Farvning protokoller for Menneskerettigheder bugspytkirteløer

1. Microtomy for ufarvede Sektioner

1. Opsæt vandbad og mikrotom som for standard paraffin microtomy. Brug positivt ladede dias og præ-label med sagsnummer, bugspytkirtel region (prøve) og dias nummer. Sted paraffin blok i mikrotomen patronen med kassetten etiketten på venstre side.
2. Følg normale microtomy procedurer, afsnit i blok indtil væv ensartet er stødt på. Udarbejdelse af et bånd af serielle sektioner (4 um tykke, 3-6 afhængigt af antallet af oprindelige krævede pletter (se sag materialet skema, bilag 1)). Adskilte sektioner i båndet, afhente hver i orden, og sted på objektglas med henblik nummereret med blyant. Betegner, hvis en del er ubrugt ved nummerering sektioner i præcis den rækkefølge. Bevar den samme retning på diaset, som findes i kassetten med Slide Label orienteret til venstre. Tørre natten over ved stuetemperatur og derefter fortsætte med farvning eller distribution til efterforskerne.
3. ResEAL overflade af paraffin-blok med tynde lag af paraffin til at bevare væv og arkivere ved stuetemperatur eller -20 ° C.
4. For efterfølgende microtomy, opretholde nummerering for serielle sektioner på hvert niveau som ovenfor. Få 1 ekstra dias og pletter af H & E slide for hver ~ 100 pM niveau inden for hver blok.

2. H & E farvning

1. Anbring den første serielle snit billede af hver blok i en slæde rack derefter i den første bakke i den automatiske farvningsanordning.
2. Vælg standard H & E pletten programmet og fortsæt som normalt.
3. Når du er færdig farvning, skal du fjerne dias fra Autostainer og sted i hætte for dækglas.
4. Dækglas under anvendelse af standard teknik. Tør grundigt og mærke med en trykt etiket (se punkt 12).

3. IHC Set-up

1. Vælg Dako programmet for dobbelt pletter og input antal dias. Forberede TBST og citratpuffere, antistoffer og andre Reagenser i henhold til angivne mængder (tabel 1). Læg reagensbakken og dias. Rotation af ren og affald linjer er programmeret i henhold til producentens anbefalinger.
2. Hvis udførelsen af ​​disse analyser manuelt, forberede anslåede mængder. Inkuber dias i et fugtigt kammer for at undgå dias udtørring på ethvert trin. Følg samme procedure for hver reagenser som når det anvendes til Autostainer.

4. IHC Afparaffinering og Antigen Retrieval

1. Sættes objektglassene i xylen i 5 minutter. Gentag én gang. Lad ikke objektglassene tørre ud på et senere tidspunkt, før angivet, da dette vil resultere i overdreven baggrunden og dårlig farvning.
2. Overfør objektglas til 100% ethanol i 2 minutter. Gentag én gang.
3. Sættes objektglassene i frisk fremstillet _3% H2O ₂ i methanol i 10 minutter.
4. Dip objektglassene i 90% ethanol og derefter placeres i 90% ethanol i 3 minutter.
5. Overførsel glider til70% ethanol i 1 minut.
6. Objektglassene skylles i afioniseret vand.
7. Forvarme damper og citratbuffer i dampkogeren i 5 minutter.
8. Føj dias til citrat buffer i dampkogeren og damp i 30 minutter.
9. Umiddelbart overføre dias til vand og holde, indtil glider afkøles til stuetemperatur (ca. 20 minutter).
10. Overfør objektglassene i Dako Autostainer stativer i henhold til farvning af sekvens (figur 1) og køre den dobbelte farvning programmet. De vigtigste trin i den automatiske farvningsanordnings programmet er angivet, så manuelle kørsler kan dublere.

5. Første primære antistoffer (Ki-67, CD3, pancreatisk polypeptid)

1. Bloker objektglas med Sniper opløsning i 15 minutter. Vaskes to gange med TBST.
2. Inkuber slides i primære antistof i 30 minutter. Vaskes to gange med TBST.
3. Inkuberes med Mach2 gede-anti-muse (Ki-67) eller anti-kanin (CD3, pancreatisk polypeptid) peberrodsperoxidase (HRP) polymer til 30 minutes. Vaskes to gange med TBST.
4. Anvende 3,3-diaminobenzidin-tetrahydrochlorid (DAB) til objektglas i 4 minutter. Vaskes to gange med vand.
5. Slides inkuberet med bugspytkirtlen polypeptid afholdes på Dako, når de analyseres samtidigt og TBST anvendes til alle efterfølgende skridt, mens de resterende dias inkuberes med det andet sæt af primære antistoffer. Alternativt, til manuelle analyser, gå til pkt 6.

6. Anden primære antistoffer (insulin, glucagon)

1. Inkuber slides i Deeb i 20 minutter. Vaskes to gange med TBST.
2. Blok med 10% normalt gedeserum i 20% avidin-blokker i TBST (insulin) eller Sniper (glucagon) i TBST i 20 minutter. Vaskes to gange med TBST.
3. Inkuberes med insulin eller glucagon primære antistof i 15 minutter. Vaskes to gange med TBST.
4. Insulin: Inkuber objektglassene i biotinyleret gede-anti-marsvine ved 1:300 fortynding i 30 minutter. Vaskes to gange med TBST. Inkuberes med standard vector ABC-AP reagens i 30 minutter. Vaskes to gange med TBST.
5. Glucagon: Inkuber objektglassene i buffer i 30 minutter efterfulgt af gede-anti-muse-alkalisk phosphatase (AP) polymer i 30 minutter. Vaskes to gange med TBST.
6. Mens objektglas inkuberet i konjugater ved at opvarme LPR buffer til stuetemperatur. Tilsæt 1 dråbe væske permanent rød (LPR) pr 3 ml buffer umiddelbart før brug og plads i Dako reagensstativ. Inkuber slides i LPC i 4 minutter. Vaskes to gange med vand.
7. Inkuber slides i hæmatoxylin i 1 minut. Skylles to gange med vand.
8. Inkuber objektglassene i TBS pH 7,6 i 1 minut. Skylles to gange med vand.
9. Unload dias fra DAKO Autostainer.
10. Umiddelbart dehydrere objektglas farvet for pancreatisk polypeptid. For alle dobbelte farvede objektglas, og derefter tørre i mindst 1 time dehydrere.

7. Dehydrering

1. Glassene anbringes i 80% ethanol i 1 minut.
2. Dyp objektglassene i 95% ethanol. Hold objektglas i 95% ethanol i 30 sekunder.
3. Overfør dias til 100% ethanol og holde 1 minut. Gentag.
4. Dip dias i xylen.
5. Hold objektglassene i xylen i 1 minut. Gentag.
6. Straks monteres dækglas på dias med Cytoseal.

8. Slide Mærkning

1. Indtast tilfældet identificere oplysninger, herunder orgel og bloknummer, pletter, og dato og print. Serial afsnit nummer er frivillig for de første slide pletter i hver blok. Efterfølgende niveauer er angivet med nummerering.
2. Sæt etiketter på dias.

9. Slide Scanning

1. Placer farvede objektglas i scanner bakke og scanne efter instrumentering.
2. Organiser dias ved donor og vævstype (pancreas hoved, krop, hale, milt).
3. Arkivere farvede objektglas ved stuetemperatur og de resterende ufarvede objektglas ved -20 ° C indtil anvendelse.

10. Representative Resultater

Disse farvningsprocedurer blev udviklet til JDRF netværk for Pankreatisk organdonorer med Diabetes (nPOD) til at give baseline karakterisering af paraffin og friske frosne blokke. Hver donor har en baseline karakterisering udføres består af farvning 2 blokke fra hver bugspytkirtlen region (hoved, krop og hale), og milten (figur 1, se også sag indsendelse formular, bilag 1). H & E farvning udføres under anvendelse af en automatiske farvningsanordning programmeret som en klinisk anlæg med klinisk kvalitet opløsninger anvendt hele vejen igennem. Som yderligere donorbistand blokke er sektioneret, hver har et dias taget for H & E for at vise vævsmorfologi. Når blokke er sektioneret igen, som til distribution til efterforskerne, vil dybere niveauer også dias taget for repræsentativ H & E dias til at dokumentere hele blokken væv morfologi samt nummerering serielle sektioner på hvert niveau. Farvede objektglas er mærket medtilfælde identifikation, bugspytkirtel region, bloknummer, pletter og dato (Figur 2) og scannet ind online patologi information management-system. Repræsentative billeder fra en kontrol donor er vist i figur 3 ved både lave og høje forstørrelser vise forventede resultater efter denne procedure. Objektglasset farvet med pancreatisk polypeptid (d, H) blev analyseret på en anden dag med assayet udføres manuelt og viser reduceret farvning intensitet hematoxylin kontrastfarve. Forskelle i farvningsintensitet af primære antistoffer eller kontrastfarve mellem assays skal undgås, især hvis du bruger billedet analyse ellers glider med krav om individuel farvekorrektion for at opnå den samme celle områder eller tæller.

Hvert laboratorium bør forvente at optimere antistof koncentrationer, lot-til-lot variation og andre reagenser og betingelser kan påvirke farvningsintensiteten og specificitet. Med købet af nye REAGents, er farvningsprocedurer valideres med kendte positive og negative kontrolprøver for at opnå den samme grad af pletten intensitet som med tidligere reagenser. Yderligere antistoffer optimeret i nPOD patologien kernen er tilvejebragt i tabel 2 som en referencekilde og er blevet anvendt til multilabeling immunofluorescens assays til konfokal mikroskopi.

Figur 1. Dako farvning nettet. Denne skematiske viser en rutinemæssig analyse fra en nPOD donor bugspytkirtlen udføres på en Dako Autostainer. De nPOD donorer er kodet med et 4-cifret identifikationsnummer. To glidebakkerne er vist med lysbilleder arrangeret af pletten. Alternative slide konfigurationer forventes afhængigt af antallet af donorer dias. Positive kontroller omfatter optagelse af et kendt positivt donor for de to dobbelte pletter og donor milt for Ki-67 og CD3. Negative kontroller er dobbelt og omfatter to SLIdes fra en donor pancreas blok inkuberet med immunoglobulin (Ig) fra værtsarten af ​​de primære antistoffer og to objektglas fra donor milt for insulin og glucagon.

Figur 2. Repræsentant dobbelt farvede billede. En typisk færdige billede vises med dias mærkning parametre og væv placering før den digitale scanning udføres.

Figur 3. Repræsentativ H & E og IHC pletter i pancreas sektioner. Snit fra pancreas fra en voksen kvinde organdonor (6096-04 Panhead) blev farvet og digitale udført scanninger som beskrevet i protokollen. Billederne blev opnået under anvendelse af ImageScope visning program hele sektionen (AD) og fra en ø-(EH). De forventede ø plet intensiteter for insulin, glucagon og pancreatisk polypeptid erobserveret for sektioner BD som afsnit D afgrænser denne pancreas hovedblokken indeholder en lille del af uncinate region eller ventrale pancreas Lap som alle øvævsceller indeholder hovedsageligt pankreatiske polypeptid-positive celler. Bemærk, at den hematoxylin kontrastfarve i panel D er for lys, medens hematoxylin kontrastfarve intensiteter i B og C er optimal. Paneler EH viser en ø fra den dorsale lap med den forventede fordeling af p-celler og α-celler. Enkelte pancreatisk polypeptid celler findes i den nedre venstre del af ø (H). A, E-H &E; B, F-Ki67 + insulin, C, G-CD3 + Glucagon, D, H-pancreatisk polypeptid. AD, 0,2 x, EH-12.8x.

Standardisering af IHC procedurer er kritisk for billedanalyse, især når der anvendes computer-baserede algoritme i store antal objektglas over tid. Den IHC farvning beskrevet i denne rapport vil gøre det muligt batch analyse af en given donors prøver ved hjælp af en Autostainer inden for en 8-timers arbejdsdag og er ændret fra en tidligere rapport ^5. Digitaliserede hele dias billeder af hver farves slide stilles til rådighed for nPOD-tilsluttede efterforskere gennem web-baserede online patologi system. Efterforskere kan gennemgå donorer demografi, laboratorie-data og andre relevante kliniske historie sammen med de dias, og er i stand til at vælge blokke passer bedst til deres studier (se http://www.jdrfnpod.org/online-pathology.php for mere information) . En sådan et online patologi-system fungerer som en "virtuel biobank". En yderligere forbedring af dette system vil blive gennemført WHEreby objektglas etiketter inkorporere en stregkode til at spore serielle sektioner og niveauer for hver blok med en eventuel mål 3-D rekonstruktion af pancreas.

De to dobbelte farvningsprocedurer blev primært valgt for at bestemme ø β-celle-sammensætning (insulin) i samråd med cellulære replikation (Ki-67) i betragtning af betydningen af at forstå mekanismerne for voksne β-celle regenerering i type 1-diabetes ^5,6. Som det andet dobbeltstrengede IHC Assayet udføres på serielle sektioner til den første, er hver ø kendetegnet både β-celle (insulin) og α-celle præparat (glucagon). Desuden er tilstedeværelsen af ​​T-lymfocytter (CD3) bestemt i forbindelse med α-celle-farvning af to hovedårsager. Basis af T-cellemedieret autoimmunitet i progressionen af ​​type 1 diabetes er klart forstås endnu arten af ​​de initierende midler (virus, bakterie, inflammatoriske celler) eller sammensætningen af ​​den kroniske infiltrat med resulCER β-celle dysfunktion og død er endnu ikke fastlagt (revideret i ^7,8). Sekund, donorer med type 1 diabetes er en velkarakteriseret mangel på p-celler, således at kombinationen af CD3 og glucagon pletter sikrer identifikation af øer, selv når β-celletab er alvorlig ^9.