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Nemours Biomedical Research, Alfred I. duPont Hospital for Children
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Wu, C. Y., Whye, D., Mason, R. W., Wang, W. Efficient Differentiation of Mouse Embryonic Stem Cells into Motor Neurons. J. Vis. Exp. (64), e3813, doi:10.3791/3813 (2012).
功能运动神经元分化成胚胎干细胞(ES细胞)的直接代表一个有前途的资源,研究疾病机理,筛选新的药物化合物,并制定,如脊肌萎缩症(SMA)和肌萎缩性侧索硬化症的运动神经元疾病的新疗法( ALS)的。目前许多协议使用维甲酸(RA)和刺猬(SHH)的组合分化成运动神经元1-4小鼠胚胎干细胞(MES)。然而,mES细胞分化成运动神经元的效率只达到中等成功。我们已经开发了一个两步分化协议5,显着提高目前建立的协议相比,分化效率。第一步是Noggin与成纤维细胞生长因子(FGFs)的加入,以加强neuralization过程。 Noggin与骨形态发生蛋白(BMP)受体拮抗剂和被牵连在神经诱导1ccording神经发生和结果形成前神经图案6默认模型。 FGF信号协同诱导神经组织的形成,促进后神经身份7-9 Noggin的行为。在这一步,mES细胞被引两天,以促进对神经谱系分化与Noggin的,碱性成纤维细胞生长因子,FGF-8。第二步是诱发运动神经元的规范。 Noggin与/ FGFs暴露mES细胞培养与RA和Shh的激动剂,理顺激动剂(凹陷),再过5天,以促进运动神经元生成。为了监测乱七八糟的分化成运动神经元,我们使用胚胎干细胞系,从转基因小鼠表达EGFP派生控制下运动神经元特异性启动子HB9 1。使用这个强大的协议,我们实现了51±0.8%的分化效率(N = 3,P <0.01,学生t-检验)5。从免疫的结果染色表明,绿色荧光蛋白+细胞表达运动神经元的特异性标志物,胰岛-1和胆碱乙酰转移酶(CHAT)。我们两步分化协议mES细胞分化成脊髓运动神经元提供了一条有效途径。
1。步骤1:小鼠胚胎干细胞(MES)文化(定时:3天)
1。电镀主小鼠胚胎成纤维细胞(PMEF)
2。电镀MES细胞
监察MES细胞分化成运动神经元的效率,我们使用HBG3,下控制运动神经元特异性启动子HB9表达EGFP转基因小鼠的胚胎干细胞系。
2。第2步:神经诱导(定时:2天)
诱导分化成运动神经元的MES细胞,mES细胞需要分开从PMEF和悬挂的环境中培养。明胶涂层烧瓶用于分离mES细胞PMEF。
3。第三步:运动神经元规格(定时:5天)
4。第4步:制备Poly-DL-ornithine/laminin涂层盖玻片(定时:2天)
前两天游离胚(即在分化第5天),准备poly-DL-ornithine/laminin-coated盖玻片。
5。第5步:轴突伸长率(执行时间:2天)
6。代表结果
图1A显示了一个协议的轮廓。在第1步,MES细胞培养PMEF LIF的补充,以防止自发分化。在一般情况下,未分化的MES殖民地是圆而紧凑,并有明确界定的边缘。殖民地是不能彼此接触。通常情况下,应mES细胞分裂1:4的比例,每2〜3天。然而,每个人的细胞会以不同的速率增长,必须凭经验确定分流比。在图1B箭头指示后,在3天的PMEF饲养层培养mES细胞的典型外观。这些殖民地是大(直径在50-100微米),但仍保持轮和界定边缘第在这个阶段的殖民地分化或亚文化。在图1B箭头显示一个小的MES殖民地您通常电镀后24小时。电镀后4天,MES细胞变得杂草丛生。他们表现出一个扁平的外观和损失定义的边界,这表明他们已经开始分化。这种细胞分化成神经细胞的最佳。
mES细胞分化成运动神经元,mES细胞需要培养悬浮条件允许的EB形成。在第2步,胚胎干细胞被转移到无饲养层,以促进EB形成一种文化表面。在这一步,他们培养Noggin的,碱性成纤维细胞生长因子,FGF-8辅以2天直接向神经系细胞的神经分化中等。小EBS可以分化第1天在显微镜下观察。他们应漂浮在培养基。也可以在第1天发现结转PMEF分化,必须拆除。坚持这些细胞被淘汰时胚代到一个新的细菌菜细菌菜肴。因此,分化2天,很少或根本没有PMEF应看到,在培养皿中。在第3步,继续EBS转移到新的菜肴,应确保去除任何剩余PMEF的。胚培养运动神经元分化(国防部)与RA补充媒体和凹陷分化成运动神经元细胞为5天。在培养过程中,EBS继续扩大规模,并可以通过肉眼看到,在分化第3天〜4次。 图1C显示EBS的分化第7天的微观外观。不同的是未分化的细胞,EBS显示较强的荧光,由于GFP的表达。这些胚是最佳的分化和分离的准备。流式细胞仪检测表明,51%±0.8%游离胚细胞分化成绿色荧光蛋白表达细胞5。在步骤5中,日文化ESE电机神经元GDNF的,睫状神经营养因子,脑源性神经营养因子,延长长期性轴索预测和NT3结果存在。 图1D显示分化细胞分离胚电镀后第2天的外观。注意镀细胞的细胞体延伸的长突起。免疫荧光染色显示,GFP +细胞表达泛神经元标记(神经丝蛋白中链)和两个运动神经元的特异性标志物,(胰岛-1和胆碱乙酰转移酶, 图2)。

图1。mES细胞分化成运动神经元(从武等图片修改。5)。 a)计划mES细胞运动神经元的分化协议。二)MES的未分化细胞形成的成纤维细胞饲养层的顶部的圆形菌落。他们有弱的绿色荧光蛋白表达。 c)MES细胞分开饲养层和cultu在低附着菜红,形成胚。在第一天的分化过程中,细胞暴露于50毫微克/毫升Noggin的20毫微克/毫升碱性成纤维细胞生长因子,20 ng / ml的FGF-8。随后,他们被诱导分化为1μm维甲酸和1μM的5天的刺猬激动剂凹陷。 MES的分化细胞中表达GFP荧光强。 d)经过7天的分化,胚分离poly-DL-ornithine/laminin涂层板镀。分化的细胞延长2天中文化后的很长的神经过程。比例尺= 200微米。百万=电机的神经元。 B,C和D是亮场图像和乙',C'和D'是相应的荧光图像。

图2 MES细胞衍生的运动神经元表征。免疫荧光染色神经丝蛋白中链NF-M(红色),聊天(红色),胰岛-1(红色)与GFP(绿色)expr的重合分裂国家。的DAPI(蓝色)被用来确定原子核。比例尺= 50微米。
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mES细胞的质量是最关键的参数为运动神经元的高效发电。 mES细胞必须培养,对PMEF防止自发分化。此外LIF的帮助mES细胞保持在未分化状态。由于MES细胞分裂每12至15小时,培养基变得枯竭迅速,必须每天更换。
高效活化Shh的途径是一个关键的参数,需要引起运动神经元的规范。 Shh蛋白(研发体系),Shh信号激动剂,如HH激动剂HhAg1.3(Curis公司),purmorphamine(Calbiochem公司),凹陷(EMD的化学品),都被用来促进运动神经元的形成1-3 ,10,11。我们发现凹陷是一个更有效的分子比purmorphamine在分化细胞迈向运动神经元型5。 1 - 2.5μM的1μM天雨purmorphamine从未放弃的分化效率超过20%。然而在我们手中,RA和1微米,1微米的凹陷的组合,都没有神经诱导步骤分化过程中的约25%的效率。
为了进一步加强分化的效率,我们添加了一个为期2天的神经感应步前运动神经元的规范步骤。这种方法需要Noggin与FGF信号是至关重要的早期神经诱导胚胎干细胞时首次进入神经 系6-9的优势。 FGF信号在神经诱导,维持神经前体细胞的培养。在发展中国家中脑FGF8过度导致的神经前体的人口在急剧扩张的脑室区12。 FGFs和Noggin的组合协同作用在诱导神经组织的形成,促进后神经身份9。因此,在为期2天的神经感应步旨在引导mES细胞对神经系的运动神经元的规范的过程开始之前。
这里描述的协议是先前描述1成立的原始协议的修改和增强。虽然运动神经元产生的时间轴是相同的,我们已经做了一些修改,以简化程序,提高运动神经元的收益。通过添加一个神经诱导分化协议的步骤,我们是能够提高分化效率从25%到50%。我们的协议提供了一个有效的方法,以丰富mES细胞衍生的运动神经元。运动神经元不能得到SMA患者和健康状况不佳的主要运动神经元从SMA的小鼠排除足够的数量,质量和纯度,这种疾病影响的蛋白质进行定量分析细胞的分离。使用这个MES细胞的协议,我们能够获得足够的权运动神经元细胞人口tity和纯度的蛋白组学的研究,以确定在脊肌萎缩症5影响的分子途径。
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没有利益冲突的声明。
这手稿是致力于到文澜王博士的记忆2011年05月26日,通过了。我们感谢道格拉斯A·克尔博士慷慨提供的HBG3 MES在这项研究中使用的细胞。这项工作是由内穆尔,赠款(2 RR016472-10)根据国家研究资源中心(NCRR),和1 COBRE补助金从NCRR(5 P20的RR020173-05),以支持中心的INBRE方案儿童,美国特拉华州威尔明顿,在阿尔弗雷德一,杜邦医院的儿科研究。
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| PMEF | EMD Millipore | PMEF-H | N.A. |
| DMEM | Invitrogen | 11965-118 | N.A. |
| FBS | Invitrogen | 16140-071 | 10% |
| L-glutamine | Invitrogen | 25030-081 | 1% |
| Penicillin/streptomycin | Invitrogen | 15240-063 | 1% |
| DMEM | Stem Cell Technologies | 36250 | N.A. |
| ES Cell-Qualified FBS | Invitrogen | 16141-079 | 15% |
| GlutaMax-I | Invitrogen | 35050-061 | 1% |
| Non-essential amino acids | Invitrogen | 11140-050 | 1% |
| Nucleosides | EMD Millipore | ES-008-D | 1% |
| β-mercapt–thanol | EMD Millipore | ES-007-E | 0.1 mM |
| Penicillin/streptomycin | EMD Millipore | TMS-AB2-C | 1% |
| LIF | EMD Millipore | LIF2010 | 10 ng/ml |
| DMEM | Stem Cell Technologies | 36250 | N.A. |
| ES Cult FBS | Stem Cell Technologies | 06905 | 15% |
| Non-essential amino acids | Invitrogen | 11140-050 | 1% |
| Mono-thio glycerol | Sigma-Aldrich | M-6145 | 1mM |
| Noggin | Invitrogen | PHC1506 | 50 ng/ml |
| FGF-8 | Invitrogen | PHG0274 | 20 ng/ml |
| bFGF | Invitrogen | PHG0024 | 20 ng/ml |
| ES-Cult Basal Medium-A | Stem Cell Technologies | 5801 | N.A. |
| Knockout serum replacement | Invitrogen | 10828-028 | 10% |
| N-2 supplement | Invitrogen | 17502-048 | 1% |
| ITS Supplement-B | Stem Cell Technologies | 07155 | 1% |
| Ascorbic acid | Stem Cell Technologies | 07157 | 1% |
| Penicillin/streptomycin | EMD Millipore | TMS-AB2-C | 1% |
| GlutaMax-I | Invitrogen | 35050-061 | 1% |
| D-glucose | Sigma-Aldrich | G-8270 | 0.15% in d2H2O |
| Fibronectin | Stem Cell Technologies | 07159 | 5 μg/ml |
| Heparin | Sigma-Aldrich | H3149 | 20 μg/ml in d2H2O |
| β-mercapt–thanol | EMD Millipore | ES-007-E | 0.1 mM |
| Retinoic Acid | Sigma-Aldrich | R-2625 | 1 μM |
| SAG | EMD Millipore | 566660 | 1 μM |
| ES-Cult Basal Medium-A | Stem Cell Technologies | 5801 | N.A. |
| Knockout serum replacement | Invitrogen | 10828-028 | 10% |
| N-2 supplement | Invitrogen | 17502-048 | 1% |
| ITS Supplement-B | Stem Cell Technologies | 07155 | 1% |
| Ascorbic acid | Stem Cell Technologies | 07157 | 1% |
| Penicillin/streptomycin | EMD Millipore | TMS-AB2-C | 1% |
| GlutaMax-I | Invitrogen | 35050-061 | 1% |
| D-glucose | Sigma-Aldrich | G-8270 | 0.15% in d2H2O |
| Fibronectin | Stem Cell Technologies | 07159 | 5 μg/ml |
| Heparin | Sigma-Aldrich | H3149 | 20 μg/ml in d2H2O |
| β-mercapt–thanol | EMD Millipore | ES-007-E | 0.1 mM |
| BDNF | R&D Systems | 248-BD-005/CF | 10 ng/ml |
| CNTF | R&D Systems | 257-NY-010/CF | 10 ng/ml |
| GDNF | R&D Systems | 212-GD-010/CF | 10 ng/ml |
| NT-3 | R&D Systems | 267-N3-005/CF | 10 ng/ml |
| N.A. = Non-applicable | |||
| Table 1. PMEF and Media for mES cell culture or differentiation | |||
| 0.1% Gelatin | Stem Cell Technologies | 07903 | N.A. |
| Poly-DL-ornithine | Sigma-Aldrich | P0421 | 0.1 mg/ml in d2H2O |
| Mouse laminin | EMD Millipore | CC095 | 2 μg/ml in PBS |
| 0.25% Trypsin/EDTA | Stem Cell Technologies | 07901 | N.A. |
| Accumax | EMD Millipore | SCR006 | N.A. |
| N.A. = Non-applicable | |||
| Table 2. Reagents for coating and dissociation | |||
2
ReplyPosted by: Elsie S.September 9, 2012, 1:22 AM