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1Department of Biomedical Engineering, Tulane University, 2Department of Biomedical Engineering, University of Virginia, 3Center for Stem Cell Research and Regenerative Medicine, Tulane University
Yang, M., Stapor, P. C., Peirce, S. M., Betancourt, A. M., Murfee, W. L. Rat Mesentery Exteriorization: A Model for Investigating the Cellular Dynamics Involved in Angiogenesis. J. Vis. Exp. (63), e3954, doi:10.3791/3954 (2012).
微血管网络的发展和重塑,是伤口愈合,炎症,糖尿病视网膜病变,肿瘤的生长和其他疾病的条件1,2的关键方面。通常网络的增长归因于血管生成,定义为新船的预现有船只的增长。血管生成过程中也可以直接联系到小动脉,毛细血管的血管周围细胞涂层和船只扩大收购定义。不用说,血管生成是复杂的,涉及多个玩家在细胞和分子水平3。了解如何微血管网络的发展需要确定的时空动态,以及在血管生成的时间当然网络的层次结构。此信息旨在操纵血管生长疗法的发展是至关重要的。
在这篇文章中描述的外化模型代表一个简单的,重复性的刺激模型需接上大鼠肠系膜血管生成。它改编自伤口愈合,在大鼠肠系膜4-7的模型,是另一种刺激,通过腹腔注射促血管生成剂8,9肠系膜血管生成。外化模式是有吸引力的,因为它需要最小的手术治疗,并在整个微血管网络三维可视化的组织,允许在一个相对短的时间过程中产生的戏剧性,在毛细管豆芽,血管面积和血管密度增加重复性单细胞水平上。刺激增长反映没有外国血管分子干扰的自然生理环境中的血管反应。采用免疫组化标记方法,这种模式已被证明非常有用的,在确定参与血管生成的新细胞事件。研究人员可以很容易地关联时间当然随着时间的推移SP重塑过程中的血管生成的指标ecific动态,如细 胞表型的改变或细胞相互作用4,5,7,10,11。
1。手术过程中设置说明
2。大鼠肠系膜外化模型
3。组织收获和固定
4。组织免疫标记
粘附分子荧光标记
5。代表结果
粘附分子标记的大鼠肠系膜免疫组织的代表图像显示在图3。粘附分子的标签标识沿改造微血管网络的层次结构的所有船只类型,可以用来量化在特定时间点后刺激血管生成的指标。粘附分子标记也允许的动脉与静脉的决心。喂养动脉通常表现出更小的直径相比配对静脉( 图4)和拉长内皮细胞形态。毛细血管和毛细血管豆芽可以根据他们的血管直径和网络内的相对位置确定。重塑网络的典型特征,包括增加毛细血管发芽,血管密度,血管区和小静脉tortuosITY。各种血管生成的指标量化识别网络增长( 图5)的时间过程。毛细管从发芽前的现有船舶,山峰之间的第3天及5天,10天的无刺激水平的回报。其次是增加血管密度和血管面积在萌芽这短暂的增加。作为证据为重塑较大的船只,在这个模型中,小动脉和小静脉段的人数也增加了时间当然。
在我们的实验室中,这种模式已被用于确定在特定时间点的细胞表型的改变,在这个重塑的过程10,11。例如,第三类β-微管蛋白标识沿着新生血管周细胞( 图6)。在未受刺激的组织,Ⅲ类β-微管蛋白表达神经具体。相反,在毛细血管发芽的高峰期,Ⅲ类β-微管蛋白表达的血管周围细胞。这种类型的结果凸显了这个简单而强大的血管模型,以确定新的血管生成过程中所涉及的细胞类型。

图1。塑料阶段前和修改后的图片。修改前的阶段,是一个100毫米的培养皿。修改包括在该中心的椭圆孔切,随后除了造型粘土或硅胶孔的边缘,为创造一个凸起,表面光滑。这表面提供了一个内部边界灌流有助于形象化肠系膜窗口。比例尺为1厘米。

图2。形象化的肠系膜区域的图像。被定义为薄的半透明膜之间的动脉/静脉喂养对小肠肠系膜窗口。在“外化持续时间,肠系膜区域布局,并在盐碱地改良培养皿内浸泡。惰性黄色的橡皮泥,提供了一个通过预切孔拉肠系膜表面光滑。比例尺为1厘米。

图3。无刺激的组织和组织,在3和10天的后外化肠系膜肠系膜微血管网络的代表图像。粘附分子标记的微血管网络的层次结构,包括动脉(一),静脉(V)和毛细血管(三)确定。邮政刺激,微血管网络显示在毛细管发芽(箭头元首)和血管密度的增加。比例尺是100微米。

成年大鼠肠系膜微血管网络内动脉/小静脉对代表影像图4。第动脉(一)在两个图像,可从静脉(五)有区别的基础上相对较小的直径和内皮细胞的形态拉长。标尺是20微米。

图5。以上的的微血管增长后肠系膜外化过程中的血管生成指标代表量化。一)血管面积每组织区域。毛细管豆芽每血管面积数)。 c)血管总长度每血管面积。 *代表未刺激组相比显着性差异。统计数据进行了比较唐恩的测试采用单因素方差分析。 (P <0.05)。联合国代表无刺激。

图6。代表的荧光图像肠系膜微血管网络,无刺激的组织和组织在3日和10天的肠系膜的外化。免疫粘附分子标记(红色)标识的内皮细胞,Ⅲ类β-微管蛋白标签(绿色)标识神经(箭头元首)和血管周围细胞(箭头)。血管周围细胞瞬时上调Ⅲ类β-微管蛋白在毛细血管发芽。在未受刺激的微血管网络,第三类β-微管蛋白是特定的神经和血管周围细胞无法识别。后3天的刺激下,β-微管蛋白Ⅲ类积极标签沿微血管血管周围细胞。第10天,第三类β-微管蛋白的表达模式,开始返回到刺激时的场景。比例尺为50μm。

图7。图像支持跟踪预先标记的本地应用细胞在微血管肠系膜外化的网络刺激增长的可行性。细胞灌流超过mesenterIC窗口在20分钟的外化。 1天,手术后,DiI标记细胞(红色),观察在圣母院焦平面与粘附分子阳性微血管(绿色)。 ,A,B)DiI标记的骨髓细胞的例子展示圆形和拉长的形貌。在某些情况下,被拉长沿微血管细胞(箭头)。 c)标记的乙酰集群为例毛细管萌芽(箭头)的尖端附近的间质干细胞。标尺是50微米(一),20微米(乙,丙)。
据报道,2006年的外化模型和改编自以前的机械性损伤大鼠肠系膜血管生成4-7模型,并产生类似的结果,以建立腹腔注射模型,利用大鼠肠系膜9。实验确定的外化时间20分钟,以产生一种强大的血管反应。而这段时间内可以改变,但它允许本地应用血管生成抑制剂的机理研究和直接应用外源性细胞的细胞系的研究4。支持将重塑肠系膜组织细胞纳入可行性初步研究,使用预先标记的骨髓细胞和骨髓基质干细胞( 图7),在我们的实验室,并成功地调查了人体脂肪基质细胞注射IP 14的命运。在我们的实验室中,我们用这个模型来识别周细胞PHEN在血管反应时间10课程及评估血管的潜力,在病理条件下,如高血压12 otypic变化。血管反应和细胞表型相关的变化,这种模式也可以观察大鼠肠系膜血管模型,包括慢性低氧暴露10,11。
的外化模型的局限性,是引发血管生成的确切机制尚不清楚。肠系膜的外化与肥大细胞脱颗粒和增加6组胺水平,还需要作进一步调查,以获得更深入的了解。血管生成的刺激无疑是多因子,产生跨层次的微血管网络的强大的重塑反应。而未知的机制仍然是这种模式的主要批评,其重现性和简单性使其更具有吸引力识别细胞动力学国际富豪VED在本质上是复杂的毛细血管的出芽过程。支持该模型的可重复性(Wistar雄性和雌性SD)在先前发表的研究报告,12个实验室10多个大鼠株微血管网络增长的时间当然比血管可比指标。由于大多数成年大鼠肠系膜组织的血管,该模型还允许多个检查每个动物的组织。不幸的是,这个模型是没有明显适用于基因小鼠模型,小鼠肠系膜窗口少本地血管和,在我们的经验,普遍缺乏观察分支网络。未来的应用,包括使用在特定的时间点内的重要显微镜血管生成过程中的血管功能的调查,调查有关在淋巴管和神经细胞动力学。虽然每本地血管肠系膜窗口的程度似乎是柔ghly比例随着年龄的增长,我们已经观察到分枝4-5周岁的年轻雄性Wistar大鼠微血管网络。这些结果表明,外化模型也可以用于比较不同年龄的血管差异。
我们什么都没有透露。
这项工作得到了国家,路易斯安那LEQSF(2009-12)的RD-A 19(有价证券:Murfee轮候册)的评议委员会和杜兰高血压和肾的卓越中心由NIH资助资助P20RR017659-08(有价证券L.加布里埃尔Navar)。
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Drape | Cardinal Health | 4012 | 12"x12" Bio-Shield Regular Sterilization Wraps |
| Noyes Micro Scissor | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-5677 | Noyes Micro Dissecting Spring Scissors; Straight, Sharp-Blunt Points; 13mm Cutting Edge;0.25mm Tip Width, 4 1/2" Overall Length |
| Graefe Forcep | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-5135 | Micro Dissecting Forceps; Serrated; Slight Curve; 0.8mm Tip Width; 4" Length |
| Graefe Forcep | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-5130 | Micro Dissecting Forceps; Serrated, Straight; 0.8mm Tip Width; 4" Length |
| 4-0 suture | Ethicon Inc. | 699G | (1.5 metric) ETHILON Nylon Suture Black Monofilament |
| 5-0 suture | Ethicon Inc. | 8556 | (1.0 metric) PROLENE Polyprolene Suture Blue Monofilament |
| 7-0 suture | Ethicon Inc. | 1647G | (0.5 metric) ETHILON Nylon Suture Black Monofilament |
| Castroviejo Micro Needle Holder | Fine Science Tools | 12060-02 | Tip Width:0.6mm Clamping Length:5mm Length:9cm Straight tip |
| Castroviejo Needle Holder | Fine Science Tools | 12565-14 | Tip Shape:Straight Tip Width:1.5mm Clamping Length:10mm Scissors:No Lock:Yes Length:14cm Serrated:Yes |
| Scalpel Handle | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-9843 | Scalpel Handle, #3; Solid; 4" Length |
| Sterile Surgical Blade | Cincinnati Surgical | 0110 | Stainless Steel; Size 10 |
| Petri Dish | Fisher Scientific | 08-757-13 | Beveled Ridge, Slippable |
| Table of Specific Surgical Materials and Tools. | |||
| Beuthanasia | Merck & Co. | MWI #: 011168 | Active Ingredient: Per 100mL, 390 mg pentobarbital sodium, 50mg phenytoin sodium |
| Ketamine | Fort Dodge Animal Health | MWI #: 000680 | Kateset 100 mg/ml |
| Xylazine | Lloyd, Inc. | MWI #: 009307 | Anased 100 mg/ml (Ordered from MWI Veterinary Supply) |
| Saline | Hospira Inc. | 94-217-JT | |
| PBS | Sigma-Aldrich | 011M8207 | |
| Saponin | Sigma-Aldrich | BCBB4080 | |
| PECAM (CD31) | BD Biosciences | 553371 | |
| Streptavidin-CY3 | Jackson ImmunoResearch | 016-160-084 | |
| BSA | Jackson ImmunoResearch | 096555 | |
| VECTASTAIN Elite ABC | Vector Laboratories | PK-6100 | |
| Vector Nova Red | Vector Laboratories | SK-4800 | |
| VectaMount | Vector Laboratories | H-500 | |
| Table of Specific Reagents | |||