Submit
Browse  

The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Arabic was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE Immunology and Infection

الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

, ,

Department of Medicine, Division of Pulmonary, Allergy and Critical Care Medicine, Emory University and Atlanta VA Medical Center

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE Immunology and Infection. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 67.202.9.192, User IP: 67.202.9.192, User IP Hex: 1137314240

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

Reddy, A. T., Lakshmi, S. P., Reddy, R. C. Murine Model of Allergen Induced Asthma. J. Vis. Exp. (63), e3771, doi:10.3791/3771 (2012).

Abstract: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

الربو هو سبب رئيسي للمرض والوفاة، مما يؤثر على نحو 300 مليون شخص في جميع أنحاء العالم. 1 اكثر من 8٪ من سكان الولايات المتحدة مصاب بالربو، مع الانتشار المتزايد. 2 كما هو الحال مع غيرها من الأمراض، النماذج الحيوانية من مرض حساسية مجرى الهواء إلى حد كبير تسهيل فهم الفيزيولوجيا المرضية الكامنة، وتساعد في تحديد الأهداف العلاجية المحتملة، والسماح للاختبار قبل السريرية لعلاجات جديدة محتملة. وقد وضعت نماذج من مرض حساسية الشعب الهوائية في عدة أنواع من الحيوانات، ولكن نماذج الفئران هي جاذبية خاصة نظرا لانخفاض التكلفة وسهولة، والجهاز المناعي جيدا تتميز هذه الحيوانات. 3 توفر مجموعة متنوعة من السلالات المعدلة وراثيا يزيد من جاذبية من هذه النماذج. 4 ونحن هنا وصف نموذجين من الفئران مرض حساسية الشعب الهوائية، على حد سواء كما ovalbumin توظيف للمستضد. بعد توعية الأولية عن طريق الحقن داخل الصفاق، نموذج واحد delivالمتطلبات البيئية التحدي مستضد بالإرذاذ، والآخر عن طريق التسليم داخل الرغامى. ويقدم هذان الجهازان المزايا التكاملية، مع كل محاكاة السمات الرئيسية لمرض الربو الإنسان. 5

السمات الرئيسية لمرض الربو الحاد وتشمل استجابة مجرى الهواء مبالغ فيه للمنبهات مثل methacholine (مجرى الهواء فرط الاستجابة؛ AHR) ويوزينية الغنية التهاب الشعب الهوائية. وهذه هي أيضا آثار بارزة من التحدي حساسية في نماذجنا الفئران، 5،6 وصفنا لهم تقنيات لقياس وتقييم وبالتالي آثار التلاعب التجريبية. على وجه التحديد، وصفنا على حد سواء الغازية وغير الغازية 7-8 تقنيات لقياس فرط الاستجابة مجرى الهواء، فضلا عن أساليب تقييم تسلل من الخلايا الالتهابية في الشعب الهوائية والرئة. يتم جمع خلايا الشعب الهوائية التهاب القصبات بواسطة غسيل بينما يستخدم الرئة التشريح المرضي لتقييم علامات على وجود التهاب في جميع أنحاء الجهاز. هؤلاءتقنيات توفر أدوات قوية لدراسة مرض الربو في السبل التي لن يكون من الممكن في البشر.

Protocol: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

أولا توعية مسببات الحساسية والتحدي (انظر الشكل 1)

أ للحصول على التحدي داخل الرغامى

  1. لتوعية الأولية، حقن C57BL ذكرا أو أنثى / 6 أو BALB / ج الفئران (6-8 أسابيع من العمر) intraperitoneally في اليوم 0 ومرة ​​أخرى في يوم 7 مع 20 ميكروغرام من ovalbumin (OVA؛ سيغما الدريخ، وسانت لويس، MO) مستحلب في 0.2 مل من الفوسفات معقم مخزنة المالحة (PBS) التي تحتوي على 2 ملغ من هيدروكسيد الألومنيوم (سيغما الدريخ) أو. مع 2 ملغ هيدروكسيد الألومنيوم في 0.2 مل من برنامج تلفزيوني العقيمة والسيطرة
  2. التحدي مع المستضد بالشكل المناسب (على سبيل المثال، في أيام 14 و 16 و 18 و 20). الإجراء التحدي التالي.
  3. تخدير الفأر مع حقنة (IP) داخل الصفاق من خليط من الكيتامين (90 ملغ / كلغ)، وزيلازين (10 ملغ / كلغ). ضمان الفأر هو تخدير كامل مدة لا تقل عن 10 دقيقة.
  4. زاوية سطح العملية على 45 درجة أو أكثر. الماوس مكان على سطح هذا الجانب حفظ بطني إلى أعلى ورأسه إلى أعلى.
  5. تي هوكhread تحت القواطع الأمامية لعقد رئيس الوراء. مستوى الكفوف مع بعضها البعض لضمان القصبة الهوائية هو مستقيم واستخدام شريط التسمية لعقد الساقين. نقع موقع الجراحية مع EtOH 70٪، ومسحة.
  6. تطبق bupivicaine (0.1 إلى 0.2 مل من محلول 0.25٪) موضعيا في موقع شق.
  7. ارتشف الجلد في الحلق مع ملقط والجذب نحو الخارج بلطف. جعل شق صغير عمودي مع مقص جراحي. تقليل حجم من شق.
  8. تحضير حقنة 1 مل مع 50 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني أو OVA 0.1٪ في برنامج تلفزيوني وأدخله في ماصة المتكررة (Tridak السائر، تورينغتون، ط م). أخذ ماصة في يد واحدة واستخدام أخرى لعقد النسيج الخلفي مع ملاقط وفضح القصبة الهوائية.
  9. عقد المحقنة كما موازية للالقصبة الهوائية ممكن، من خلال ادخال ابرة جدار القصبة الهوائية وحقن الحل.
  10. الحفاظ على الماوس في حقن اتجاه عمودي التالية لإتاحة الوقت لإيجاد حل لتسوية في الرئتين.
  11. بلطف وثيق مع sterilely منطقة الجرحملاقط وختم مع خياطة.
  12. الماوس مكان القص إلى أسفل على وسادة التدفئة والسماح له لاسترداد حتى الإسعافية تماما. بعد الانتعاش، وعودة الماوس لهذا الحيوان للرعاية ومراقبة ذلك يوميا لعلامات تورم مصلي، التهاب أو عدوى، وتفزر الجرح حتى يلتئم الجرح تماما.

ب. للحصول على تحدي بالإرذاذ

  1. توعية الفئران في اليوم 0 عن طريق الحقن داخل الصفاق من 20 ميكروغرام من OVA (سيغما الدريخ) مستحلب في 0.2 مل من برنامج تلفزيوني العقيمة التي تحتوي على 2 ملغ من هيدروكسيد الألومنيوم (سيغما الدريخ) أو مع 2 ملغ هيدروكسيد الألومنيوم في 0.2 مل من برنامج تلفزيوني العقيمة والسيطرة .
  2. في اليوم 14، وتعزيز التوعية عن طريق الحقن الملكية الفكرية على النحو المبين أعلاه.
  3. في يوم 21، 22، 23، ال 24 و ال 25 بعد الأولي للتوعية، والفئران التحدي من خلال التعرض لمدة 30 دقيقة إلى مرذذ OVA 1٪ أو برنامج تلفزيوني وحدها تسليمها عن طريق البخاخات بالموجات فوق الصوتية (Buxco بحوث النظم، Wilmington، NC).
  4. الفئران مكان في الغرفة الرئيسية للWBP؛ التأقلم منهم داخل غرفة تخطيط التحجم مدة لا تقل عن 10 دقيقة.
  5. مكان 1 مل من OVA 0.1٪ في برنامج تلفزيوني العقيمة أو برنامج تلفزيوني العقيمة وحدها، كما هو موضح في الخطوات 4-6 أدناه، من خلال كأس البخاخات. Nebulize لمدة 30 دقيقة.
  6. إزالة غموض الكأس وتجاهل أي حل المتبقية.
  7. لا يمكن أن يؤديها إرذاذ على جميع الفئران في وقت واحد باستخدام غرفة إرذاذ.

II. تقرير من فرط الاستجابة لمجرى الهواء Methacholine

أ قياس نونينفاسيفي من فرط الاستجابة مجرى الهواء بواسطة كامل الجسم تخطيط التحجم (WBP؛ Buxco بحوث النظم، ويلمنجتون، NC)

  1. السماح للزجاجة methacholine مسحوق لتسخين إلى درجة حرارة الغرفة قبل فتح (methacholine هو استرطابي للغاية، وسوف تشكل كتل عديمة الفائدة إذا ما سمح لامتصاص الماء). إعداد 200 ملغ / مل حل الأوراق المالية في برنامج تلفزيوني العقيمة، ثم جعل المسلسل 2-أضعاف التخفيفات (على سبيل المثال، 100، 50، 25، 12.5 و 60.25 ملغ / مل). تبقى الحلول الباردة.
  2. إعداد المعدات على النحو التالي: ربط مدخل الرئيسي للWBP إلى البخاخات، والتحيز للتدفق مدخل إلى مضخة الهواء، وWBP منفذ إلى فخ باستخدام غاز ضيقة أنابيب مطاطية. نعلق محول الضغط على سد المنافذ من الغرف الرئيسية والمرجعية لWBP. ربط محول الضغط على المضخم مع الكابلات المقدمة، وربط المضخم إلى جهاز الكمبيوتر باستخدام بيانات محددة اقتناء بطاقة.
  3. معايرة المضخم استخدام البرنامج وفقا لتوصيات الشركة الصانعة.
  4. الفئران مكان في الغرفة الرئيسية للWBP؛ التأقلم منهم داخل غرفة تخطيط التحجم مدة لا تقل عن 10 دقيقة، ثم قراءات أساسية سجل (Penhbase) لمدة 3 دقائق.
  5. مكان 1 مل من برنامج تلفزيوني العقيمة في كأس البخاخات. Nebulize لمدة 2 دقيقة ثم مراقبة المتغيرات في الجهاز التنفسي للحصول على حد أدنى 6 إضافية خلال مرحلة التجفيف. إزالة غموض الكأس وتجاهل أي برنامج تلفزيوني المتبقية.
  6. مكان 1 مل من methacholine ملغ / مل 6،25 في كأس البخاخات وصEPEAT إرذاذ لمدة 2 دقيقة، بالإضافة إلى دورة الرصد 6 دقيقة.
  7. كرر قياس مع 12.5 و 50 و 25 و 100 ملغ / مل methacholine، باستخدام نفس الفترة إرذاذ 2 دقيقة و 6 دقائق دورة الرصد.
  8. إزالة الفئران من الدوائر وإعادتها إلى أقفاصها.
  9. عبوة البخاخات كوب مع 1 مل من برنامج تلفزيوني العقيمة وتشغيل آخر تسلسل تدفق الأنبوب.
  10. إيقاف تدفق الهواء، وتفكيك، والقضاء تنظيف جميع الغرف قبل تشغيل مجموعة ثانية من الحيوانات.

B. القياس الغازية من الاستجابة مجرى الهواء بواسطة الكمبيوتر التي تسيطر عليها جهاز التهوية (flexiVent؛ SCIREQ شركة، مونتريال، كندا)

  1. وزن الماوس وتخدير عن طريق الحقن (IP) داخل الصفاق من 60 ملغ لكل كيلوغرام هيئة الصوديوم الوزن بنتوباربيتال.
  2. بعد موقف مناسب، تخدير الفئران ventro-ظهريا لفتح القصبة الهوائية.
  3. تطهير جلد الرقبة مع الايثانول 70٪. تطبق bupivicaine (0.1 إلى 0.2 مل من محلول 0.25٪) موضعيا في أناncision موقع. شق وفتح جلد الرقبة. فصل عضلات الرقبة وفضح القصبة الهوائية.
  4. تقدم 1 - 2 ملم شق في القصبة الهوائية مع مقص غرامة (أن تكون على يقين بعدم قطع القصبة الهوائية)، وإدراج أنبوب القصبة الهوائية بحذر. ادراك التعادل خياطة حول القصبة الهوائية لمنع تسرب الهواء.
  5. وضع الماوس في الجسم غرفة مخطاط التحجم وتوصيل أنبوب القصبة الهوائية تضاف إلى جهاز التنفس الصناعي.
  6. بدء التهوية الميكانيكية. مجموعة مناسبة معدل التنفس وحجم المد والجزر / السكتة الدماغية (150 السكتات الدماغية / دقيقة وميكرولتر 200، على التوالي للماوس 20 ز). مما لا شك فيه أن الصدر يتحرك في التزامن مع جهاز التنفس الصناعي. إذا كان الماوس هو "القتال" مع التنفس الصناعي (الذاتي التنفس)، وضخ مزيد من مخدر وانتظر التزامن.
  7. بعد قياسات خط الأساس، والحفاظ على الفئران تحت التهوية خط الأساس لآخر 3 دقيقة، ثم أخذ في الثانية 2 مجموعة من القياسات مقاومة. وتستخدم هذه الثانية 2 مجموعة من قياسات خط الأساس لأحسبulate القيم الأساسية يعني.
  8. تقديم برنامج تلفزيوني أو methacholine (صحة الأم والطفل) التحديات (6.25 و 12.5 و 25 و 50 و 100 ملغ / مل) من خلال توجيه تدفق الشهيق من جهاز التنفس الصناعي عن طريق البخاخات بالموجات فوق الصوتية.
  9. بعد كل تحد مع صحة الأم والطفل (6.25 و 12.5 و 25 و 50 و 100 ملغ / مل)، عودة المكبس إلى إلقاء فاتو من 10 مل / كغ في 120 الأنفاس / دقيقة وأخذ قياسات مقاومة.

ثالثا. قياس التسرب الخلوي في المجال الجوي

ألف يؤدون الشعبى غسيل (بال)

  1. بعد قياس AHR، الموت ببطء الفئران مع CO 2، ووضع كل فأر على ظهرها على لوحة العمليات الجراحية.
  2. نقع في المنطقة مع EtOH 70٪.
  3. تبدأ في أسفل البطن، وقطع فتح تجويف البطن وازالة الجلد / العلوي في العضلات، وتتحرك صعودا باتجاه الأضلاع.
  4. مرة واحدة في الأضلاع واضحة، واستخدام المقص لثقب بعناية الحجاب الحاجز. وينبغي أن تنهار الرئتين بعيدا عن الحجاب الحاجز. يكون كاليفورنيا خاصةreful ليس لنيك في الرئتين أو القلب.
  5. قطع القفص الصدري للكشف تماما عن الرئتين / قلب (تجنب قطع أي الأوعية الدموية الرئيسية للحفاظ على الدم من ملء الموقع).
  6. باستخدام حقنة 1 مل مع إبرة قياس 27 (دينار بحريني الحقن، فرانكلين البحيرات، ونيو جيرسي)، ثقب البطينين في القلب وببطء وبعناية سحب الحقنة لجمع الدم. أن تحرص على تجنب انهيار القلب.
  7. جمع المصل من هذا الدم باستخدام بروتوكول قياسي. متجر في -70 درجة مئوية حتى استخدامها.
  8. قطع الجلد والنسيج من الحلق حتى يتم كشف القصبة الهوائية. ازالة الانسجة كاف للعمل بسهولة في هذا المجال (ومرة أخرى، وتجنب قطع أي الأوعية الدموية الرئيسية).
  9. باستخدام مقص المنحني، وقطع القصبة الهوائية تحت لتمهيد الطريق.
  10. تمرير وجهة الملقط المنحني تحت القصبة الهوائية وفهم في نهاية قطعة من الخيط. رسم خيوط الجروح تحت القصبة الهوائية.
  11. ربط فضفاضة نصف عقدة حول القصبة الهوائية، وانخفاض في الحلق.
  12. Carefقطع ully الشق، وتكون كافية من حيث الحجم بالنسبة للقنية، وفوق خيوط الجروح.
  13. إدراج بعناية قنية في حفرة وأسفل القصبة الهوائية بعد نقطة من خيوط الجروح. اضغط بلطف إلى الأمام حتى قنية يظهر فقط عند مدخل إلى الرئتين (بعيدا جدا: ثقب الرئتين؛ قصيرة جدا: انهيار القصبة الهوائية عند محاولة استرداد BAL).
  14. شد خيوط الجروح وعقدة كاملة لاغلاق القصبة الهوائية حول قنية.
  15. قفل محقنة (التي تحتوي على 1 مل PBS) على قنية، ثم اضغط بلطف السائل في الرئة. وينبغي أن فصوص الرئة تضخم بشكل فردي ببطء. لا تبالغ في التعبئة. لكامل نمت مل 0،9-1،0 الماوس هو الحد الأقصى المطلق. قد 0.8 مل يكون أكثر أمانا. قفل حقنة فضفاضة لقنية، وإلا فإنه من المحتمل أن تسبب أضرارا عند محاولة فك الارتباط.
  16. سحب السوائل من الرئتين. إذا واجه مقاومة (النسيج الانزلاق الى قنية)، اضغط قنية مزيد ببطء في الرئة، واستئناف إزالة. حاول أيضا تناوب قنية في مكان. إذا كان كل ELSه فشل سحب الطريق جزء قنية، والقصبة الهوائية هي أكثر عرضة للانهيار في هذه القضية.
  17. فصل حقنة من قنية، ودائع BAL السائل في وعاء، وكرر 2 مرات مع حل برنامج تلفزيوني جديد.
  18. الحفاظ على حل BAL على الجليد حتى نسج أسفل.
  19. استخدم السائل BAL والمصل لقياس إيج OVA محددة باستخدام الماوس المتاحة تجاريا إيج إليسا مجموعات (MD المنتجات الاحيائية، وسانت بول، مينيسوتا).

ب عد الخلايا وتحديد فروق

  1. أجهزة الطرد المركزي في بال السائل 5 دقائق في ~ غ × 600، 4 درجات مئوية.
  2. Resuspend لبيليه في برنامج تلفزيوني خلية بلطف والحفاظ على الجليد.
  3. تحميل عدادة الكريات نويباور القياسية في تعليق خلية المخفف والاعتماد على الخلايا.
  4. إزالة aliquots من 2 × 10 4 خلايا في 10-40 حجم ميكرولتر لcytospins. تمييع الخلايا إذا لزم الأمر.
  5. لcytospins، خلط 2 × 10 4 خلايا و 130 برنامج تلفزيوني و 10 ميكرولتر FBS ميكرولتر. إضافة خليط كامل الخلية إلى دوبلو cytospin قمع الطرد المركزي و10 دقيقة في 700 دورة في الدقيقة، وذلك باستخدام cytoslides مزدوجة للعينات مكررة.
  6. السماح للشرائح حتى يجف في درجة حرارة الغرفة لمدة 1 ساعة قبل التلوين.
  7. وصمة عار على الشرائح باستخدام الفرق السريع وصمة عار (سيمنز، ونيوارك، DE).

رابعا. ممثل النتائج

الإفراط في انقباض الشعب الهوائية بعد المحفزات استفزازي هو سمة بارزة من سمات الربو السريرية. ونحن تصف طريقتين لقياس مثل فرط الاستجابة لمجرى الهواء لدى الفئران methacholine OVA-توعية وتحدى: كامل الجسم تخطيط التحجم (الشكل 2)، والتذبذب القسري باستخدام نظام flexiVent (الشكل 3). كلا طرق إثبات أن التوعية OVA والتحدي ينتج فرط الاستجابة مجرى الهواء لدى الفئران.

يوزينية الغنية التهاب الشعب الهوائية هو ميزة أخرى بارزة في كل من الربو والحساسية السريرية مرض مجرى الهواء لدى الفئران. كما هو مبين في الشكل (4)

الأدلة تشير إلى أن مرض حساسية الشعب الهوائية ينتج عن الإفراط في إنتاج الأجسام المضادة لمستضدات توعية. التوعية والتحدي مع OVA باستخدام البروتوكولات وصفنا يزيد من مستويات إيج في كل من المصل وسائل BAL من الفئران التي عولجت (الشكل 5).

الشكل 1
الشكل 1. وكان مخطط تجريبي للOVA الناجم عن الحساسية والربو. الفئران توعية الملكية الفكرية مرتين مع 20 ميكروغرام من OVA مستحلب في 2 ملغ من هيدروكسيد الألومنيوم في 0.2 مل من برنامج تلفزيوني العقيمة، أو 2 ملغ من هيدروكسيد الألومنيوم في 0.2 مل من وحده في برنامج تلفزيوني العقيمة، ثم في نقاط الوقت الذي يحدده هو التحدي مع 0.1٪ OVA أو العقيمة الحل في برنامج تلفزيوني أو من قبل السابقين يوميا posure لمدة 30 دقيقة إلى مرذذ OVA 1٪ في برنامج تلفزيوني أو برنامج تلفزيوني القى وحده عن طريق البخاخات بالموجات فوق الصوتية (Buxco). أربع وعشرين ساعة بعد التعرض OVA النهائي، وتم تحديد مجرى الاستجابة. بعد ذلك، تم جمع السائل BAL، عينات من الدم، وخلايا سرطان الرئة، وأنسجة لمزيد من التحليل.

الشكل 2
الشكل 2. وكانت الفئران تقييم حساسية التي يسببها فرط الاستجابة مجرى الهواء بطريقة موسع. (ن = 4/group) توعية وتحدى مع OVA. أربع وعشرين ساعة بعد التحدي الأخير، تم تحديد مجرى الهواء لفرط الاستجابة methacholine استنشاق باستخدام كامل الجسم تخطيط التحجم كما هو موضح في البروتوكول. تم تحديد بنوم، وأعربت عن مثل نسبة بنه (متوسط ​​بنوم على مدى فترة زمنية 8 دقيقة مع methacholine مقسوما على بنوم المتوسط ​​على مدى الفترة من 8 دقائق مع PBS). *، P <0.05 مقابل برنامج تلفزيوني.

iles/ftp_upload/3771/3771fig3.jpg "/>
الشكل 3. وكانت الفئران تقييم حساسية التي يسببها فرط الاستجابة مجرى الهواء باستخدام أسلوب الغازية (التذبذب القسري). (ن = 4/group) توعية وتحدى مع OVA. أربع وعشرين ساعة بعد التحدي الأخير، تم تحديد مجرى الهواء فرط الاستجابة إلى زيادة تركيزات methacholine المستنشق من التذبذب القسري (flexiVent) الأسلوب كما هو موضح في البروتوكول. ومقاومة مجرى الهواء، B) ج) مرانية الرئة. *، P <0.05 مقابل برنامج تلفزيوني.

الشكل 4
الشكل 4. وكانت BAL عدد خلايا السائل. الفئران (ن = 4/group) توعية وتحدى مع OVA. أربع وعشرين ساعة بعد التحدي الأخير، (أعلى) وقد تم جمع الخلايا بال واحصي مجموع الخلايا كما هو موضح في البروتوكول. (القاع) وكانت الشرائح Cytospin صrepared وملطخة الفرق السريع. TOT = مجموع الخلايا؛ إيوس = الحمضات؛ نوي = العدلات؛ ماك = الضامة؛ الصفوة = الخلايا اللمفية. *، P <0.05 مقابل برنامج تلفزيوني.

الشكل 5
الشكل 5. OVA محددة فريق الخبراء الحكومي الدولي. وكانت الفئران (ن = 4/group) توعية وتحدى مع OVA. أربع وعشرين ساعة بعد التحدي الأخير، وقد تم قياس إيج في بال وسائل في مصل الدم من الدم التي تم جمعها بواسطة ثقب في القلب كما هو موضح في البروتوكول. *، P <0.05 مقابل برنامج تلفزيوني.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

النماذج الحيوانية لمرض حساسية الشعب الهوائية التي توفر أدوات مهمة للدراسات ذات الصلة الربو السريرية. وقد تم تطوير عدد من نماذج مختلفة، وتوظيف أنواع مختلفة ومولدات المضادات. الماوس، وهي الأنواع مختبر جذابة وتستخدم في كثير من الأحيان، كما يقدم عددا من المزايا لنماذج من مرض حساسية الشعب الهوائية. 9،10 على الرغم من أن مثل هذه النماذج لا تحاكي الربو في كل احترام، و 11 مع جوانب من الأمراض المزمنة كونها صعبة للغاية لإعادة إنتاج، 12،13 نؤكد هنا أن ترد العديد من الميزات الرئيسية. نعرض أيضا، كما هو الحال في الربو الإنسان، وترتبط هذه الميزات مع الزيادات في مستضد محدد فريق الخبراء الحكومي الدولي في كل من المصل وسائل BAL. نقدم نموذجين الفئران، على حد سواء OVA توظيف مثل المستضد لكن استخدام تقنيات تحديا مختلفا. إدارة داخل الرغامى معقد بعض الشيء، وتستغرق وقتا طويلا، ولكنه لا يتيح الاستفادة من تقديم كمية معروفة من المستضد مباشرة إلىالرئة. ومن الممكن أيضا أن هذه الطريقة توفر للمستضد أكثر عميقا في الرئة من البدائل القيام به. وصفنا أسلوبا الغازية للتسليم داخل الرغامى، ولكن يمكن أيضا مستضد يتم تسليم intratracheally عن طريق أنبوب أو قنية إدراجها عن طريق تجويف الفم. يوصف هذا الأسلوب في مكان آخر في [جوف]. 14 إرذاذ هو أبسط وأكثر مباشرة يقلد الطريق المعتاد لتعرض الإنسان. تحديد الكميات المتغير هو أكثر، ومع ذلك، وربما تسليم إلى الرئة تكون أقل كفاءة. 15 وبالفعل، فمن المحتمل أن يترسب جزء كبير ولكن غير معروف من الجرعة في الشعب الهوائية العليا. البديل الثالث، وليس وصفها هنا، هو تسليم داخل الأنف. مرة أخرى، فمن المرجح أن تودع جزء كبير من الجرعة في الشعب الهوائية العليا.

على الرغم من أن يتم تنفيذ مظاهرة لدينا باستخدام C57BL / الفئران 6، تشير الدلائل إلى أن بعض سلالات أخرى قد تعطي نتائج أكثر قوة في النهاية محددة. في مقارنات من C57BL / 6 BALB / ج 16 أو مع كل من BALB / ج وFVB / نيو جيرسي الفئران 17، وأظهرت الفئران C57BL / 6 أصغر زيادة في AHR. من ناحية أخرى، أظهرت C57BL / 6 الفئران أكبر الزيادات في كثرة اليوزينيات في دراسة واحدة 16 ولكن ليس في غيرها. الارتفاعات سايتوكاين 17 كان كل من سلالة وخلوى محددة. قد يفضل سلالة تعتمد بالتالي على نقطة النهاية التي تعتبر الأكثر أهمية.

عادة يتم اختيار اثنين من الملامح الرئيسية لمرض حساسية الشعب الهوائية للتقييم من أجل تحديد آثار التلاعب التجريبية: AHR ومدى التهاب الشعب الهوائية. ويمكن قياس AHR إما عن طريق كامل الجسم تخطيط التحجم (WBP) أو عن طريق التذبذب القسري. في كلتا الحالتين، يتم استخدام methacholine والتحدي الاستفزازي. WBP هو وظيفي في قياس الجسم الحي الذي يتيح تحليل التفاعلات الهوائية على واعية، والتنقل بحرية أو الفئران مقيدة بالحد الأدنى من دون جراحة والتخدير. وأعرب عن الاستجابة مجرى الهواء باستخدام"وقفة المعزز" (بنوم) كمعلمة من وظيفة التنفس تتغير. بنوم هي معلمة التجريبية التي تعكس التغييرات في مربع الموجي تدفق من كل من إلهام وانتهاء الصلاحية ويجمع بينه والمقارنة بين المبكرة والمتأخرة تدفق مربع الزفير. WBP لديه العديد من المزايا المحتملة مقارنة مع وسائل الغازية لقياس مقاومة الرئة، لأنه أقل تطلبا من الناحية الفنية، ويتيح قياس استجابة الشعب الهوائية إلى المنشطات رذاذ. هذا الأسلوب يقلل من كلا آثار الضغط النفسي والحيوان الوقت اللازم لإعداد، مما يجعلها مثالية للقياسات المتكررة (فحص الحيوان نفسه في نقطة زمنية مختلفة)، وقياس مدى فترات طويلة من الوقت (> 24 ساعة)، وخلالها مجموعة متنوعة من الهباء الجوي يمكن أن أن تدار بطريقة يمكن التحكم بها وقابلة للتكرار. نتائج ترتبط بقوة مع تلك الأساليب الغازية، ولكنه أسرع وأسهل.

طريقتين موسع البديل توفير قياسات التي يقالعلى أن تكون أكثر مباشرة تتعلق انقباض الشعب الهوائية. في غرفة مزدوجة تخطيط التحجم يجبر الماوس لعصا رأسها من خلال ثقب في الجزء الأمامي من غرفة thoracoabdominal. 18 يتم تركيبها بعد ذلك غرفة الأنف إلى الجزء الأمامي من غرفة thoracoabdominal ويتم قطع رأس حفرة في الفيلم المطاط مانعة للتسرب بين المجلسين. هذا الثقب هو الحجم على وجه التحديد لتوفير ختم محكمة الغلق بين الغرف دون تقييد تدفق الهواء في الجهاز التنفسي. ثم يتم أخذ القياسات Plethysmographic في كلا المجلسين، وتستخدم لتأخير بين التدفقات الأنف وthoracoabdominal لحساب مقاومة مجرى الهواء محددة (sRaw). رئيس التدريجي تخطيط التحجم يشبه إلا أن تدفق الهواء بحرية في غرفة الأنف ويتم إجراء أية قياسات plethysmographic هناك. 19 والمعلمة الأولية المحسوبة معدل التدفق في مرحلة midexpiratory (EF 50). كلا تقنيات، مثل WBP، هي مناسبة للقياسات المتكررة على مدى عدد من ساعات، والسماح بتقييم بالردود الغير المبكرة والمتأخرة. ومع ذلك، على حد سواء تتطلب هذه الحيوانات الى ضبط النفس، والتي يمكن أن تؤدي إلى نتائج غير منتظمة إلا إذا اعتادوا على الحيوانات إلى الجهاز على مدى عدة أيام. يمكن أن يكون من الصعب أيضا لضمان وجود فعال محكمة الغلق ختم، وهو أمر ضروري في كلتا الحالتين. وعلاوة على ذلك، على حد سواء منذ بنوم sRaw ولقد تبين أن ترتبط بقوة مع القياسات الغازية، وثبت بنوم وsRaw لربط مباشرة في خنازير غينيا، و 20 ويمكن التساؤل عما إذا كانت المعلومات الإضافية التي تم الحصول عليها يبرر صعوبة زيادة التجريبية.

في أسلوب التذبذب القسري، وtracheotomized الفئران تخدير عميق، ويتم توصيل جهاز التنفس الصناعي الميكانيكي للأنبوب. ضغط تدفق القياسات مثل التنفس الصناعي يضخم وتفرغ في الرئة ثم السماح للقياس المباشر للمقاومة الرئوي والامتثال ديناميكي. هذا يوفر معلومات حول الميكانيكا الهوائية التي لا تتوفر مع WBP. للالتذبذب دائرة الهندسة المدنية من الناحية التقنية أكثر صعوبة، ومع ذلك، وعادة ما يكون الإجراء محطة. كما النهاية التجريبية، الإجراءين تعطي عادة نتائج مماثلة. 19

ميزة أخرى بارزة من الربو السريرية تستخدم عادة لتقييم تأثير المعالجات التجريبية في الفئران مرض حساسية الشعب الهوائية هو التهاب اليوزيني. على الرغم من أن يمكن قياس الجوانب الأخرى للالتهاب أيضا، وهذا الأكثر شيوعا ينطوي على تحديد مدى من الخلايا الالتهابية (يوزينية خاصة) تسلل إلى الشعب الهوائية والرئة، أو على حد سواء. يتم تحديد عدد ونوع من الخلايا في الشعب الهوائية في بال السائل: يتم تحديد عدد الخلايا الأولى مجموع عد في عدادة الكريات، ومن ثم يتم تحديد نوع الخلية التي cytospin تلطيخ الفرق التالية. على الرغم من أن يمكن من حيث المبدأ BAL جمع السائل أن يؤديها في الفئران الحية، كما هو الحال في البشر، فمن عادة أكثر وسهولة تنفيذها بعد القتل الرحيم. يوزينيةويتم تقييم تسلل إلى الرئتين عن طريق الاستئصال الرئة تليها تقنيات الأنسجة القياسية.

وفي بعض الحالات قد يكون من المفيد أيضا لتقييم مدى حساسية مستضد والتحدي يحفز القدح (المنتجة للمخاط) تكاثر الخلايا. ويتم إنجاز هذا بسهولة عن طريق تلطيخ المقاطع الرئة مع لحمض شيف الدوري، والذي هو محدد للمخاط. ويمكن أيضا مستضد محدد فريق الخبراء الحكومي الدولي يمكن قياسها في بال وسائل المصل باستخدام مجموعات متاحة بسهولة. قد يكون من المهم قياس إيج في الأماكن التي يكون فيها درجة من الحساسية، كما تختلف عن استجابة نهاية الجهاز، معلمة حاسم. هناك طائفة واسعة من القياسات الأخرى، بما فيها السيتوكينات والاستجابات تي خلية، التي هي ملاحق قيمة لدراسة مرض حساسية الشعب الهوائية في النماذج الحيوانية أننا لم الموصوفة هنا. فهي تشكيلة واسعة من الاستجابات ذات الصلة التي التوعية مستضد والتحدي يمكن أن تثير مثل هذه النماذج التي تجعل قيمة في عشيقذ من هذا المرض.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

وأجريت التجارب على الحيوانات وفقا للمبادئ التوجيهية واللوائح التي وضعتها اللجنة اتلانتا IACUC VAMC تحت بروتوكول # V010-10.

Acknowledgements: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة جرانت HL093196 (RCR) وأتلانتا ومؤسسة بحوث التربية والتعليم (عارف).

Materials: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

Name Company Catalog Number Comments
Ovalbumin Sigma-Aldrich A5503
Aluminum hydroxide Sigma-Aldrich 239186
Acetyl-β-methylcholine chloride Sigma-Aldrich A2251
Pentobarbital sodium salt Sigma-Aldrich P3761
Whole body plethysmography (WBP) system Buxco Research Systems http://www.buxco.com
FlexiVent SCIREQ, Inc. http://www.scireq.com
Light microscope Leica Microsystems
Cytospin 4 Thermo Fisher Scientific, Inc.
Diff-Quick stain Siemens AG B4132-1A
Repetitive pipette Tridak STP4001-0025

References: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

  1. Braman, S.S. The global burden of asthma. Chest. 130, 4S-12S (2006).
  2. Akinbami, L.J., Mooman, J.E., & Liu, X. Asthma Prevalence, Health Care Use, and Mortality: 2005-2009. National Health Statistics Reports 32, National Center for Health Statistics, Hyattsville, MD, (2011).
  3. Bates, J.H., Rincon, M., & Irvin, C.G. Animal models of asthma. Am. J. Physiol. Lung. Cell. Mol. Physiol. 297, L401-410 (2009).
  4. Drazen, J.M., Finn, P.W., & De Sanctis, G.T. Mouse models of airway responsiveness: physiological basis of observed outcomes and analysis of selected examples using these outcome indicators. Annu. Rev. Physiol. 61, 593-625 (1999).
  5. Epstein, M.M. Do mouse models of allergic asthma mimic clinical disease? Int. Arch. Allergy Immunol. 133, 84-100 (2004).
  6. Blyth, D.I., Pedrick, M.S., Savage, T.J., Hessel, E.M., & Fattah, D. Lung inflammation and epithelial changes in a murine model of atopic asthma. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 425-438 (1996).
  7. Martin, T.R., Gerard, N.P., Galli, S.J., & Drazen, J.M. Pulmonary responses to bronchoconstrictor agonists in the mouse. J. Appl. Physiol. 64, 2318-2323 (1988).
  8. Hamelmann, E., et al. Noninvasive measurement of airway responsiveness in allergic mice using barometric plethysmography. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 156, 766-775 (1997).
  9. Gelfand, E.W. Pro: mice are a good model of human airway disease. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 166, 5-6, discussion 7-8 (2002).
  10. Shapiro, S.D. Animal models of asthma: Pro: Allergic avoidance of animal (model[s]) is not an option. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 174, 1171-1173 (2006).
  11. Zosky, G.R., et al. Ovalbumin-sensitized mice are good models for airway hyperresponsiveness but not acute physiological responses to allergen inhalation. Clin. Exp. Allergy. 38, 829-838 (2008).
  12. Nials, A.T. & Uddin, S. Mouse models of allergic asthma: acute and chronic allergen challenge. Dis. Model. Mech. 1, 213-220 (2008).
  13. Wenzel, S. & Holgate, S.T. The mouse trap: It still yields few answers in asthma. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 174, 1173-1176, discussion 1176-1178 (2006).
  14. Rayamajhi, M., et al. Non-surgical Intratracheal Instillation of Mice with Analysis of Lungs and Lung Draining Lymph Nodes by Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (51), e2702, DOI: 10.3791/2702 (2011).
  15. Swedin, L., et al. Comparison of aerosol and intranasal challenge in a mouse model of allergic airway inflammation and hyperresponsiveness. Int. Arch. Allergy Immunol. 153, 249-258 (2010).
  16. Gueders, M.M., et al. Mouse models of asthma: a comparison between C57BL/6 and BALB/c strains regarding bronchial responsiveness, inflammation, and cytokine production. Inflamm. Res. 58, 845-854 (2009).
  17. Zhu, W. & Gilmour, M.I. Comparison of allergic lung disease in three mouse strains after systemic or mucosal sensitization with ovalbumin antigen. Immunogenetics. 61, 199-207 (2009).
  18. Flandre, T.D., Leroy, P.L., & Desmecht, D. J. Effect of somatic growth, strain, and sex on double-chamber plethysmographic respiratory function values in healthy mice. J. Appl. Physiol. 94, 1129-1136 (2003).
  19. Hoymann, H.G. Invasive and noninvasive lung function measurements in rodents. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 55, 16-26 (2007).
  20. Chong, B.T., Agrawal, D.K., Romero, F.A., & Townley, R.G. Measurement of bronchoconstriction using whole-body plethysmograph: comparison of freely moving versus restrained guinea pigs. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 39, 163-168 (1998).

Ask the Author: الفئران نموذج من الربو المستحثة مسببات الحساسية

1 Comment

Dear Sir,

Could you send this video to me? Because I need it to study asthma. Thanks!


Chih-Hong

1

Reply

Posted by: Chih-Hong W.January 13, 2013, 8:29 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter