Sıçan Karaciğer Hücreleri İzolasyon ve İlköğretim Kültür

1. Hazırlık

Tüm tamponları taze steril teknik kullanılarak hazırlanmıştır ve bir Corning 0.22 mikron filtre kullanılarak sterilize filtresi.

1. Hank Dengeli Tuz Çözeltisi için aşağıdaki ekleyerek Ben tampon Perfüzyon hazırlayın (HBSS, Ca ² olmadan ⁺ ve Mg ^{2 +,} bkz. Tablo 1): 25 0.5 mM ve HEPES 0,9 mM EDTA için Mg ^{2 +} _(MgCl2) mM.
2. (HBSS için aşağıdaki ekleyerek Perfüzyon tampon II hazırlayın Ca ^{2 +} ve Mg ^{2 +,} 25 mM HEPES: Tablo 1) bakın.
3. Perfüzyon tampon II artı collagenaseII hazırlayın: kollajenaz II (1000 U) 300 ml Perfüzyon tampon II ile çözülür ve perfüzyon önce su banyosunda çözüm sıcak tutun. Kollajenaz II aktivite süresi olan azalma nedeniyle, bu çözelti 30 dakika içinde kullanılmalıdır.
4. William komple Orta hazırlayın: Aşağıdaki ekle; insülin ile 100 nM, dekzametazon, 100 nM, penisilin 100 IU / ml streptomisin ve ila 100 mg / ml 'ye L-glutamin 2 mM, fetal bovin serumu (FBS)% 5 ila için: Williams' Orta E.
5. Bunlar, tamponlar 42 az su banyosunda 30 dakika boyunca ısıtılmış edilmelidir ° C, 37 kanülün bir çıkış sıcaklığı tekabül eden en uygun ° C.

2. Karaciğer İzolasyon için Rat Perfüzyon

1. Perfüzyon sistemi pompa, otoklavlanabilir silastik tüp ve su banyosu (bkz. Şekil 1) oluşur. 10 ml / dak perfüzyon peristaltik pompa önceden ayarlanabilir debi.
2. Intraperitoneal (ip) ketamin (87 mg / kg vücut ağırlığı) artı Xylazine (13 mg / kg) ile bir yetişkin sıçan (300 g vücut ağırlığı) uyuşturmak. Anestezi derinliği ayak tutam tarafından takip edilmelidir. Rat artık zararlı uyaran tepki verdiğinde, karın saç ve hazırlık betadin ve etanol ile karın tıraş. Ensizyon yoluyla girin.
3. Ortaya çıkarmakdikkatli karın boşluğunun sağ dış organları hareket ve hepatik portal ven (bkz. Şekil 1) içine 18-gauge angiocath eklemek tarafından hepatik portal ven.
4. Iğne perfüzat boru bağlayın ve önceden ısıtılmış (37 ° C) Perfüzyon Tampon ben düşük bir akış hızı (10 ml / dak) in situ olarak infüzyon başlatabilir.
5. Düzgün bir şekilde gerçekleştirildiği takdirde, karaciğer anında mazur başlamalıdır. Başarılı kateterizasyonu onaylandıktan sonra, inferior vena kava (IVC) bir kesim efflux (Şekil 1) izin olun. Başarılı kateterizasyonu için bir başka test IVC üzerine steril bez ile hafif bir basınç uygulayarak yapılabilir; karaciğerin tüm loblar hızla şişmeye başlaması gerekir.
6. 25 ml / dak akış hızını artırmak. Karaciğer rengi soluk haline gelmelidir.
7. Ek bir 6 dakika için akış kesinti olmaksızın Perfüzyon tampon II artı kollajenaz II perfüzyon çözüm açın.
<li> Periyodik (sindirim sırasında 5-10 kez) 5 saniye aralıklarla için IVC için bez ile basınç uygulayın. Karaciğer da toplam sindirim süresini azaltmak, ve nihai verimi artırarak, gelişmiş karaciğer hücre ayrışma yol şişer.
8. Kollajenaz perfüzyon sonra, karaciğer Duygusal aramaya başlamalıdır. 20 ml William tam medyum ile bir pre-soğutulmuş steril bir behere karaciğer içermeyen, yerinde incelemek ve sonra da doku kültürü hücre ardına al.

3. Hepatosit Hücre İzolasyon

1. Hücre kültürü kaput içinde, nazikçe steril bir petri içinde William komple Orta içine hücreleri dağıtmak için bir hücre kazıyıcı kullanın.
2. Bağ dokusu ve sindirilmemiş doku parçaları ortadan kaldırmak için bir 50 ml Konik tüpü içine, bir 100 mikron gözenek büyüklüğü hücre süzgecinden hücre dispersiyon filtre.
3. 4 ° C'de 3 dakika süreyle 50 x g'de 40 ml William tam medyum ve santrifüj hücreleri askıya
4. Süpernatant aspire, veyavaşça hücreleri yıkamak için 40 ml soğuk William'ın tam Orta hücrelerin yeniden askıya. Santrifüj tekrarlayın.
5. Süpernatant aspire ve yavaşça 25 ml William'ın tam Orta ile tekrar askıya hücreler. Tüpe PBS içinde 25 ml% 90 Percoll çözüm ekleyin ve hafifçe karıştırın.
6. 4 ° C'de 10 dakika süreyle 200 x g'de santrifüje Canlı hücreler Percoll degrade altında kalacaktır, çünkü degrade üstünden ölü hücreleri aspire.
7. 30 ml ılık William'ın tam Orta hücre pelet Askıya ve sonra santrifüj tekrarlayın ve 20 ml sıcak William'ın tam Ortamda hücre pelletini yeniden askıya.
8. Bir hemasitometre kullanarak hücre süspansiyonu içindeki hücreleri saymak ve Tripan mavisi ile hücre canlılığı belirler.

4. Hepatosit Kültür

1. Tercih edilen konsantrasyon sıcak William komple Orta hücreleri seyreltilir, örneğin 2.5 x 10 ⁵ hücre / ml. Hücre kültürü plakalar üzerinde istenilen hacimde Tabak hücreler, örneğin. 5 x 10 ⁵ hücre / 2 ml / kuyu, 6 kuyu / plaka; veya 2.5 iyi x 10 ⁵ hücre / 1,5 ml /, 12 kuyu / plakası. Un kaplı plaka karaciğer hücre kültürleri için uygundur.
2. Hepatositler tam hücre boyutu büyüyecek ve son bir izdiham elde etmek için yeterli alan sağlarken>% 85 canlı hücreler ile tipik bir hazırlık olarak, hücre yoğunluğu hücre-hücre teması sağlayan yaklaşık% 60-70 izdiham, ulaşmalıdır % 90-95.
3. İyi bir merkezi bölgeye toplamak için hücreler için eğilimi en aza indirmek için, başka bir deyişle, hepatositlerin eşit bir tek tabaka oluşturmak üzere (hücre inkübatöründe bir hava akımı içinde nedeniyle büyük olasılıkla), plakaları içinde kalmasına izin Bir kuluçka koymadan önce 30 dakika boyunca hücre kültürü kaput.
4. Kültür 37 hücreleri% 95 hava _ve% 5 CO2 ile nemlendirilmiş bir atmosferinde ° C. 4-h kültürden sonra, hücreler ya aynı serumu içeren ortam içinde kalır olabilir ya da serum-f ile orta yerineree ortam, örneğin HepatoZYME-SFM (bkz. Tablo 1). Serum içermeyen aracı madde, serum içermeyen aracı madde kullanılır hormonlar hiçbir yan etki ile hücre morfolojisi temin edilmesine yardımcı olur.
5. Hücreleri deney önce kurtarmak ve en az bir gece büyümeye olanak sağlar. Bu kritik enzimler (örneğin, P450) fonksiyonu korumaya yardımcı olabilir, çünkü 24 saat içinde test için hücreleri kullanmanızı öneririz.
6. Gerekirse, 2 gün aralıklarla büyüme medyumu yerini alır.

5.. Temsilcisi Sonuçlar

Koşulları düzenli olarak bir sıçan karaciğer hazırlık başına 1.0 x 10 ⁸ hücrelerinin hücre hasat oluşturmak nitelendirdi. Tripan mavisiyle çıkarma ile ölçülen hepatositlerin yaşayabilirliği 88 ~% 96 aralığında olduğu, sürekli.

Şekil 2, 4 saat tohumlama sonrası hepatositlerin agrega ve form küme tasvir. En çok izole hücreler tipik monolayer büyüme düzleşir ve yaymak. 24 saat olarak, hücre kenarları tanımlandığı gibidir, hücre yüzeyinde oldukça düz ve lipid damlacıkları görülebilir. Hücreler 1-3 hücrelerinin merkezinde bulunan yuvarlak nükleol, ve hücreler arasında çekirdekler görüntü tutarlıdır boyutu (Şekil 2) sahiptir.

Şekil 1. Karaciğer perfüzyon şeması. Bir 18-gauge angiocath karaciğer portal damar içine yerleştirilir, daha sonra bir perfüzat boru iğne bağlanır. Başarılı kateterizasyonu onaylandıktan sonra, inferior vena kava (IVC) bir kesim efflux izin olun.

Şekil 2. Zamanla kültür hepatosit (4 saat ile 24 saat), büyütme x 200 morfolojisi. 24 saat kültüre sonra, hücreler tipik monolayer büyüme yayılır ve hücreler arasındaki kavşaklar doğrusaldır.

Tablo 1.

Karaciğer primer kültürü yaygın karaciğer fizyolojisi ve patolojisi çeşitli yönlerini incelemek için kullanılan in vitro model olduğunu. Örneğin, primer kültür P450 sitokromlar, ilaç metabolizması, ilaç-ilaç etkileşimleri ve sitotoksisite ve genotoksisite ^3-7 mekanizmaları da dahil olmak üzere ilaç metabolize eden enzimlerin ifade ve fonksiyonunu değerlendirmek için kullanılır. Sıçan karaciğer hücrelerinin izolasyonu ve kültür tarif protokolü ^8. Aiken ark önceki raporlarda uyarlanmıştır ve modifikasyonları olan diğerleri ^2,9,10 edilir. Koşulları sürekli olarak 1.0 'e uygun hepatositler kadar üretmek x 10 88 ~% 96 arasında hücre canlılığı ile hazırlık başına ⁸ hücre. Tarif Aşağıdaki diğer kritik adımlar şunlardır:

1. Hücre kültürü açıklayan herhangi bir protokol olduğu gibi, en kritik yönü sıkı aseptik teknikler kullanılarak ¹¹ bakteriyel veya fungal patojenlerin bulaşma kaçınmaktır.
2. Dezmozom, aynı zamanda maküler adherens olarak bilinen, hücre-hücre yapışması için için özel bir hücre yapıdır. Dezmozom bütünlüğü kalsiyum gerektirir ve EDTA ve kalsiyum içermeyen medya tarafından bozuldu. Enzimler kollajenaz izolasyonu karaciğer hücreleri yol açan, dezmozom ayrılabilir. Bu nedenle, perfüzyon Ca ² kullanır ⁺ ücretsiz orta ve daha sonra Ca ^{2 +} zengin orta Ca ^{2 +} bağımlı içeren kollajenaz, sindirim için.
3. Uygun kollajenaz tedavi hepatosit hazırlanması için kesinlikle çok önemlidir. Perfüzyon tampon II artı collegenase II akış hızı 25 ml / dak tutulmalıdır. Başarısız hepatosit kültürünün yaygın nedenleri şunlardır: yetersiz 37 ° C ve / veya yavaş perfüzyon hızı ısındı perfüzyon tamponlar nedeniyle olabilir 1) kötü hücre ayrışma, ve 2) hücre ölümü, Could aşırı kollajenaz sindirimi nedeniyle olabilir.
4. Pipet sadece iyi tarafı aşağı, ve asla doğrudan hücrelerde üstüne; ilk 4 saatlik kültürden sonra medya değiştirirken hepatositler hala oldukça kırılgan ve kolayca zarar ya da doğrudan temasa bozulabilmektedir gibi, dikkatli olun.