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Department of Pathology, Immunology, and Laboratory Medicine, University of Florida
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Campbell-Thompson, M. L., Montgomery, E. L., Foss, R. M., Kolheffer, K. M., Phipps, G., Schneider, L., et al. Collection Protocol for Human Pancreas. J. Vis. Exp. (63), e4039, doi:10.3791/4039 (2012).
这解剖和取样程序开发为糖尿病(nPOD)的计划,以规范准备恢复从尸体器官捐献者的胰腺胰腺器官捐赠者的网络。胰腺分为3个主要地区整个横向轴内侧串行的横截面(头,身,尾)。交替部分用于固定石蜡和鲜冻块和残留样品剁碎单元冷冻样品准备,无论有或无RNase抑制剂,DNA,RNA或蛋白质隔离。胰腺的解剖过程的总体目标是保持解剖定位的同时,品尝整个胰腺。
在小岛组成,大小和数字方面的内分泌细胞的异质性是人类胰岛的报告相比,啮齿动物胰岛1。大多数人类胰岛胰头,身体和尾巴地区组成的胰岛素containinGβ-细胞的比例较低,其次是胰高血糖素的α细胞和生长抑素的δ-细胞。胰多肽含PP细胞生长素含小量细胞也存在,但在小数字。相比之下,钩突地区包含主要胰岛胰多肽含PP细胞组成。这些区域的胰岛变化,从发展的差异产生。胰腺发展的前肠和胃和十二指肠,腹侧叶动作和保险丝背3旋转后的腹侧和背侧胰芽。腹侧叶形成的头后部,包括钩突背叶而产生的其他器官。另据报道,尾部区域,具有较高的胰岛细胞密度比其他地区和背叶源性成分,在1型糖尿病的发生选择性萎缩区域胰腺癌的变化
其他器官和组织往往是恢复从器官捐赠者和包括胰腺淋巴结,脾脏和非胰腺淋巴结。这些样品被收回冻存细胞的分离此外胰腺类似的格式。当近端十二指肠与胰腺,十二指肠粘膜可收集石蜡和冰冻块和碎单元冷冻的筹备工作。
1。设置
2。人员
3。胰腺解剖
4。脾,淋巴结节点Dissections和十二指肠黏膜夹层
5。 WRAP十月预标记的铝箔和地方十月块和块在长期储存箱小瓶在-80°C。
6。提交固定标本,石蜡处理
7。清洁夹层领域和消毒。洗清扫工具,并重新消毒。生物医学废物贮存,放置在福尔马林固定液残留的人体组织。根据当地法规丢弃在一个月内的生物医学废物。
8。更新的样品库存系统
ve_title“> 9代表结果。此过程将处理整个器官,包括三大区域,即,头部,身体和尾部2小时内划分的抽样代表一个完整的人类胰腺。钩突的地区,发现在后头部区域,包括在头部解剖。在没有糖尿病的器官捐赠者的平均胰腺重量为82.4克(52.7 - 139.0克)。胰腺区域重分别为约等于( 图3)。
这个过程也可以让重建整个胰腺利用连续石蜡和华侨城块的彩色幻灯片。多种格式允许的最大利用率,为当前和未来的技术是可行的。当前nPOD情况表( 附录1 ),用于记录回收样品和随后的PROCessing由等分的种类和数量。

图1。程序的总体方案。整个胰腺进行处理,同时保持解剖方向。头地区是在优越的上下轴,由于腹胰叶后的地区,其中包括钩突地区的存在。孵化面积在路口表示用于碎样本在冷冻管的地区。磷,石蜡,O,华侨城。

图2。刻字胰腺部分计划。横向胰腺切片可进一步分为两半或季度字母以顺时针的方式。

图3。胰腺重量从没有糖尿病的器官捐赠者。从成年捐赠者(> 17岁)的完整胰腺称重,然后分为区域和区域的权重获得。数据是手段±标准差(n = 15)。
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此过程的目标是定义一个标准的胰腺处理,可以跨多个收集点统一,从而使不同群体得到的结果进行比较。剥离的方法是基于标准的注释主要胰腺区域内细分区域的额外步骤与手术病理做法。标准化的biospecimen处理方法是必需的,以便收集高品质的最佳做法biospecimen收集出版由国家组织,如国家癌症研究所6 biobanking体现样品。从捐助者代表糖尿病和适当的控制人口的各个阶段的人类胰腺样本biobanking已报告7-9。然而,为从胰头地区收集这些样本的具体细节一直缺乏。相当多的个体间的胰岛细胞的异质性是众所周知的Wi日到5倍胰岛大小分布变化,使胰腺区域的注解时,需要分析固有的异质性10。胰腺样品处理标准格式,将协助解决个别病人因素,使其他潜在的主要疾病的因素,可以更好地解决。
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没有利益冲突的声明。
作者感谢捐助者的家庭和组织的专家协助参与这项研究和玛丽亚·马蒂诺和伊琳娜Kusmartseva器官采购。这项工作是由青少年糖尿病研究基金会(MC-T.,马萨诸塞州)在对糖尿病患者的胰腺器官捐赠者的网络支持。
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dissection instruments including scalpels with 22 blades | Various | Various | |
| Centrifuge tubes (15 and 50 ml) | Fisher Scientific | 05-539-5, 430828 | Sterile |
| Cryotubes(1.8 ml) | VWR North America | 89004-300 | Sterile, bar codes optional |
| RNAlater | Ambion | AM7021 | |
| Surgical Pathology Ink | |||
| Cassettes | Mercedes Medical | CAS ECO109 | |
| 10% Neutral Buffered Formalin | Fisher Scientific | 23-245-685 | |
| OCT Freezing Media | TissueTek | 4583 | |
| Molds | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 58952 | Various sizes |
| Isopentane | Fisher Scientific | O3551-4 | OCT chilling bath |
| Dry ice | OCT chilling bath | ||
| Liquid nitrogen in Dewar flask | Snap freezing cryovials | ||
| Cell culture dish (100mm) | Corning | 430167 | Sterile |
| Hyclone DMEF | Thermo Fisher Scientific, Inc. | SH30023.01 | Sterile, store refrigerated, glutamine included |
| Fetal Bovine Serum | Cellgro | 35-010-CV | Sterile, store frozen aliquots |
| Penicillin/Streptomycin/Antifungal | GIBCO, by Life Technologies | 15240-062 | Sterile, store frozen aliquots |
| Type 9 Paraffin | Richard-Allan Scientific | 8337 | |
| 1X D-PBS | GIBCO, by Life Technologies | 14190-144 | Sterile |
| 16% Paraformaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 15710 | Make fresh, store refrigerated |
| 8% Glutaraldehyde | Electron Microscopy Sciences | 16019 | Make fresh, store refrigerated |
| Biosafety Level 2 hood | Various | ||
| Ultra-low freezer | Various | ||
| Sakura Cassette Printer | Sakura Finetek | ||
| Sakura VIP300 | Sakura Finetek | Automatic paraffin processor | |
| Paraffin Embedding Station | Thermo Fisher Scientific, Inc. | ||
| Table 1. Specific reagents and equipment. | |||