutu analiz cihazı ile tespit edildi.
  5. Sonraki deneyler için, kalıntı tuzları kaldırmak ve mutlak alkol ile sterilize etmek için steril su ile CSM üç kez yıkayın.

3. CSM Serbest Amino Grup Sayısını Belirleme

Not: aksi belirtilmediği sürece tüm işlemler oda sıcaklığında yapıldı.

  1. Bubins ve Ofner 7 trinitro benzensülfonik (TNBS) asit yöntemi kullanılarak iyonik çapraz sonra CSM mevcut serbest amino gruplarının sayısını belirleyin. 40 ° C'de 4 saat süreyle 50 mL cam tüp içinde% 0.5 TNBS solüsyonu 1 mL mikrosferler 5 mg inkübe ve 2 saat boyunca 60 ° C'de 6N HCI 3 mL ilavesi ile hidroliz.
  2. Oda sıcaklığına kadar soğumaya örnekleri, ve deiyonize su ile 5 mL etil 10 ml ilave edilerek serbest TNBS özüeter.
  3. ° C bir su banyosunda 15 dakika oda sıcaklığına kadar soğutulur ve kalan eter, buharlaşma ve 15 ml su ile dilüe etmek için 40 sulu faz bir 5 ml bir örnek ısıtılır.
  4. Boş ve kitosan amino gruplarının sayısı tespit etmek CSM hazırlanması için kullanılan şekliyle kitosan olmadan TNBS çözeltisi kullanılarak bir spektrofotometre ile 345 nm'de absorbans ölçün. Kitosan göre CSM serbest amino grubu ile kestirilebilir.

4. CSM içinde yükleniyor ASC

Not: aksi belirtilmediği sürece tüm işlemler oda sıcaklığında yapıldı.

  1. Gece steril HBSS bölümünde 2,5 sterilize CSM 5 mg dengeye ve 8 mikron gözenek büyüklüğüne membran kültür plakası eki (24-iyi plaka) ekleyin.
  2. CSM zarı üzerine yerleşen sonra, dikkatlice HBSS aspire ve inci büyüme medya ekleme ve 700 uL içine besiyeri 300 uL ekleyinucun dışına e.
  3. Kültürü plakası içine eklemek CSM içinde büyüme ortamı ve tohum 200 uL uygun konsantrasyonda Pastör pipetiyle ASC (1 x 04-04 Ekim x 10 4). Kültürü insert içinde orta son hacim, tohumlama sonra, 500 uL olup.
  4. 37 azından% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş 24 saat süreyle CSM üzerine ASC tohumlu inkübe ° C.

5.. CSM içinde ASC Yükleme ve Hücre Uygulanabilirlik Yüzde Belirlenmesi

Not: aksi belirtilmediği sürece tüm işlemler oda sıcaklığında yapıldı.

  1. Inkübasyondan sonra, insert membran içine göç etmiş hücreleri bozmadan steril bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpüne ASC yüklü CSM toplamak.
  2. Artık orta çıkarın ve tüp taze besiyeri 250 uL ekleyin.
  3. Her tüp 25 uL MTT [3 - (4,5-dimethylthiozole-2-il) -2,5-difeniltetrazolium bromür] eklemekçözeltisi (5 mg / mL) ve 37 azından% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş 4 saat süre ile inkübe edilir ° C.
  4. İnkübasyondan sonra, orta kaldırmak dimetil sülfoksit 250 uL ekleyin ve karmaşık formazan çözünürleştirmek için 2-5 dakika boyunca vorteks karışımı.
  5. 5 dakika boyunca 2700 x g'de santrifüje CSM, ve referans olarak 630 nm ile 570 nm de ölçüldü süpernatan absorbans belirler.
  6. Uygulanabilir ASC'nin bilinen numaraları elde absorbans değerine göre CSM ile ilişkili hücre numarasını belirlemek.

6. ASC-CSM-Gömülü Kolajen Jel Karakterizasyonu

Not: aksi belirtilmediği sürece tüm işlemler oda sıcaklığında yapıldı.

  1. 2 N NaOH kullanılarak pH 6.8 'arındırılmış Bornstein 8 ve fibrillate yöntemine göre, fare kuyruk tendonu ekstrakte tipi 1 kolajen (7.5 mg / mL) karışımı ASC-yüklü CSM (5 mg ≈ 2 x 10 hücre ihtiva eden 4). Bir 12-iyi levhaya fibrile kolajen-ASC-CSM karışımı ekleyin ve bir 37% 5 CO2 inkübatöründe nemlendirilmiş azından 30 dakika süreyle inkübe edilir ° C.
  2. Tam fibrilasyon sonra, 37 ° C kadar bir% 5 CO 2 nemli inkübatörde 14 gün için kolajen-ASC-CSM jeller inkübe
  3. Jel içine CSM gelen hücrelerin Yayın ve göç standart mikroskopi teknikleri kullanarak gözlenmiştir.

7. Temsilcisi Sonuçlar

Bu çalışmada, bir kollajen jel iskele içine kitosan mikroküreler (CSM) kök hücre sunmak için bir in vitro bir strateji geliştirdik. Birörnek (çapı 175-225 mikron) ve kompozisyon Gözenekli CSM hücre taşıyıcıları (Şekil 2) olarak hazırlanmış ve kullanılmıştır. CSM'den ASC kuluçkaya üzerine, hücreler CSM 2 x 10 cells/5mg 4 arasında bir konsantrasyonda bağlı. Filopodia uzatırken hücreleri, mikroküre yayılan kabil edildimikroküre gözenekli yarıklar (Şekil 3) takın. Hücre yüklenmiş CSM kollajen jel ile karıştırılır edildi sonra, hücreler hemen jeller (Şekil 4) içine göç başladı.

Tablo 1
Tablo 1. Bir kök hücre taşıyıcı sisteminde kitosan ve kollajen kullanımı için biyolojik avantajları.

Şekil 1
Şekil 1. Şematik ASC-CSM yüklenen kollajen iskelelerinin çift kullanımı için genel bir strateji resmediyor. Şekil 2, 3, ve 4 görüntülerin yorumlanması ile yardımcı şematik içinde açıklamalı.

Şekil 2
Şekil 2. Şematik kitosan mikroküreler üzerine kök hücrelerin tohumlu süreci resmediyor. Procmikron gözenek büyüklüğü membran kültür plaka insert - ess bir 8 CSM ile birlikte kültür ASC içerir. 24 saat sonra, mikroküreler ekleme kaldırılır ve bir biyomateryal matris içine almasi için hazırdır.

Şekil 3
Şekil 3. ASC ile CSM yüklü morfolojik karakterizasyonu. B panelinden konfokal floresan mikroskobu ile elde edilen bir resim ile üst üste aynı görüş alanını gösterirken Panel A, ASC-yüklü CSM bir ışık mikroskobu resmediyor. ASC kalsein AM (yeşil) ile önceden yüklenmiş edildi. Panel D mikroküre (yıldız) yüklenmiştir hücreleri gösterirken Panel C, yüksüz bir mikroküre bir SEM görüntüsü bir görüntü resmediyor. Panel E TEM görüntü yüksüz mikrosfer bir kesitini göstermektedir. Gözenekler ve çatlaklar yapan çok sayıda mikroküre çapında bulunmaktadır. Panel F hücreleri ile kesitli mikroküre (oklar) eklenmiş ve CRE içine filopodia uzanan gösterirmengene. Orijinal büyütme: A & B = 70X; C = 500x, D = 2,000 x; E & F = 2,500 x.

Şekil 4
Şekil 4. Üç boyutlu bir yapı iskelesi kollajen içine CSM gelen ASC göçü. Paneller A ve B hücreleri uzak mikroküre geçiş ve 3. günde kollajen matriks (A, oklar) içine CSM betimliyor. Panel B 12 gün sonra, benzer bir kültür gösterir. Transmisyon elektron mikroskobu (TEM) görüntüleri C, D ve C ve D E. Asteriskler tasvir hücreleri mikroküre (oklar) uzak göç ile kesitli olan bir mikroküre göstermektedir. Panel D'nin yüksek büyütmede paneli E tasvir ve kollajen fibriller (ilave) hücresine bağlı filopodia gösterir. Orijinal büyütme: A & B = 100x; C & D = 6,000 x; E = 20.000 x, inset = 150,000 x.

Şekil 5,
Şekil 5.Şematik rejeneratif tıp ve ilaç teslim CSM geniş kullanım resmediyor.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

Kök hücre tabanlı tedavinin başlıca engellerden biri tamir için belirtilen bölgelere hücrelerin teslimat için etkin yöntemler geliştiriyor. Hastadan hastaya olan değişkenlik nedeniyle, doku tipi, yaralanma boyutu ve derinliği; teslim kök hücre yöntemi bir vaka ile ayrı ayrı tespit edilmelidir. Bir matris içinde kök hücreleri gömerek ve yara yerine onlara teslim doku mühendisliği için bir sonraki mantıklı bir yaklaşım gibi görünse de, bazı teknik engeller devam etmektedir. Bu matris yapışır ve hücreler anoikis 9-10 önce, prolifere ekleyin ve bir uygun mikro yeniden hangi çevreleyen bir biyo-uyumlu sağlamak için yerleşik hücrelerin becerisine sahiptir. Bu süreç, hücrelerin matriks yeniden makine, önceden proliferasyon, göç ve kök hücrelerin farklılaşma istediğiniz hücreye süreçleri gerçekleştirmek için gün sürebilir bir süreç upregüle gerektirir. Bu sorunları aşmak için, biz have önce hasarlı doku tamiri için uygun bir matris içine gömerek chitosanın mikroküreler üzerine preload kök hücreler için bir yöntem geliştirdi. Eşsiz iyonik çapraz bağlama mikrosferler hazırlamak için yöntemler kullanılarak, iletişim kuralı, böylece hücreler için mükemmel bir mikro-boyutlu bir taşıyıcı getirici, çapı 175-225 um içinde olması mikrosferler ile>% 90 hazırlamak için edebilmektedir. Daha da önemlisi, çapraz-bağlama sonra, hücre mikrosferler tutturulması için son derece elverişli olan, pozitif yüklü kalır. Bu mikroküre özellikleri kök hücrelerin CSM üzerine hızlı bir şekilde takmak için izin verir. Bir kez eklenmiş, bu kök hücre yüklü mikroküreler istikrarlı ve hasarlı dokuları taklit etmek gibi kollajen hidrojellerinin olarak iskele içinde mekansal düzenlemeler, elde edebiliyoruz. Özetle, bu protokol CSM üzerine ASC yüklemek için yeni bir yöntem sağlar ve kök hücre fenotipi korurken mikro hücreler göç edebildiğini göstermektedir. Gözenekli CSM bir tarif sunmakhala mükemmel ASC eki için mikro ve hücreleri çevreleyen matriks içine göç etmelerine izin verilmesi.

Özet:

Kritik Adımlar

  • Çapı değişimi doğrudan mikrosferler miligram başına hücre eki için uygun olan yüzey alanı etkilediğinden eşit büyüklükte mikro kullanın.
  • CSM, hücrelerin optimum üniforma eke kültür insert içinde mikrosferler yeknesak bir yatak hazırlayın.
  • Ortamının hacmi hücre kültürü ucun dış oyuğa ilave sağlamak ve iç ve menisküs daha yüksektir. Tipik olarak, bir iç: bu hücreler mikrosferler takılarak kolaylaştırır olarak 1:02 dış hacim oranında, uygundur.
  • İskele içinde eşit mikroküreler yüklenen hücre dağıtın. Artan-CSM dağılımı çok yoğun ise, hücreler mikrosferler geçiş olmayacaktır.
  • CSM ve dağılım of istenen miktardakatkısının yoğunluğu uygulama ve yaralı doku alanına bağlıdır.

Sınırlamalar

  • Bu yöntem, mevcut mikrosferler toplam yüzey alanı ile sınırlıdır. Daha yüksek bir hücre sayısı arzu edilirse, daha mikrosferler yüzey alanını artırmak için gereklidir.
  • Süreci hücreleri önceden mikrosferler üzerine ekildi edilmesi ve hücre kapsülleme amaçlar için uygun değildir sağlar.
  • Bu süreçte geliştirilen kitosan mikroküreler ankraj bağımlı hücreleri destekliyoruz ama değil diğer hücre tiplerinde olabilir.
  • Ve yukarıda belirtilen aktif duruma terapötik yarımlar hassas izin vermeyen bir organik çözücü kullanılarak elde: kitosan mikrosferler bir yağ karışımı (n-oktanol soya yağı) içinde 0,5 M, bir emülsiyon asetik asit çözeltisi kullanılarak geliştirilir yana.
  • CSM ağırlıklı nedeniyle daha hızlı düşüşü kısa zaman süresi (5-10 gün) hücre / ilaçlar sunmak için tasarlanmıştıroranı, uzun süreli kullanılabilirlik için tasarlanmıştır benzemeyen.

Olası değişiklikler ve çok yönlülük (Şekil 5)

  • Microsphere boyutu toplam yüzey alanı değiştirmek için tadil edilebilecektir. Örneğin, mikrosfer büyüklüğü sırasıyla mikrosfer başına artan hücre yükü ile sonuçlanan, toplam yüzey alanı ve mikrosferler iliştirebileceği hücrelerin sayısını arttıracak CSM yüzey alanı / mg, artırmak için düşürülebilir.
  • Kitosan mikrosferler diğer hücre tipleri (endotel hücreleri, perisitler, fibroblast, vs) yüklemek için bir taşıyıcı olarak kullanılabilir.
  • Hücre yüklü küreler (ya tek veya çok hücreli tip) iskelelerinin belirli yerleri içinde gömülü olabilir. Bu strateji, doku rejenerasyonu için çok hücreli doku mühendisliği iskeleleri yapımında yardımcı olacaktır.
  • Hücre teslimat ek olarak, mikro kürecikler, aynı zamanda terapötik ilaçlar sağlamak için kullanılabilir (yani, büyüme faktörleri, farklılaşma indükleyicileri ve / veya antibiyotikler). Bu ilaç yüklenmiş mikrosferler da iyileşme ve rejenerasyon süreçler geliştirmek için bir yapı iskelesi içerisinde hücre-yüklü mikrosferler ile kombinasyon halinde kullanılabilir.

Sorun Giderme

  • Boyutu büyük bir varyasyon oluşursa CSM hazırlanması üzerine, daha sonra ürün bir dizi istenen CSM boyutu 11 verim ayarlanabilir.
    • Kitosan çözeltisinin viskozitesi. Taze hazırlanan stok toplu-seri hazırlık Sabit viskozite altında çözüm tutmak için tercih edilir
    • Yüzey aktif ayarlama hacmi (80 a) emülsiyon hazırlamak için kullanılmıştır.
    • Havai karıştırıcı hızını süreci boyunca sabit kalmasını sağlamak (hızlı elektrikli güç dalgalanmaları ile değişebilir
    • Haber verme atmosferik hava karıştırarak türbülans ve boyut farklılığı (bu ke önlenebilir neden olabilir sırasındaSadece havai karıştırıcı bıçakların üzerine, karıştırma sırasında oluşturur ep sıvı dalgalanma.
  • Mikrosferler optimal hücre yükleme sağlamak için, bir kalorimetrik MTT gerçekleştirilebilir. Bu mikrosferler miligram başına yüklenen canlı hücreler tahmini bir sayı verecektir.
  • Kollajen bir hidrojel gibi bir iskele içinde onları karıştırmadan önce hücre kültür ortamı küçük bir hacim onları durdurarak hücre yüklü mikroküre Topaklanmaması.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

Hiçbir rakip mali çıkarlarını var.

Feragatname

Burada yer alan görüşler ya da iddiaların yazarların özel görünümleri ve resmi olarak veya Savunma ya da ABD Hükümeti Bölümü görüşlerini yansıtan tefsir edilmesi değildir. Yazarlar, ABD Hükümeti çalışanları, ve bu çalışma resmi görevlerinin bir parçası olarak hazırlandı. Tüm çalışmalar ABD Ordusu Tıbbi Araştırma ve Malzeme Komutanlığı tarafından desteklenmiştir. Bu çalışma ABD Ordusu Tıbbi Araştırma ve Malzeme Komutanlığı Kurumsal Değerlendirme Kurulu ve onaylanmış protokole uygun olarak tarafından incelenen ve onaylanan bir protokol çerçevesinde yürütülmüştür.

Acknowledgements: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

DOZ Cenevre Vakfı tarafından verilen bir hibe ile desteklenmektedir. SN Pittsburgh Doku Mühendisliği Girişimi bir Doktora Sonrası Araştırma Bursu Grant tarafından desteklenmiştir.

Materials: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

Name Company Catalog Number Comments
Hanks BalancedSalt Solution (HBSS) GIBCO, by Life Technologies 14175 Consumable
Fetal Bovine Serum Hyclone SH30071.03 Consumable
Collagenase Type II Sigma-Aldrich C6685 Consumable
70-μm nylon mesh filter BD Biosciences 352350 Consumable
100-μm nylon mesh filter BD Biosciences 352360 Consumable
MesenPRO Growth Medium System Invitrogen 12746-012 Consumable
L-glutamine GIBCO, by Life Technologies 25030 Consumable
T75 Tissue Culture Flask BD Biosciences 137787 Consumable
Chitosan Sigma-Aldrich 448869 Consumable
Acetic Acid Sigma-Aldrich 320099 Consumable
N-Octanol Acros Organics 150630025 Consumable
Sorbitan-Mono-oleate Sigma-Aldrich S6760 Consumable
Potassium Hydroxide Sigma-Aldrich P1767 Consumable
Acetone Fisher Scientific L-4859 Consumable
Ethanol Sigma-Aldrich 270741 Consumable
Trinitro Benzenesulfonic Acid Sigma-Aldrich P2297 Consumable
Hydrochloric Acid Sigma-Aldrich 320331 Consumable
Ethyl Ether Sigma-Aldrich 472-484 Consumable
8-μm Tissue Culture Plate Inserts BD Biosciences 353097 Consumable
1.5-ml Microcentrifuge Tubes Fisher Scientific 05-408-129 Consumable
MTT Reagent Invitrogen M6494 Consumable
Dimethyl Sulfoxide Sigma-Aldrich D8779 Consumable
Qtracker Cell Labeling Kit (Q tracker 655) Molecular Probes, Life Technologies Q2502PMP Consumable
Type 1 Collagen Travigen 3447-020-01 Consumable
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich S8045 Consumable
12-Well Tissue Culture Plates BD Biosciences 353043 Consumable
Centrifuge Eppendorf 5417R Equipment
Orbital Shaker New Brunswick Scienctific C24 Equipment
Humidified Incubator with Air-5% CO2 Thermo Fisher Scientific, Inc. Model 370 Equipment
Overhead Stirrer IKA Visc6000 Equipment
Magnetic Stirrer Corning PC-210 Equipment
Vacuum Desiccator - - Equipment
Particle Size Analyzer Malvern Instruments STP2000 Spraytec Equipment
Water Bath Fisher Scientific Isotemp210 Equipment
Spectrophotometer Beckman Coulter Inc. Beckman Coulter DU800UV/Visible Spectrophotometer Equipment
Vortex Diagger 3030a Equipment
Microplate Reader Molecular Devices SpectraMax M2 Equipment
Light/Fluorescence Microscope Olympus Corporation IX71 Equipment
Confocal Microscope Olympus Corporation FV-500 Laser Scanning Confocal Microscope Equipment
Scanning Electron Microscope Carl Zeiss, Inc. Leo 435 VP Equipment
Transmission Electron Microscope JEOL JEOL 1230 Equipment

References: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

  1. Krampera, M., et al. Mesenchymal stem cells for bone, cartilage, tendon and skeletal muscle repair. Bone. 39 (4), 678-83 (2006).
  2. Patrick, C.W., Jr. Tissue engineering strategies for adipose tissue repair. Anat. Rec. 263 (4), 361-6 (2001).
  3. Pountos, I. & P.V. Giannoudis, Biology of mesenchymal stem cells. Injury. 36 Suppl 3, S8-S12 (2005).
  4. Kim, I.Y., et al. Chitosan and its derivatives for tissue engineering applications. Biotechnol. Adv. 26 (1), 1-21 (2008).
  5. Shi, C., et al. Therapeutic potential of chitosan and its derivatives in regenerative medicine. J. Surg. Res. 133 (2), 185-92 (2006).
  6. Natesan, S., et al. Adipose-derived stem cell delivery into collagen gels using chitosan microspheres. Tissue Eng. Part. A. 16 (4), 1369-84 (2010).
  7. Bubnis, W.A. & C.M. Ofner, 3rd, The determination of epsilon-amino groups in soluble and poorly soluble proteinaceous materials by a spectrophotometric method using trinitrobenzenesulfonic acid. Anal. Biochem. 207 (1), 129-33 (1992).
  8. Bornstein, M.B. Reconstituted rattail collagen used as substrate for tissue cultures on coverslips in Maximow slides and roller tubes. Lab Invest. 7 (2), 134-7 (1958).
  9. Benoit, D.S., et al. Integrin-linked kinase production prevents anoikis in human mesenchymal stem cells. J. Biomed. Mater. Res. A. 81 (2), 259-68 (2007).
  10. Nuttelman, C.R., Tripodi, M.C., & Anseth, K.S. Synthetic hydrogel niches that promote hMSC viability. Matrix Biol. 24 (3), 208-18 (2005).
  11. Shanmuganathan, S., et al. Preparation and characterization of chitosan microspheres for doxycycline delivery. Carbohydr. Polym. 73, 201-211 (2008).
  12. Haque, T., Chen, H., Ouyang, W., Martoni, C., Lawuyi, B., Urbanska, A., & Prakash, S. Investigation of a new microcapsule membrane combining alginate, chitosan, polyethylene glycol and poly-L-lysine for cell transplantation applications. Int. J. Artif. Organs. 28 (6), 631-7 (2005).
  13. Goren, A., Dahan, N., Goren, E., Baruch, L., & Machluf, M. Encapsulated human mesenchymal stem cells: a unique hypoimmunogenic platform for long-term cellular therapy. FASEB J. 24 (1), 22-31 (2010).
  14. Zielinski, B.A. & Aebischer, P. Chitosan as a matrix for mammalian cell encapsulation. Biomaterials. 15 (13), 1049-56 (1994).
  15. Girandon, L., Kregar-Velikonja, N., Božikov, K., & Barlič, A. In vitro Models for Adipose Tissue Engineering with Adipose-Derived Stem Cells Using Different Scaffolds of Natural Origin. Folia Biol. (Praha). 57 (2), 47-56 (2011).
  16. Baruch, L. & Machluf, M. Alginate-chitosan complex coacervation for cell encapsulation: effect on mechanical properties and on long-term viability. Biopolymers. 15, 82 (6), 570-9 (2006).
  17. Wei, Y., Gong, K., Zheng, Z., Wang, A., Ao, Q., Gong, Y., & Zhang, X. Chitosan/silk fibroin-based tissue-engineered graft seeded with adipose-derived stem cells enhances nerve regeneration in a rat model. J. Mater. Sci. Mater. Med., (2011).
  18. Wang, Q., Jamal, S., Detamore, M.S., & Berkland, C. PLGA-chitosan/PLGA-alginate nanoparticle blends as biodegradable colloidal gels for seeding human umbilical cord mesenchymal stem cells. J. Biomed. Mater. Res. A. 96 (3), 520-7 (2011).
  19. Alves da Silva, M.L., Martins, A., Costa-Pinto, A.R., Correlo, V.M., Sol, P., Bhattacharya, M., Faria, S., Reis, R.L., Neves, & N.M. Chondrogenic differentiation of human bone marrow mesenchymal stem cells in chitosan-based scaffolds using a flow-perfusion bioreactor. J. Tissue Eng. Regen. Med., (2010).
  20. Kang, Y.M., Lee, B.N., Ko, J.H., Kim, G.H., Kang, K.N., Kim da, Y., Kim, J.H., Park, Y.H., Chun, H.J., Kim, C.H., & Kim, M.S. In vivo biocompatibility study of electrospun chitosan microfiber for tissue engineering. Int. J. Mol. Sci. 11 (10), 4140-8 (2010).
  21. Bozkurt, G., Mothe, A.J., Zahir, T., Kim, H., Shoichet, M.S., & Tator, C.H. Chitosan channels containing spinal cord-derived stem/progenitor cells for repair of subacute spinal cord injury in the rat. Neurosurgery. 67 (6), 1733-44 (2010).
  22. Leipzig, N.D., Wylie, R.G., Kim, H., & Shoichet, M.S. Differentiation of neural stem cells in three-dimensional growth factor-immobilized chitosan hydrogel scaffolds. Biomaterials. 32 (1), 57-64 (2011).
  23. Altman, A.M., Gupta, V., Ríos, C.N., Alt, E.U., & Mathur, A.B. Adhesion, migration and mechanics of human adipose-tissue-derived stem cells on silk fibroin-chitosan matrix. Acta Biomater. 6 (4), 1388-97 (2010).
  24. Altman, A.M., Yan, Y., Matthias, N., Bai, X., Rios, C., Mathur, A.B., Song, Y.H., & Alt, E.U. IFATS collection: Human adipose-derived stem cells seeded on a silk fibroin-chitosan scaffold enhance wound repair in a murine soft tissue injury model. Stem Cells. 27 (1), 250-8 (2009).
  25. Machado, C.B., Ventura, J.M., Lemos, A.F., Ferreira, J.M., Leite, M.F., & Goes, A.M. 3D chitosan-gelatin-chondroitin porous scaffold improves osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells. Biomed. Mater. 2 (2), 124-31 (2007).

Ask the Author: Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

0 Comments

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter