The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Изготовление Термопластичные микрожидкостных каналов

, ,

Department of Biomedical Engineering, Boston University

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 54.234.180.187, User IP: 54.234.180.187, User IP Hex: 921351355

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Изготовление Термопластичные микрожидкостных каналов

Bhattacharyya, A., Kulinski, D., Klapperich, C. Fabrication of the Thermoplastic Microfluidic Channels. J. Vis. Exp. (12), e664, doi:10.3791/664 (2008).

Abstract: Изготовление Термопластичные микрожидкостных каналов

В нашей лаборатории мы успешно изолированных нуклеиновых кислот непосредственно из микролитр и submicroliter объемов человеческой крови, мочи и кала использованием полимер / наночастицы композитных микромасштабной лизиса и твердых экстракционные колонны фазу. Восстановленные образцы сосредоточены и образцов малого объема, которые PCRable, без дополнительной очистки. Здесь показано, как для изготовления термопластичных микрожидкостных чипов использованием горячего тиснения и заварены. Затем мы показываем, как использовать на месте света, направленный поверхности прививки и полимеризации через запечатанном чип для формирования смесевых твердых столбцов фазу. Мы показываем, прививки и полимеризации углеродных нанотрубок / полимерных композиционных колонки для бактериального лизиса клетки. Затем мы показываем, лизис процессе последующей твердофазной экстракции нуклеиновых кислот из образцов на чипе использованием кремния / полимерных композиционных колонке. Прилагаются протоколы содержат подробные инструкции о том, чтобы и лизиса и твердых экстракционные колонны фазу.

Protocol: Изготовление Термопластичные микрожидкостных каналов

Микрожидкостных каналов изготавливаются в циклических полиолефина (Zeonex ® 690R, Zeon Химическая Inc, Луисвилл, Кентукки). Zeonex имеет температуры стеклования (Т г) 136 ° С и УФ-прозрачные, что очень важно для света, направленный химии, используемые в пористых монолит образования. Микроканалов изготавливаются по микро-горячего тиснения с Нико electroformed мастер-формы, которая имеет отрицательный (обратный) особенности микрожидкостных платформы. Горячего тиснения делается следующим образом:

  1. Плесени и полимерной подложки располагаются между двумя параллельными валиками металла.
  2. Валики нагреваются до температуры тиснения (166 ° C), что на 30 º С выше Т г Zeonex.
  3. Валики затем прижимаются друг к другу в течение примерно 5 мин и давление поддерживается на уровне 250 фунтов на квадратный дюйм.
  4. Плесени и подложки затем удаляются из нагретого валики, дают остыть в течение 1-2 мин, а затем вручную отделяются друг от друга.
  5. Уэллс из 1,5-мм сверлятся на концах каналов для введения образца и коллекции.
  6. Тисненые пластиковые подложки затем термически связанного с другой частью Zeonex для формирования закрытых микрожидкостных каналов. Тиснением субстрата и крышкой кусок может быть УФ-озона или плазмы лечение до термоскреплением для повышения эффективности уплотнения и обеспечить верность закрытого типа канала (Бхаттачарья и Klapperich, 2007).

Изготовление твердофазной экстракции (SPE) колонку в пластиковых микрожидкостных каналов

Изготовление твердой фазы происходит в два этапа. Во-первых, сфабрикованных микроканалов являются модифицированной поверхностью для улучшения адгезии SPE колонке пластиковые устройства. Пересадка через поверхностные фотополимеризации используется для functionalize стен полимерные микроканалов.

Прививки процедура выглядит следующим образом:

  1. Микроканалы заполнены 1:01 смеси этилена диакрилат (EDA) и метилметакрилата (ММА) с 3% бензофенона, который является водород абстрагирование фотоинициатора. EDA, ММА и бензофенона закупаются у Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури.
  2. Чип то УФ-облучении в течение 10 мин при 254 нм УФ-волны и 200 мДж / см 2 энергии в ультрафиолетовом инструмент воздействия (CL-1000 UV Crosslinker, УПВ Inc, возвышенность, CA). Прививки происходит через H-абстракции полимеризации и приводит к поверхностной привязаны полимерных цепей, которые получают включены в полимеризации смеси, используемой для подготовки монолит во втором шаге.
  3. Избыток мономера удаляется из каналов, промыв с 15 мкл метанола использованием вакуум-аспирации.

После photografting процесса, микропористого полимера монолит формируется в микроканалов, что завлечь частиц кремнезема для выделения ДНК. Пористый монолит готовится на месте следующим образом:

  1. С модифицированной поверхностью каналы заполнены смесью монолит предшественник, состоящий из Бума (15% веса), Эдма (10% веса), 1-додеканол (52,5% веса), циклогексанол (22,5% веса), DMPAP (1% по весу по отношению до мономеров) и 0,7 мкм частиц кремнезема (15% по сравнению с общим объемом предварительно полимерная смесь). Кремнезема микросферы были приобретены у Polysciences, Inc (Уоррингтон, штат Пенсильвания) и мономеров и растворителей porogenic закупаются у Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури.
  2. Чип облучении УФ в УФ сшивателя при 200 мДж / см 2 в течение 1,1 мин до начала полимеризации, а избыток мономера удаляется из каналов, промыв с 15 мкл метанола использованием вакуум-аспирации.
  3. Жидкостного соединения (NanoPorts ТМ соединений, Апчерч Научные, Oak Harbor, Вашингтон), затем крепится на введение и сбор скважин микрожидкостных каналов.
  4. Пористый монолит затем снова промывают метанолом, по крайней мере, 30 минут, используя шприц насоса при расходе 100mL/hour.

Изготовление CNT лизис монолит в пластиковых микрожидкостных каналов

Изготовление CNT (углеродные нанотрубки) лизис монолит состоит из двух этапов. Во-первых, сфабрикованных микроканалов являются модифицированной поверхностью (привитые) таким же образом, как и для SPE столбцы в пластмассовое устройство.

После photografting процесса, микропористого полимера монолит формируется в микроканальных, пропитанную нескольких углеродных нанотрубок. Пористый монолит готовится на месте следующим образом:

  1. Многослойных нанотрубок ресуспендируют в циклогексанол в концентрации 2.27M. Это ресуспендирования является ультразвуком в течение 30 минут при 50% амплитуды и скважности 50% с сотовым sonifier нарушающими (Sonifier S-250D, производства Брэнсон ультразвуковой, Дэнбери, штат Коннектикут). Ультразвука при условии эффективного и стабильного 0.5M приостановлении УНТ. УНТ были приобретены у Nanolabs (Брайтон, Массачусетс).
  2. С модифицированной поверхностью каналы наполнены аналогичные смеси предшественников монолит исключением того, что теперь решение циклогексанол + УНТ используется. Смесь состоит из монолита Бума (15% веса), Эдма (10% веса), 1-додеканол (52,5% веса), и циклогексанол + УНТ (22,5% веса). К этому раствору фотоинициатора DMPAP добавляется (1,13% вес по отношению к мономеров). Мономеров, растворителей и porogenic DMPAPA закупаются у Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури.
  3. Чип облучении УФ в УФ сшивателя при 120 мДж / см 2 в течение 0,9 мин до начала полимеризации. Устройство переворачивается на 180 градусов в crossliker и облученных в течение еще ​​0,9 мин при 120 мДж / см 2. Избыток мономера удаляется из каналов, промыв с 50 мкл метанола использованием вакуум-аспирации.
  4. Жидкостного соединения (NanoPorts ТМ соединений, Апчерч Научные, Oak Harbor, Вашингтон), затем крепится на введение и сбор скважин микрожидкостных каналов.

Бактериальные Подготовка проб для использования с УНТ лизис монолит

Пробоподготовки для бактериальных образцов включает в себя прием измерения оптической плотности при 600 нм для того, чтобы образец не очень концентрированный, чтобы избежать засорения каналов.

  1. Возьмите чтения ОП при 600 нм с бактериями в средствах массовой информации, это делается с biophotometer (Eppendorf BioPhotometer, Эппендорф Научные, Inc, Westbury, Нью-Йорк). Разбавьте образец до OD чтениях попадает в этот диапазон 0.18-0.25 А.
  2. Центрифуга образца при 6500 оборотов в минуту в течение 5 минут и сцедить супернатант.

Лизис

  1. Ресуспендируют бактерий в GuSCN * + 0,01% SDS + 4% протеиназы К (0.8mg/ml). Vortex кратко (1 мл бактерий в СМИ должны быть ресуспендировали в 1 мл GuSCN). Протеиназы К был добавлен в раствор, чтобы помочь с денатурации белков, которые прикреплены к бактериальной ДНК и ингибировать DNAases и RNAases. Дополнительным преимуществом протеиназы К, что он также помогает при разрушении клеточных белков стены, которая является желательным, так как оба грамположительных бактерий и грамотрицательных бактерий, стены ячейки содержат большое количество белка (хотя и грамотрицательных бактерий, как правило, имеют больше белка ). Хаотропных буфера дополнительно средства протеиназы К с денатурации белков в то время как моющее средство разрушает клеточную стенку. Протеиназы К и гуанидиний тиоцианата (GuSCN) приобретены в Qiagen Inc (Валенсия, Калифорния). SDS (додецилсульфата натрия) был приобретен у Пирс (Рокфорд, штат Иллинойс).
  2. Сразу же нагрузка образца в шприц подключен к PEEK трубки. Аспирируйте шприц так, чтобы воздух не в системе. Подсоедините шланг к nanoport и канал.

KDS100 насос шприца (производства К. Д. Научные, Холлистон, Массачусетс) был использован для эксперимента и расхода используется 450 мкл / час для всех шагов. Поток канала образца лизиса на 450ul/hr.

  1. Сбор образцов и приступить к экстракции ДНК с помощью SPE (см. протокол выделения ДНК). ПРИМЕЧАНИЕ: Это бактериальная образца не нужно будет следить нагрузки Шаг 2, так как подвеска GuSCN *.

ДНК Добыча протокола

Добыча процедура состоит из 3 шагов:

  1. Load.
  2. Вашингтон
  3. Элюции.

KDS100 шприцевой насос (производство К. Д. Научные, Холлистон, Массачусетс) был использован для эксперимента и расход использовали 300 мкл / час для всех шагов.

Нагрузка

  1. Условие канал с хаотропных буфер (GuSCN *, гуанидиний тиоцианата) в течение 1-2 мин до начала эксперимента.
  2. Смешайте образца с хаотропных буфер в соотношении 1:1.
  3. Поток образец смеси через канал в течение 3 мин.

Мыть

  1. Вымойте канал с 70% этанолом в течение 2 мин.
  2. Вымойте канал со 100% этанола в течение 2 мин.

Элюировать

  1. Элюировать извлечения ДНК в Millipore воде в течение 3 мин. Сбор 15 мкл очищенной, ПЦР-готовый ДНК.

* GuSCN от Qiagen комплект (буфера RLT) был использован.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Изготовление Термопластичные микрожидкостных каналов

References: Изготовление Термопластичные микрожидкостных каналов

1. Bhattacharyya, A. and Klapperich, C.M., 2007. Mechanical and chemical analysis of plasma and ultraviolet-ozone surface treatments for thermal bonding of polymeric microfluidic devices. Lab Chip 7, 876-882.

Ask the Author: Изготовление Термопластичные микрожидкостных каналов

4 Comments

who and where did produce the NiCo electroformed master-mold? Have you any facility for such type of devices?

1

Reply

Posted by: AnonymousMarch 27, 2008, 8:21 AM

We do not have an in house facility for electroplating. We send out the master moulds to NiCoForm in Rochester, NY. They will take your DRIE Si or do the DRIE step for you.

Catherine Klapperich

catherin@bu.edu 

1.1

Reply

Posted by: AnonymousMarch 27, 2008, 10:47 AM

Here are a couple of more references that relate to this protocol:

 

Bhattacharyya, A. and C.M. Klapperich,”Microfluidics -Based Extraction of Viral RNA for  Disposable Molecular  Diagnostics, " Sensors and Actuators B: Chemical, Volume 129, Issue 2, 22 February 2008, Pages 693-698.

Bhattacharyya, A. and C.M. Klapperich, “Design and testing of a disposable microfluidic chemiluminescent immunoassay for disease biomarkers in human serum samples,” Biomed Microdevices. 2007 Apr;9(2):245-51.

Bhattacharyya, A. and C.M. Klapperich, Thermoplastic microfluidic device for on-chip purification of nucleic acids for disposable diagnostics. Anal Chem. 2006 Feb 1;78(3):788-92.

 

2

Reply

Posted by: AnonymousMarch 27, 2008, 10:50 AM

Dear Dr. Arpita Bhattacharyya
I am working on glass microfluidic devices such as micromixer, drop generator as my PhD program. I have a question about fittings that you used in this project. How did you fit the tubings and fittings together? Would you please send me the peek tubings and fittings you have used with details?
Yours sincerely.
bahadori1017@yahoo.com

3

Reply

Posted by: Alireza BahadoriSeptember 7, 2009, 7:14 AM

Great video, very informative. (I am also in the BU program)

4

Reply

Posted by: Mark JodoinJune 9, 2010, 12:05 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter