The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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1Department of Pharmacology, University of Medicine and Dentistry of New Jersey-Robert Wood Johnson Medical School, 2Department of Biomedical Engineering, Rutgers University
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Islam, M. M., Doh, S. T., Cai, L. In Ovo Electroporation in Embryonic Chick Retina. J. Vis. Exp. (60), e3792, doi:10.3791/3792 (2012).
La retina embrionaria de pollo es una excelente herramienta para estudiar el desarrollo de la retina en los vertebrados superiores. Debido al enorme tamaño y desarrollo externo, es comparativamente muy fácil de manipular la retina de embriones de pollo con ADN recombinante / tecnología de ARN. La electroporación de ADN / ARN construcciones dentro de la retina embrionaria tienen una gran ventaja para estudiar la regulación de genes en la retina células madre / progenitoras durante el desarrollo de la retina. Diferentes tipos de ensayos tales como la prueba del gen, la sobre-expresión del gen, el gen tumbar (shRNA), etc se puede realizar utilizando la técnica de electroporación. Este video muestra la inyección dirigida la retina y en la electroporación in ovo en la retina de embriones de pollo en el Hamburger y Hamilton etapa de 22-23, que es aproximadamente el día embrionario 4 (E4). Aquí nos muestran un rápido y conveniente en la técnica de electroporación in ovo por el cual un plásmido de ADN que expresa la proteína verde fluorescente (GFP) como marcador se entregarán directamente en elde embriones de pollo subretiniano espacio y seguido por pulsos eléctricos para facilitar la absorción de ADN por la retina células madre / progenitoras. El nuevo método de inyección de retina y la electroporación en E4 permite la visualización de todos los tipos de células retinales, incluyendo la neuronas tarde-nacido en 1, que ha sido difícil con el método convencional de inyección y la electroporación en E1.5 2.
Dado que algunas partes del protocolo se realizó tal como se ha descrito previamente en otros vídeos JOVE 2 y 3 papeles con modificación menor no vamos a discutir aquellos en detalle aquí.
1. Manejo de los huevos y preparación de la aguja
2. Inyección y electroporación
3. Los resultados representativos
En nuestro estudio, utilizamos diversas construcciones de plásmidos para estudiar la regulación de la expresión de genes que participan el desarrollo de células de la retina. En este vídeo pCAG-GFP (control de transfección) se utilizó para seguir una inyección exitosa y electroporación. Sin embargo, cualquier constructo plásmido con el gen reportero (GFP, RFP etc) se puede utilizar. A pesar de que la expresión de GFP puede ser visto como a las 8 horas después del elementoctroporation, que suelen comenzar la recolección del huevo en el día 6 (E6) y en adelante. Electroporated retinas fueron disecados del embrión y se analizaron bajo el microscopio de disección fluorescente antes de inclusión y corte. Típicamente, reportero de la expresión génica puede ser visto por lo menos en una cuarta parte de la retina después de una exitosa electroporación (Fig. 1). Los tejidos de la retina transfectadas fueron analizados a través de seccionamiento para una visualización clara de la morfología celular. La inmunohistoquímica con marcadores de células específicas del tipo (Brn3a, Pax6 etc) permite la caracterización de la expresión de GFP específico de las células (Fig. 2).

Figura 1. El éxito de la electroporación de expresión reportero GFP resultados positivos plásmido. Embriones de pollo retinas fueron inyectados y electroporated en el día embrionario 4 y cosechadas en el día embrionario 6. Al menos el 25% de la retina se transfectadas con éxito (Un punto de vista = Arriba, B= Vista desde abajo). Barra de escala = 1 mm.

Figura 2. Caracterización de las buenas prácticas agrarias expresando células de la retina mediante inmunohistoquímica. GFP expresando tejidos retina en la etapa de E7 se fija y se secciona. Estas secciones fueron teñidas con marcadores específicos de células diferentes. Brn3a se utilizó para determinar las células ganglionares (A) mientras Pax6 se utilizó para determinar amacrinas horizontal, y las células ganglionares (B). Barra de escala = 50 micras.
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Dirigida por inyección en la retina y la electroporación in ovo en la retina de embrión en la etapa E4 pueden dirigirse específicamente a las células retinianas progenitoras derivadas de la capacidad de visualizar todos los seis tipos principales de células de retina en el nivel de células individuales. En la electroporación in ovo en HH10 (~ E1.5) centradas en la vesícula óptica es capaz de transfectar células que se desarrollan para formar el ojo. Sin embargo, estas células tienen una rotación muy elevada en este momento y este método no es específico para células de la retina. Puede ser que la tasa de celda alta rotación impide la expresión sostenida estable. Por E4, el embrión está lo suficientemente desarrollado que las principales estructuras del ojo están todos formados pero lo suficientemente joven como que la mayoría de las células en la retina son las células madre todavía retinianas. Este método también se puede aplicar a ganar / pérdida de los estudios de función donde puede ser un gen de interés dirigidos a estudiar el desarrollo normal y / o enfermedad de la retina.
Después de publicada esta técnica en nuestroun artículo anterior, varios científicos en este campo en contacto con nosotros para obtener más ayuda en esta técnica. Así que decidimos producir este video para la visualización. Además, los avances en nuestra técnica se describen en este vídeo.
Para realizar esta técnica con éxito, a raíz de factores críticos que vale la pena describir.
El factor más importante es colocar la aguja, precisamente, en el espacio subretiniano. En primer lugar, hay que tener cuidado de alinear la aguja contra-lateral al haz principal de los vasos sanguíneos que entran en el ojo y apuntando hacia el pico. Esta posición es casi paralela a la del corazón y reduce la posibilidad de dañar el cerebro y el corazón. Cuando penetra a través de la membrana vitelina, la esclera, la retina y el humor vítreo, la aguja no debe viajar lejos y penetrar a través de una vena de sangre. Si la aguja es lo suficientemente nítida a continuación, esto se puede hacer muy fácilmente con pocas prácticas. El siguiente paso es poco a poco tirando hacia atrás ªcorreo aguja y posición que en el borde de la abertura de la retina. Siempre hay una oportunidad para tirar de él por completo. Si eso ocurre, entonces se puede volver a intentar poner la punta de la aguja de nuevo en la apertura. Colocación de la aguja en el espacio subretiniano (entre la esclerótica y la retina) requiere práctica y paciencia. En un principio, parece muy difícil, sin embargo con un poco de práctica se hace fácil. Mientras que la inyección de la solución de ADN en el interior del espacio subretiniano, es muy importante para observar la formación protuberancia. Posteriormente, la solución verde empieza a llenar el contorno del ojo, lo que indica una inyección exitosa. Si la solución se difunde quitan o empieza a llenar en la media del ojo, que indica una inyección incorrecta que no va a ceder una electroporación exitosa.
El segundo factor es la fabricación de una aguja óptima que se hace a través de calor-tirando de un tubo de vidrio capilar y romper la punta. Agujas con puntas grandes tienen dificultades para la perforación through la membrana vitelina que aumenta el riesgo de dañar la retina. Por lo general, más agudas puntas de las agujas son los mejores para este propósito. Sin embargo, la aguja con puntas muy pequeñas tienen dificultades para la carga y la entrega del ADN y tienen mayor probabilidad de romper en el interior del globo ocular. Por esta razón nos hacen que las agujas con una abertura de la punta en alrededor de 0,1 micras de diámetro y una conicidad de 20 mm 1. También, durante la carga de la mezcla de ADN a partir de una gotita en un trozo de Parafilm, es muy importante no para cargar el último bit de líquido a medida que aumenta las posibilidades de conseguir aire en el interior de la aguja.
Por último, la colocación de los electrodos es muy crítico para lograr electroporación exitosa. Los electrodos deben ser colocados en paralelo de manera que el desarrollo del ojo está situado entre los electrodos. La precaución adicional debe tomarse de tocar cualquiera de los principales vasos sanguíneos o el corazón con los electrodos. Dañar cualquiera de estos puede dar lugar a la muerte del embrión, incluso después de una exitosa Injectisobre. Además, los dos ojos están orientados de manera diferente. Por lo tanto, tiene que ser mantenido en mente para cambiar la orientación del electrodo (positivo vs negativo) de modo que el electrodo negativo debería ser siempre en el lado de inyección, para permitir la difusa ADN en las células de la retina bajo la corriente eléctrica.
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Todos los experimentos con animales fueron aprobados por el animal de Atención Institucional y el Comité de Servicios de la Universidad Rutgers.
Nos gustaría dar las gracias al Sr. Enver Maaz para el uso de su cámara de alta definición (Cannon VIXIA HFS100). Este trabajo fue apoyado en parte por subvenciones de NIH (EY018738), Nueva Jersey Comisión de Investigación de la Médula Espinal (08-3074-SCR-E-0 y 10-3091-SCR-0-E), y Busch Premio de Investigación Biomédica.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Fertilized pathogen-free (SPF) white leghorn chicken eggs | Sunrise Farms (Catskill, NY) | ||
| Chicken egg incubator | GQF Manufacturing | Model-1550 | Set to 60% humidity and 37.5°C. |
| Glass capillary tubes | World Precision Instruments, Inc. | TW150F-4 | |
| 0.1 ml syringe | Hamilton Co | Gastight 1710 | Alternatively 1ml syringe can be used as well |
| Masterflex Silicone (peroxide) Tubing | Cole-Parmer | HV-96400-13 | Cut a small piece (1 cm) for attaching the glass needle to the syringe |
| Tweezers | Dumont | AA | |
| Micromanipulator | World Precision Instruments, Inc. | M3301-M3 | |
| Plasmid DNA | pCAG-GFP was borrowed from Dr. Connie Cepko | ||
| Fast Green FCF | Sigma-Aldrich | F7252 | Dilute it to 0.025 % with PBS |
| Pulse generator | Harvard Apparatus | BTX ECM 830 | Square wave generator |
| Electrodes | Harvard Apparatus | BTX model 514 | Our electrodes were spaced 3-5 mm apart |
| Monochrome Digital Camera | Carl Zeiss, Inc. | Axiocam MRM | |
| Fluorescent Dissection Microscope | Leica Microsystems | Leica MZ16FA | |
| Upright Fluorescence Microscope | Carl Zeiss, Inc. | Zeiss Axio Imager A1 |
Do you think it would be possible to perform this teqnique on much older embryos, in ovo?
How do you confirm that the injection was in place?
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ReplyPosted by: Yael K.January 7, 2013, 6:38 AM