The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

1,2, 2, 2

1Department of Surgery, University of California, San Francisco - UCSF, 2Department of Pathology, Stanford University School of Medicine

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 107.22.127.92, User IP: 107.22.127.92, User IP Hex: 1796636508

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

Tseng, W., Leong, X., Engleman, E. Orthotopic Mouse Model of Colorectal Cancer. J. Vis. Exp. (10), e484, doi:10.3791/484 (2007).

Abstract: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

Традиционные опухоли подкожной модели далеки от идеальных для изучения рака прямой кишки. Ортотопическая модели мыши колоректального рака, особенностью которой раковые клетки растут в их естественном месте, копировать человеческие заболевания с высокой точностью. Два метода могут быть использованы для создания этой модели. Оба метода схожи и требуют анестезии мыши и лапаротомию для выявления слепой кишки. Один метод предполагает введение колоректального рака суспензии клеток в слепой кишки стену. Раковые клетки вырастили первый в области культуры, собранных при subconfluent и готовят суспензии отдельных клеток. Небольшой объем клетки вводят медленно, чтобы избежать утечки. Другая техника включает в себя трансплантацию части опухоли подкожной на слепой кишки. Мышь с ранее установленной опухоли подкожной колоректального является эвтаназии и опухоль удаляется с использованием стерильной техники. Опухоль часть разделена на мелкие кусочки для пересадки на другой мыши. До трансплантации, слепой кишки стены слегка поврежденных чтобы облегчить опухолевой инфильтрации клеток. Время развитие первичной опухоли и метастазов в печень будет варьироваться в зависимости от техники, клеточной линии, и мышь видов, используемых. Это ортотопической модели мыши полезны для изучения естественное развитие колоректального рака и тестирования новых лекарственных средств против колоректального рака.

Protocol: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

I. Подготовка сотовый

  1. Колоректальный раковые клетки выращиваются в культуре и собираться после subconfluent.
  2. Суспензии отдельных клеток готовят в фосфатном буферном растворе и держал на льду.

II. Опухоль подготовка

  1. Мышь с ранее установленной опухоли подкожной колоректального является эвтаназии.
  2. Опухоль подкожной удаляется с использованием стерильной техники и разделен на части 2-3 мм
  3. Опухоль части хранятся в фосфатном буферном растворе на льду.

III. Мышь Подготовка

Примечание: В нашей лаборатории мы используем вдыхании изофлуран на анестезию мыши; альтернативно, можно использовать инъекционного наркоза, чтобы достичь того же эффекта

  1. Глубины анестезии оценивается с помощью ног крайнем случае. Там должно быть никаких снять рефлекс с ног крайнем случае.
  2. Антибиотики могут быть даны в этой точке.
  3. Наркозом мыши, которая ранее была выбрита, правильно расположен.
  4. Живот нацелен с бетадин решение.
  5. Брюшной полости и хирургические сайта завернуто в стерильных моды.

IV. Лапаротомия

  1. Небольшой ник выполнен в коже
  2. Брюшная мускулатура стены схватил и поднял
  3. Брюшную полость вводится и одного лезвия ножниц используется для передачи внутрибрюшного содержимого от
  4. Разрез продлен до 2-3 см.

В. Воздействие Слепая кишка

  1. Слепая кишка с ее слепой мешок окончание выявлены и экстериоризируется
  2. Слепая кишка изолированы от остальной части мыши, используя нарезанные, стерильные марлевые
  3. Теплые солевые используется для хранения влажного слепой кишки

VI. Введение клеток в слепой кишки стены

  1. 27 G или тоньше игла для инъекций 50 мкл объема клеток в слепой кишки стену
  2. Игла удаляется
  3. Место инъекции осматривается, чтобы убедиться в отсутствии утечки
  4. Слепая кишка возвращается в брюшную полость

VII. Трансплантация опухоли на Слепая кишка

Примечание: В дополнение к инъекционным клеток в слепой кишки стены, Альтернативный подход заключается в трансплантации опухоли на слепой кишки

  1. Фигура 8 стежка помещается на слепой кишки использованием 6-0 или 7-0 размера шва
  2. Слепой кишки стены слегка поврежденных
  3. Затем опухоль кусок позиционируется
  4. Стежка увязла
  5. Слепая кишка возвращается в брюшную полость

VIII. Мышь брюшной Закрытие стены и восстановление

  1. Мышь брюшной стенки закрыта с помощью трех прервал стежки использованием 3-0 или 4-0 размера шва
  2. Кроме того, можно использовать простой работает стежка
  3. Послеоперационные анальгетики и жидкости болюсно может быть дана в этом пункте
  4. Мышь, допускается, чтобы оправиться от наркоза.

Примечание: При ингаляционных анестетиков это обычно занимает 30 секунд

IX. Результаты - Первичная опухоль и метастазы печени


Первичные опухоли - показано на месте () и с признаками неоваскуляризации (B), с окрашиванием H & E, опухолях локально инвазивной (С)


Метастазами в печень - показал бывший естественных условиях (D)

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

Хотя мышиные модели подкожной опухоли легко установить и контролировать, то ясно, что эта модель не может воспроизвести оригинальную анатомических сайт колоректального рака. Из-за разницы в микросреде, толстой кишки раковые клетки растущего под кожей, как было показано изменение их фенотипа и почти всегда терпят неудачу на пути прогресса и метастазировать 1,2. На самом деле, ответ опухоли на лечение может значительно варьироваться в зависимости от того, раковые клетки имплантируются в внематочной (подкожно) по сравнению с ортотопической месте 3. Ортотопическая модели мыши колоректального рака, особенностью которой раковые клетки растут в их естественном месте, копировать человеческие заболевания с высокой точностью. Два метода создания этой модели имеют уникальные преимущества и недостатки. Введение суспензии клеток в слепой кишки стены вводит клеток колоректального рака, которые были ранее растет в среду в пробирке и, возможно, являются однородными. Ячейки могут сократили инвазивных или метастатический потенциал после нескольких пассажей в культуре. Трансплантация часть опухоли подкожной вводит более гетерогенной популяции раковых клеток, которые были созданы в естественных условиях. Тем не менее, опухоли содержат стромальных клеток и часто имеют некротические части, которые могут повлиять на соответствие этой модели (личное сообщение, И. Фидлер, MD Anderson). С технической точки зрения, наша лаборатория обнаружили, что инъекции клеточной суспензии в слепой кишки стены труднее и несет риски внутрипросветный инъекции и утечки после инъекции. Интересно, что ортотопической мышиной модели рака прямой кишки был описан, которая не требует мыши лапаротомия 4. Мыши наркоз и слизистой оболочки ректальной является выпадение с цифровыми давления. Небольшой объем клеток колоректального рака в суспензии отдельных клеток, вводят подслизистый слой. Первичная, инвазивные прямой кишки развиваются в мышах уже через неделю после инъекции, однако ни одна из мышей развиваться метастазы в печень, и авторы не стали комментировать частота легких metasases.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

Acknowledgements: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

Отделение хирургии, Университет Калифорнии, Сан-Франциско
Раймонд Шахин, доктор медицинских наук

Materials: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

Name Company Catalog Number Comments
Cell culture media and components will vary depending on cell line used
Phosphate Buffered Saline BioWhittaker 17-512F also sold by a number of other vendors
15 mL centrifuge tubes, polypropylene Corning 430790
6 well plates with lid BD Biosciences 353046
Iris forceps, straight, serrated tips World Precision Instruments, Inc. 15914 best to have a pair of these instruments
Iris dissecting scissors, straight, sharp World Precision Instruments, Inc. 14393
Needle Holder (regular) World Precision Instruments, Inc. 14109
Needle Holder (Castroviejo) World Precision Instruments, Inc. 14137
Cidex Plus World Precision Instruments, Inc. 7364 instruments should be autoclaved periodically, but may also be sterilized by soaking in Cidex
6-0 or 7-0 suture for cecum; courtesy of Department of Surgery, UCSF
3-0 or 4-0 suture for abd wall; courtesy of Department of Surgery, UCSF
Anesthetic machine / Isoflurane J.A. Baulch and Associates 3206 also sold by a number of other vendors
Heating Pad, disposable, 6" x 6" Prism Technologies 20419
Tape, orange, 13 mm x 13 m Fisher Scientific 15901F for restraining anesthetized mouse
Pro-Cord/Cordless Trimmer Oster Professional Products 78997-010 for shaving mouse fur
Betadine Fisher Scientific 19-027132 may also be purchased at any medical supply store
2 x 2 gauze, 3-ply Johnson & Johnson 7635 may also be purchased at any medical supply store
Sterile Field, Barrier, 16" x 29" Johnson & Johnson 0905 may also be purchased at any medical supply store
Cotton tipped applicators, 6" Fisher Scientific 14-960-3Q may also be purchased at any medical supply store
Syringe, 10 cc, Luer lock tip BD Biosciences 309604
Syringe, 1 cc, tuberculin, slip tip BD Biosciences 309602
27 1/2 G needle BD Biosciences 305109
30 G needle BD Biosciences 305106

References: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

1. Heijstek, M.W., Kraneburg, O., Borel Rinkes, I.H. Mouse models of colorectal cancer and liver metastases. Dig Surg. 22, 16-25 (2005).

2. Kobaek-Larsen, M., Thorup, I., Diederichsen, A., Fenger, C., Hoitinga, M.R. Review of colorectal cancer and its metastases in rodent models: comparative aspects with those in humans. Comp Med. 50, 16-26 (2000).

3. Wilmanns, C., Fan, D., O’Brian, C.A., Bucana, C.D., Fidler, I.J. Orthotopic and ectopic organ environments differentially influence the sensitivity of murine colon carcinoma cells to doxorubicin and 5-fluorouracil. Int J Cancer. 52, 98-104 (1992).

4. Kashtan, H., Rabau, M., Mullen, J.B., Wong, A.H.C., Roder, J.C., Shiptz, B., Stern, H.S., Gallinger, S., Intra-rectal injection of tumor cells: a novel animal model of rectal cancer. Surg Oncol. 1, 251-256 (1992).

Ask the Author: Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

9 Comments

Wow... This is great!!!
Now it really really looks like a journal, feels like a journal.
It is very professional and holds very very high standards..
congratulations...

1

Reply

Posted by: AnonymousDecember 6, 2007, 10:13 AM

thanks for your article. 

i wonder what kind of cells be injected. 

orgin of cell(ex, human) doesnt matter?

2

Reply

Posted by: AnonymousMarch 18, 2008, 9:03 PM

Hello
Is there any mice model for the research of glioma? Our lab has just begin the study in this area.We really need some help here.
Thanks a lot

3

Reply

Posted by: AaronApril 20, 2010, 9:12 AM

Yeah, an agressive model! By the way, I wanna search some articles with regard to the advantages or prospect of SOI(i.e. Surgical Orthotopic Implantation) for establishing cancer models in nude mice. Would you please offer any data or literatures? Thanks so much with all the best regards.

4

Reply

Posted by: Xiangdi Z.July 16, 2011, 10:24 AM

Yeah, an agressive model! By the way, I wanna search some articles with regard to the advantages or prospect of SOI(i.e. Surgical Orthotopic Implantation) for establishing cancer models in nude mice. Would you please offer any data or literatures? Thanks so much with all the best regards.

5

Reply

Posted by: AnonymousJuly 17, 2011, 1:45 AM

It is a wonderful demonstration! Now, I am searching some video with regard to the Surgical Orthotopic Implantation in prostate cancer in nude mice. Would you please offer this? Many Thanks.

6

Reply

Posted by: Sun FengNovember 10, 2011, 7:50 PM

I wonder what is the type of camera used to take the pics? I am not getting nice clear pics for my experiments

7

Reply

Posted by: laasyaNovember 17, 2011, 2:36 PM

Hello Dear Author
would you please describe,How did you assess tumor growth after injection or transplantation?
how many days after tumor injection or transplantation you could be sure to sacrifice mouse ?

8

Reply

Posted by: tarlan j.October 17, 2012, 9:46 PM

Hello Dear Author
would you please describe,How did you assess tumor growth after injection or transplantation?
how many days after tumor injection or transplantation you could be sure to sacrifice mouse ?

10

Reply

Posted by: tarlan j.October 19, 2012, 10:01 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter