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1Hospital de Clínicas de Porto Alegre, Centro de Pesquisa Experimental Laboratório de Hepatologia e Gastroenterologia Experimental, 2Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS. Porto Alegre, RS, Brasil
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Pedroso, G. L., Hammes, T. O., Escobar, T. D. C., Fracasso, L. B., Forgiarini, L. F., da Silveira, T. R. Blood Collection for Biochemical Analysis in Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (63), e3865, doi:10.3791/3865 (2012).
Le poisson zèbre a été utilisé comme modèle animal pour les études de plusieurs maladies humaines. Il peut servir de plate-forme puissante pour les études précliniques d'événements moléculaires et stratégies thérapeutiques ainsi que pour évaluer les mécanismes physiologiques de certaines pathologies 1.
Il ya relativement peu de publications relatives à la physiologie du poisson zèbre adulte d'organes et de systèmes 2, qui peuvent conduire les chercheurs à conclure que les techniques de base nécessaires pour permettre l'exploration des systèmes de poisson-zèbre manque 3. Hématologiques valeurs biochimiques de poisson zèbre ont d'abord été signalé en 2003 par Murtha et 4 collègues qui a employé une technique de collecte de sang d'abord décrit par Jagadeeswaran et ses collègues en 1999. En bref, le sang a été recueilli par une pointe micropipette par une incision latérale, environ 0,3 cm de longueur, dans la région de l'aorte dorsale 5. En raison des dimensions minute en cause, ceest une technique de haute précision nécessitant un praticien hautement qualifiée. La même technique a été utilisée par le même groupe dans une autre publication dans cette même année 6. En 2010, Eames et ses collègues ont évalué l'ensemble de la glycémie chez le poisson zèbre 7. Ils ont eu accès à du sang en effectuant décapitations avec des ciseaux, puis l'insertion d'un tube de prélèvement hépariné microcapillaire dans l'articulation pectorale. Ils mentionnent des difficultés avec l'hémolyse qui ont été résolus avec une température de stockage appropriée basée sur le travail Kilpatrick et al. 8. Lorsque vous tentez d'utiliser la technique du Jagadeeswaran dans notre laboratoire, nous avons constaté qu'il était difficile de faire l'incision précisément dans le bon endroit pour ne pas permettre à une quantité importante de sang à perdre avant la collecte pourrait être lancé.
Récemment, Gupta et al. 9 décrit comment disséquer les organes de poisson zèbre adulte, Kinkle et al. 10 décrit comment effectuer intraperitoninjections EAL, et Pugach et al. décrit 11 comment effectuer rétro-orbitaires injections. Cependant, plus de travail est nécessaire pour explorer plus à fond les techniques de base pour la recherche chez le poisson zèbre.
La petite taille du poisson zèbre présente des défis pour les chercheurs qui l'utilisent comme un modèle expérimental. En outre, compte tenu de cette petitesse de l'échelle, il est important que les techniques simples sont mis au point pour permettre aux chercheurs d'explorer les avantages du modèle de poisson zèbre.
1. Texte du Protocole
2. Les résultats représentatifs
Il était possible de collecter 5 à 20 ul de sang total de chaque poisson représente ce que le sang même 4 fois plus que les techniques décrites précédemment (tableau 2). L'analyse biochimique du cholestérol total, HDL-cholestérol, le LDL-cholestérol et les triglycérides ont été effectuées après la collecte de sang en utilisant cette technique. Deux groupes de deux poissons sexes ont jeûné pendant 24 heures avant la collecte du sang pour éviter les interférences apport alimentaire. Les analyses ont été effectuées avec les petits-échelle des tests colorimétriques (Labtest Diagnostica SA, Brésil) pour des analyses de cholestérol et de triglycérides totaux, 3 pl de sérum ont été utilisés. Pour le cholestérol LDL et HDL-cholestéroll'analyse, 4 pi et 10 pi de sérum ont été utilisés, respectivement. Ces analyses ont été effectuées sur des échantillons mis en commun de 10 poisson zèbre par échantillon.
Les taux sériques de lipidiques ont été comparés entre les poissons qui a accédé à leurs propres oeufs et ceux qui, dans un aquarium de fond recouvert, n'ont pas eu accès à leurs propres oeufs pour une durée expérimentale de 2 semaines. L'analyse du sérum a montré que les taux sériques de cholestérol total (avec des oeufs 362 ± 42 mg / dL et sans oeufs 357 ± 13 mg / dL), les taux de HDL-cholestérol (avec des oeufs 91,22 ± 1,79 mg / dL et sans oeufs 72,14 ± 2,89 mg / dL), et le LDL-cholestérol (avec des oeufs 55,68 ± 10,88 mg / dL et sans oeufs 44,18 ± 9,84 mg / dL) ne diffèrent pas significativement entre les groupes. Toutefois, le taux de triglycérides étaient significativement plus faibles dans le groupe expérimental (sans oeufs 292 ± 64 mg / dL) que dans le groupe de contrôle (avec des oeufs 457 ± 25 mg / dL, p = 0,03).
| & Nbsp; | Avec l'accès aux œufs | Sans accès aux œufs |
| Cholestérol total (mg / dL) | 362,82 ± 73,11 | 357,69 ± 23,08 |
| LDL - Cholestérol (mg / dL) | 55,69 ± 18,84 | 44,19 ± 17,05 |
| HDL - Cholestérol (mg / dL) | 91,23 ± 3,11 | 72,14 ± 5,01 |
| Les triglycérides (mg / dL) | 457,64 ± 43,78 * | 292,36 ± 111,28 |
Tableau 1. Le cholestérol et les triglycérides sériques niveaux pour les deux groupes étudiés (avec accès aux œufs et sans accès aux œufs), exprimée en moyenne ± déviation standard.
* Statistiquement significatif (p = 0,03). Test t de Student.
| Aut hors | Lieu de l'incision | La méthode de récolte | Anesthésie | Montant de sang prélevé |
| Jagadeeswaran et. al., 1999 Murtha et al., 2003 | Postérieure dissection Micro nageoire dorsale | Micropipette | Non mentionné MS222 3% dans de l'eau froide | 1 a 5 pl 5 a 10 pi |
| Eames et al., 2010 | Décapitation | Micro tube de capillaires | MS222 0,02% 28 ° C l'eau | 5 a 10 pi |
| Présente étude | Incision entre la nageoire anale et la nageoire caudale | Micropipette et des conseils de conservation à faible | Puces d'eau et de glace | 5 a 20 pi |
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Cet article présente une technique simple qui permet en outre de sang et l'analyse du sérum dans les expériences de poisson-zèbre. Cette technique a le potentiel de contribuer aux études de poisson zèbre futures hématologiques nécessitant des données de paramètres sanguins. Elle devrait également permettre de plus grandes applications du poisson zèbre comme modèle expérimental.
Cette technique ne nécessite pas de compétences particulières ou de mise en œuvre d'une technique précise. En outre, il permet de quitte ou double la quantité de sang à collecter par rapport à d'autres techniques, permettant ainsi l'utilisation de moins de poissons pour obtenir la quantité nécessaire de matériel biologique. La technique a une étape cruciale, qui est que les échantillons de sang être manipulés avec soin que le sang du poisson zèbre peut encourir une hémolyse très facilement. Le délai entre la collecte de sang et la centrifugation doit être strictement limitée. Une limite de 10 minutes devrait éviter l'hémolyse. La vitesse et la durée de centrifugation (0,5 g pour 10 minutes) should également être strictement suivies.
D'autres techniques de collecte de sang ont été tentées avant que cette technique a été développée. Toutefois, le nombre d'animaux utilisés a été de grandes quantités et les très petites de sang ont été prélevés sur chaque poisson. Cette nouvelle technique a permis l'utilisation de moins d'animaux, a été démontrée pour être réalisable à faible niveau de compétence des praticiens, et a donné de meilleurs résultats que d'autres techniques en termes de quantité de sang prélevé sur chaque poisson.
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Pas de conflits d'intérêt déclarés.
FIPE / HCPA - Fundo de Incentivo une Pesquisa e Eventos
CAPES - coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nivel Superior
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Low retention tips | Applied Biosystems | 022493020 | |
| Eppendorf Centrifuge 5415D | Eppendorf | Discontinued |
I see a your paper in jove " Blood collection for biochemical analysis in adult zebrafish" in which you describes a method for measuring blood glucose in zebrafish. I can't see the video and I can't read the protocol. Did you try to measure the blood sugar also in younger zebrafish (3-6 month)?
I am using the Accu-Chek Aviva, 0.6 mL sample (Roche Diagnostics), do you think that is good meters or I must to change it?
Can you give me some advices or a detail protocol for the extraction of blood and measured of glucose in fishes of 3-4 months?
I would really appreciate your help,
Thanks
Nicola
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ReplyPosted by: nicola f.June 7, 2012, 8:35 AM