The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages
Department of Neurobiology, University of Massachusetts Medical School
Yoshihara, M. Simultaneous Recording of Calcium Signals from Identified Neurons and Feeding Behavior of Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (62), e3625, doi:10.3791/3625 (2012).
Davranış, işlevi açısından nöron ağları çalışmak için, her bir davranış paterni oluşturulduğunda nöronların nasıl işlediğini analiz etmelidir. Böylece, nöronal aktivite ve davranış eşzamanlı kayıtlar davranış beyin aktivitesini ilişkilendirmek için gereklidir. Bu tür davranış analizleri için, meyve sineği Drosophila melanogaster, bize, bu GCaMP 1 gibi genetik olarak kodlanmış kalsiyum göstergeleri dahil etmek nöronal aktivitenin izlenmesi ve özellikle nöronlar 2-5 tespit aktif hale getirmenin optogenetic veya thermogenetic teknikleri için sofistike genetik manipülasyonlar kullanmanıza olanak sağlar. Bir thermogenetic tekniği kullanın beslenme davranışı için kritik nöronlar (Taşkın ve ark., Revizyon altında) bulmak için bize yol açmıştır. Onun probosis veya tarsi üzerinde duyusal hücrelerin tatlı bir uyarana yanıt; davranışı bir beslenme ana parçası olarak, bir Drosophila yetişkin 6 (PER probosis uzantısı yanıt) beslenmek için burnumun uzanır. Codavranışsal gözlem ile eş zamanlı olarak, suboesophageal ganglion (SOG) - GCaMP3.0 1 kullanarak bir kalsiyum görüntüleme tekniği 8, 9 ile 7 BAŞINA için protokol mbining, sanırım besleme merkezinde nöronların etkinliğini izleyebilir deneysel bir sistemi kurduk burnumun. Onun beyni bir suya daldırma merceğinden + görüntüleme Ca 2 banyo maruz iken kendi burnumun serbestçe hareket etmelerine olanak sağlayacak, Drosophila yetişkin yerleştirmek için: Ben bir aparat ("Sinekler" "Fly beyin Canlı Görüntüleme ve Elektrofizyoloji Sahne") tasarladı . Sinekler ayrıca elektrofizyolojik kayıt veya sinaptik morfoloji time lapse görüntüleme gibi sinek beyinleri canlı deneyler birçok türleri için uygundur. Canlı görüntüleme sonuçlarını doğrudan eşzamanlı PER davranışı ile korele edilebildiği için, bu yöntemi nöron ağlarının bilgi işlem eğitim için mükemmel bir deneysel sistem sağlar ve nasıl bu c edebilirsinizellular aktivitesi plastik süreçleri ve bellek bağlanmıştır.
1. Sinekler oluşturma
2. Gözlem için Fly hazırlanması
3. Ca 2 + Beyin Görüntüleme
4. Probosis Uyarıcı
5.. Temsilcisi Sonuçlar
Kürsüden iletki, burnumun uzantısı için kürsüden kaldırma sorumlu tutulan başlıca kasları bir çift, Motor nöronların tatlı uyaranlara 13 sağlam yanıtları göstermek için bildirilmiştir. Şekil 9'da, Ca 2 + sinyalleri GCaMP3.0 1, 9 yoluyla ifade motor nöron bir hücre gövdesinden Gal 4 sürücüsü, E49 13,. Video, bir robu 'de gösterildiği gibist BAŞINA Ca2 + sinyali bir artış ile eşzamanlı olarak gözlenmiştir.

Şekil 1.. Fly beyin Canlı Görüntüleme ve Elektrofizyoloji Sahne (uçar) şematik. Bir, sinekler sinek kafası düz bir şekilde gelmesi için duvar açısı sağlayan bu tür inşa edilmiştir. Sinek burnumun üç segmente renk kodlu vardır; kürsüsüne eflatun olduğunu. Sinek forseps odasına yerleştirilen ve bir Pipetman ucunun sonunda kesilen bir parça kaçan sineği engellemek için odanın arka takılı edilir. B, delik sinek kafasına uyacak şekilde sıkılır. Sızıntı olmadığından emin olmak için belirtilen kalan eksiklikleri ışıkla sertleşen yapıştırıcı ile kapatılır. Tutkal tamamen donduktan sonra bir tıkaç görevi Pipetman ucu kaldırılır. Salin beynin yüzey tamamen kapalı olduğu gibi sinekler içine dökülür. Hiçbir tuzlu su sızıntısı olduğunu sağlanmalısinek başın ön ucuna dışarı ing. Panel b kesikli çizgi ile çevrelenmiş gölgeli alan çıkarılmış üzere bir kısmını göstermektedir.

Şekil 2. Sineklerin Fotoğraf. Tutkal hilal şeklinde bir duvar (bir tutkal tabancası itibaren) perfüzyon sırasında tuzlu su akışını kontrol etmek ve kullanılan tuz miktarını azaltmak için yapılır.

Şekil 3. Bir sinek ön görünümü ışıkla sertleşen yapıştırıcı bir tuzlu su geçirmez conta oluşturmak için sinek (oklar) başının etrafında nasıl uygulanacağını Bu görüntü bir sinek Sineklerin ayarlanır gösterir. Sinekler monte ve. Sineğin probosis kadar herhangi bir tuzlu su sızıntıları, daha sonra deneme başarısız olur. Sahneye tethered iplik (ok başları) tamamen retrac değildir, böylece pozisyonda burnumun tutmak olduğunu ted. Aksi takdirde SOG ile daha ventral kısmı tıkayabilir ve hareket eserler neden olur.

Şekil 4. Bir disseke sinek ile Sineklerin En görünümü. Bu görüntü bir sinek şu kütikül kaldırma maruz SOG gösterir. Yemek borusu, kas 16 ve trakea beyin bağlı olarak seçilen hava-çuval da kalsiyum sinyalleri eşya yol açabilir beyin, rahatsız engellemek için çıkarıldı.

Şekil 5. Izleme cihazı. Bu cihaz bir iplik diski konfokal mikroskop sistemi (Improvision) bağlı bir Olympus BX51WI mikroskop monte edilen ve bir Nikon SMZ800 mikroskop yan monte edilir. Bu kurulum davranış BAŞINA sırasında beyin aktivitesinin canlı görüntüleme sağlar.
6 "src =" / files/ftp_upload/3625/3625fig6.jpg "/>
6 Şekil. Sineklerin yan görünümü göstermek için fotoğraf. Tuzlu su ince bir tabaka 40X suya daldırma lens ve sinek arasında sandviç edilir.

Şekil 7. Washi kağıt fitil yapmak için şematik. Gampi-washi kağıt (Haibara, Japonya) son derece ince ve pürüzsüz bir geleneksel Japon parşömen olduğunu. Ayrıca, çok kuvvetli ve sıvı büyük miktarda muhafaza edebilir. Washi kağıt çok özel boyutları olan bir yamuk şeklinde kesilmiş olmalıdır; 0.3 mm ve 0.7 mm genişliği ve uzunluğu 4-5 mm (a). Bu, daha sonra bir yamuk 23 G derialtı iğne ucu içine 0,7 mm taraftan eklenir ve aynı zamanda bir V-şeklinde (b) bükülmüş bir böcek pimi, yerleştirilmesi ile kararlı hale getirilebilir. C, washi kağıt hale şeffaf aşağıdaki maruz kalmabir sıvı için, bu deney için idealdir.

Şekil 8. Washi-fitil ile sinekleri üzerinde burnumun uyarılması. Bir derialtı iğne ucunda washi kağıt fitil tek elle bir Joystick manipülatör kullanılarak bir an için uygulanır. İğne sukroz çözeltisi aspirasyon ve boşaltılması için, diğer taraftan ile manipüle bir enjektör için esnek bir boru ile bağlanır.

Şekil 9. Temsilci sonuçlanır. bir, davranış PER stereomikroskop yüklü CCD kamera aracılığıyla kaydedildi. Stimülasyonu azından uyarılmasıyla önce uzun bir hortum (oklar), ve 100 mM sukroz sulu çözeltisi (arrowhead) ihtiva eden bir fitil A ile uyarıldıktan sonra bir starved sinek frontal görünümler. Aydınlatma kullanılan bir 491 nm lazer sayesinde gerçekleşirGCaMP floresans. b, hasret devlet kürsüden kas iletki için motor nöron içinde GCaMP 3.0 yanıtı Sakkaroz-indüklenen. Uyarılması daha önce üst panel; alt panelini, hemen uyarıldıktan sonra. Ölçek çubuğu, 10 mikron. C, sukroz bağlı GCaMP 3.0 yanıtının belirlenmesi. Motor nöron temel çizgi birkaç saniyelik bir restorasyon aşaması takip floresan keskin bir artış ile sakaroz uyarana yanıt verir.
Sinekler Ca2 + sinyalleri ve BAŞINA davranış eşzamanlı kayıt için olanak sağlar. Hatta, normal tuzlu su ile BAŞINA davranışı maruz beyin gözlenmiştir. Yerine özgün kılcal method7 kullanılan bir Kimwipe fitilin Gampi-washi fitil kullanmak, yüksek oranda tekrarlanabilir ve istikrarlı BAŞINA davranışı kolaylaştıran ve yapma ve iyi bir Kimwipe fitil seçiminde becerikli olmak için gereksinimini ortadan kaldırır. Deneysel ipuçları bizi başarıyla Ca 2 derece stabil bir kayıt yol burnumun hareketi bozuklukları önlemek için + sinyaller düşük gürültü ile izin yukarıda belirtilen. Bazen, doku alınması kötü sonuçlara yol açan, hücrelerin maruz veya yeterince hareketini bastırmak için yeterli değildi. Ancak, bir kez biz becerikli, hazırlıkları fazla% 80 iyi sonuç üretti. Bu metodoloji Ca 2 + görüntüleme için değil sadece, ama davranış BAŞINA gözlemlerken aynı zamanda herhangi bir canlı görüntüleme adapte edilebilir. Örneğin, üzerinden herhangi bir hücre erişebilirdoğrudan faaliyet kaydetmek için bir elektrot kullanın. Iki foton uyarması mikroskobu ile birlikte, biz davranış değişiklikleri ile ilgili olabilir sinaptik yapısı time lapse görüntüleme gerçekleştirmek edebiliyoruz. Bu nedenle, davranışsal gözlem ile beyin görüntüleme yönteminin nöronal ağ fonksiyonel diseksiyon için değerli değil sadece, ama bellek arkasındaki mekanizmalar sinaptik plastisite 14 ilişkilendirmek için güçlü bir araç olarak kullanılabilir.
I L Watanabe, M takımlarda hasar ve kullanışlı yorum ve tartışma Yoshihara laboratuvar diğer üyelerine teşekkür ediyorum. Ben sinek stokları, deneyler göstermek için S Yokoyama, teknik yardım için Shinya Iguchi ve malzeme bilgi için Nobuko Yoshihara K. Scott ve L. Looger teşekkür ederiz. Bu çalışma Ruh Sağlığı Teşvik MH85958 Ulusal Enstitüsü, ve MY için Worcester Vakfı tarafından desteklenen
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Tetric EvoFlow | Ivoclar vivadent | M04115 | Light-curing glue |
| BX51WI Microscope | Olympus Corporation | BX51WI | With 40X (N.A. 0.8) water immersion objective lens |
| Spinning disk confocal microscope system | PerkinElmer, Inc. | With 491 nm laser | |
| Stereomicroscope | Nikon Instruments | SMZ-800 | Attached to a swing arm. Stereo view is still available with video recording |
| Gampi-Washi paper | Haibara, Japan | A special kind of traditional Japanese paper | |
| CCD camera | Imaging Source | DFK41AU02 | 1/2" 1080 × 960 pixels SONY CCD |
| Joystick manipulator | Narishige International | MN-151 | |
| Injector | Narishige International | IM-5B |