The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

,

Center for Neuroscience, University of California, Davis

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

Woods, G., Zito, K. Preparation of Gene Gun Bullets and Biolistic Transfection of Neurons in Slice Culture. J. Vis. Exp. (12), e675, doi:10.3791/675 (2008).

Abstract: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

Biolistic трансфекции это физические средства трансфекции клеток бомбардирующих ткани с высокой скоростью ДНК частицы, покрытые. Мы предоставляем подробные протокол для biolistic трансфекции срезах гиппокампа крыс, от первоначальной подготовке ДНК пулями в финал съемки органотипической культур ломтик использованием генной пушки. Трансфекции генов пушка является эффективным и простым средством трансфекции нейронов и особенно полезен для флуоресцентной маркировки небольшая часть клеток в тканях кусочек. В этом видео, мы первые наброски шагов, необходимых, чтобы покрыть частицы золота с ДНК. Далее показано, как линия внутри пластиковой трубкой с золотом / ДНК пули, и как разрубить этот трубопровод для получения пластиковых картриджей для загрузки в генной пушки. Наконец, мы выполняем biolistic трансфекции гиппокампа крыс культур срез, демонстрирующий обработку Bio-Rad Гелиос генной пушки и предложение консультаций устранения неисправностей для получения здоровых и оптимально трансфицированных ломтиками ткани.

Protocol: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

ПРОТОКОЛ BIOLISTIC трансфекции

Создание пуль

Пули хороши на срок до 6 месяцев, но может начать снижение эффективности трансфекции через 2-3 месяца. Пули должны храниться при температуре 4 ° С в присутствии осушителем гранул. Всегда давайте сцинтилляционные флаконы, в которых пули хранятся, нагреться до комнатной температуры перед открытием флакона.

Прежде, чем начать есть готовые:

  • Спермидина (0,05 М)
  • CaCl 2 (1M)
  • EtOH (100%-высокий класс-закрытой бутылке)
  • Автоклавного H 2 0
  • ДНК для трансфекции
  • Поливинилпирролидон (ПВП-20 мг / мл акций)
  • 2 X 15 мл конические (2/bullet комплект)
  • Трубка (сокращение в 1 X ~ 30 дюймов / пуля комплект)
  • Сцинтилляционных флаконов (1/bullet комплект)
  • Сушка гранул
  • 10 мл шприца ж / трубкой на конце

Подготовка трубки:

  1. Сухой ~ 30 дюймов труб (около 2 дюймов, выходящие за право уплотнительное кольцо) в трубы станции ж / N 2 газа (0,4 давления) в течение минимум 20 мин.

Осаждения ДНК на золото бисера:

  1. Подготовка ДНК для трансфекции в 50 μmL общего объема в микроцентрифужных трубку (не более 50 мкг тотальной ДНК)
  2. Взвесьте из 6-8 мг золота и трансфер в микроцентрифужных трубки
  3. Добавить 100 мкл 0,05 М спермидина на золото и разрушать ультразвуком в течение 20 сек
  4. Добавить 50 мкл ДНК, чтобы золото / спермидина
  5. Vortex (около настройки 5) ж / крышка открыты
  6. Добавить падение мудрых 100 мкл 1М CaCl 2
  7. Разрушать ультразвуком кратко (<5 сек)
  8. Разрешить для осаждения в течение 10 мин при комнатной температуре
  9. Разрушать ультразвуком кратко

Подготовка ПВП раствора во время обработки ультразвуком:

  1. Сделать разбавленный раствор ПВП в 15 мл конические, 3.5mL разбавленный ПВП для каждого набора пули (добавить 7,5 мкл фондовом 20mg/ml ПВП до 3,5 мл 100% этанола)

Промывка золотым бисером с этанолом:

  1. Спином вниз золотым бисером на полной скорости в течение 10 сек в микроцентрифужных
  2. Удалите надосадочную, но держать небольшое количество жидкости в верхней части золотым бисером
  3. Вымойте 3X с 1 мл этанола, разрушать ультразвуком кратко каждый раз, в случае необходимости

Ресуспендируют золото / ДНК в растворе ПВП:

  1. Ресуспендируют золотые гранулы в 200 мкл 3,5 мл разбавленного PVP / EtOH решение
  2. Vortex золотых гранул для ресуспендирования (кратко разрушать ультразвуком при необходимости)
  3. Передача 200 мкл золото / ПВП решение новых 15 мл коническую
  4. Продолжайте таким образом, добавив 200 мкл ПВП в то время, пока все золото было передано 15 мл конические, и окончательный объем составляет 3,2 мл

Покрытие трубки:

  1. Выключите № 2 на станции трубки и удалить сухой трубы
  2. Прикрепить сушеные трубку к 10 мл шприца
  3. Энергично встряхните 15 мл конические с золотом / ПВП
  4. Поместите конец трубки в золоте / ПВП решение и сосать медленно будьте осторожны, чтобы избежать пузырей
  5. Оставьте ~ 2 дюйма сухой с обоих концов трубы
  6. С трубкой еще привязаны к шприц и заполненный решение золото / ПВП, осторожно поместите трубку обратно в станцию
  7. Марк концы трубки, где сидит решение
  8. Пусть золото урегулировать в течение 5 мин с шприц прилагается
  9. Подлиза решение очень медленно, потянув шприц так, чтобы установившееся золото остается позади (убедитесь, что не обратно стирки)
  10. Отсоедините шприц
  11. Повернуть на 90 ° и пусть сидят в 2 секунды
  12. Поворот на 180 ° и пусть сидят еще 2 секунды
  13. Поверните трубку на 5 секунд
  14. Включите N 2, так что клапан читает между 0,4 - 0,5 и спина с золотым покрытием трубки во время сушки в течение 5 мин.

Резка трубы:

  1. Снимите трубку от трубки приготовительные-станции и отсек заканчивается знаками.
  2. Положите помечены сцинтилляционный флакон под трубы вертолета поймать сократить картриджи
  3. Место трубки в трубку вертолет и вырезать трубки с чистой бритвой
  4. Место высыхания гранул в сцинтилляционный флакон
  5. Магазин картриджей при 4 ° С

Съемки срезы тканей

При съемке культурный ломтиками, важно использовать относительно стерильной техники для того, чтобы избежать загрязнения. Помните, что при съемке двух различных конструкций, оба набора пули могут быть загружены в тот же держатель картриджа, но ствол-вкладыш и экран должен быть изменен между конструкциями.

Прежде, чем начать есть готовые:

  • ДНК пули (пусть сцинтилляционный флакон нагреться до комнатной температуры перед открытием)
  • Срезы тканей
  • Helios генной пушки
  • Гелий бак с генной пушки шланг прилагается </ LI>
  • Картридж держатель
  • Ствол лайнер с пластиковым кольцом на месте
  • Диффузор (модифицированный)
  • Диффузор экрана
  • Щипцы

Prepping генной пушки:

  1. Использование щипцов место золота покрытые пластиковой картриджей в держатель картриджа.
  2. Место держатель фильтра в генной пушки, сначала отодвинув блокировки
  3. Закрепите держатель фильтра с замком
  4. Получить баррель лайнер с уплотнительным кольцом и диффузор экран надежно в месте
  5. Винт баррель-лайнер в генной пушки

Съемки культурных срезов генной пушки:

  1. Наденьте наушники
  2. Подключите гена пистолет в бак шланг подключен газ гелий
  3. Поднимите давление в баке до 180 PSI
  4. Стреляйте пустое в воздух, чтобы удалить пыль и мусор с диффузором экране. Стрелять пушка, во-первых нажмите кнопку блокировки, пока пистолет гудки, а затем нажать на курок.
  5. После съемки пустой, удалить ломтики из инкубатора
  6. Advance пистолет сначала построим
  7. Съемка с диффузором экрана около 0,5 - 1 см от среза
  8. Advance картридж между скважинами.
  9. После съемок последнего хорошо, место ломтики обратно в инкубатор
  10. Выключите газ и сброса давления перед отсоединением пистолет из гелия шланга
  11. Отвинтите баррель лайнера, и удалите картридж и использовать снаряды

Чистящий картридж владельцев и ствол лайнеров:

  1. Место патронов, ствол лайнеры, и диффузор экраны в стакан с мыльной водой
  2. Место стакан в sonicator ванны и разрушать ультразвуком в течение 20 минут
  3. Тщательно смойте водой, пока все остатки мыла удаляются
  4. Замочите в 70% этаноле в течение часа
  5. Место на сухое бумажное полотенце на ночь для сухой
  6. Чистая патронов, ствол лайнеры, и экраны могут быть повторно использованы в последующих biolistic трансфекции

Устранение неисправностей советы для Biolistic Трансфекция

Biolistic трансфекции иногда может привести к нерациональному условия трансфекции. Это может привести к слишком мало или слишком много клеток, трансфицированных, слишком высокий или слишком низкий уровень экспрессии, или может причинить срезы тканей, чтобы стать вообще вредно для здоровья. Часто результатом нездоровой ломтики от давления взрыва. Вот некоторые подсказки, чтобы получить оптимально трансфицированных ломтиками ткани.

Если ломтики кажутся нездоровыми (или, если слишком много клетки трансфицированных / срез), попробуйте:

  • увеличение расстояния съемки
  • уменьшая давление на топливном баке
  • уменьшении количества золота
  • вырезания центр Bio-Rad диффузор и замена центр с диффузором экране.

Если слишком мало клетки трансфицированных, попробуйте:

  • уменьшение расстояния съемки
  • все большее давление на топливном баке
  • увеличение количества золота
  • увеличение числа срезы тканей / а
  • убедитесь, что уплотнительное кольцо в стволе-лайнер не поврежден.

Если вы получаете ломтики с обеих слишком много и слишком мало клеток, трансфицированных за тот же съемки убедитесь, что:

  • что вы держите в руках пистолет симметрично выше хорошо
  • , что золото является равномерное покрытие внутри трубы. (Если вы получаете линии золота, вытянуть супернатант из трубы более быстрыми темпами, как только золота осела и вращать золота больше, прежде чем включить азота. Если, с другой стороны, вы получаете полос золота , это, вероятно, из-за слишком много влаги во время воздействия пули решений: убедитесь, что вы используете закрытой бутылке EtOH, что трубка полностью высохнуть перед нанесением покрытия, и что вы укупорки крышек и подготовке пуль своевременно).

Если эффективность трансфекции кажется оптимальной (# клеток, трансфицированных / срез), но уровень экспрессии кажется слишком высокой или слишком низкой:

  • настроить соотношение ДНК к золоту. (Например, если оно слишком низкое поддерживать количество золота, но увеличить количество ДНК.)
  • регулировать количество времени между съемкой и сбора данных

В случае двойного трансфекции, если вы получаете слишком мало выражению одного из ваших конструкций, настроить соотношение двух конструкций в надлежащей форме и убедиться, что обе конструкции под тем же промоутер, с тем чтобы убедиться, что одна Промоутер не будет из-конкурировать с другом.

Discussion: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

Biolistic трансфекции это физические средства трансфекции клеток с помощью бомбардировки живой ткани с высокой скоростью ДНК частицы, покрытые золотом. В частиц опосредованного переноса генов, в общем-трансфицированных клеток результат, когда пуля приходит в состояние покоя в ядре. Хотя много различных методов трансфекции существуют, например, микроинъекции, липофекция, кальций-фосфат трансфекции, электропорации и вирусной трансфекции, biolistic трансфекции может предложить менее трудоемким и эффективной альтернативой для трансфекции клеток, которые не так легко трансфекции с помощью других методов. На самом деле, он был впервые разработан в качестве методики переноса генов в растениях так как наличие клеточной стенки сделаны трансфекции трудно использованием существующего метода 1. Точно так же biolistics приобрел популярность в области нейробиологии с пост-митотического нейронов, которые заведомо трудно трансфекции 2,3. В частности, она широко известна как принцип техники, которые будут использоваться в экспериментах, направленных на оценку тонкой морфологии отдельных нейронов в интактных ломтики мозга. Методы, описанные здесь, обеспечивают детальное и всестороннее объяснение, как выполнить biolistic трансфекции культурный ломтики мозга с помощью ручных генной пушки (Helios генной пушки системы; Bio-Rad).

Biolistic трансфекции стала предпочтительным методом трансфекции нейронов в срез культуры, поскольку она позволяет трансфекции редкими количество клеток по всему мозгу срез. Таким образом, отдельные нейроны могут рассматриваться в изоляции. Так как этот метод особенно хорошо подходит для трансфекции нейронов в мозге ломтик, он часто используется в сочетании с 2-фотонной микроскопии, так как 2-фотонного возбуждения позволяет визуализацию флуоресцентно меченых клеток глубоко внутри ткани рассеяния света 4. Действительно изображения с высоким увеличением одного пирамидных нейронов, представленные в этом видео были получены с помощью пользовательских построен 2-фотона лазерного сканирующего микроскопа. В заключение biolistic трансфекции является эффективным средством трансфекции отдельных клеток в контексте высокой плотностью окружающих клеток, и как таковое оказалось чрезвычайно полезным для флуоресцентной маркировки отдельных нейронов в нейронной культуры срез.

Disclosures: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

Acknowledgements: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

Мы хотели бы поблагодарить Марка Lucanic и Хуай-Чен Ченг за помощь в приобретении изображений с низким увеличением целых срезах гиппокампа, представленные в этом видео. Мы также хотели бы поблагодарить Сара Пэриш за помощь с текстом сопровождающие видео.

Materials: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

Name Type Company Catalog Number Comments
1.6um gold particles (microcarrier) 0.25g Bio-Rad 1652264
1M CaCl2 Fluka 21115
100% EtOH 1pint Goldshield
Cartridge Tubing Bio-Rad 1652412
Scintillation vials 20ml, 500/case VWR international 66021-668
Dessication pellets Dricap MTI (800-445-9890)
Water bath sonicator model 50T VWR international
Cartridge holder pack of 5 Bio-Rad 1652426
Barrel liner pack of 5 Bio-Rad 1652417
Diffuser screen pack of 5 Bio-Rad 1652475
O-ring 75 Viton, Size 007, Qty, 100 McMaster-Carr
Screen (mesh) McMaster-Carr 144258
PVP 20mg/ml in EtOH Bio-Rad Comes with tubing from biorad
Tubing prep station Bio-Rad 1652418
Tubing cutter Bio-Rad 1652422
Helios Gene-Gun Bio-Rad 1652411
Gene gun hose Bio-Rad Comes with Gene-Gun
Spermidine 5g Sigma-Aldrich s-0266
Although we have listed all the products seperately, it is more economical to purchase "Helios Gene-Gun System", which includes with all the products from Bio-Rad listed above (cat # 165-2431).

References: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

1. Klein, TM., Fromm, M., Weissinger, A., Tomes, D., Schaaf, S., Sletten, M. and Sanford, JC. Transfer of foreign genes into intact maize cells with high-velocity microprojectiles. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 85, 4305-4309 (1988).

2. Wellmann, H., Kaltschmidt, B. and Kaltschmidt, C. Optimized protocol for biolistic transfection of brain slices and dissociated cultured neurons with a hand-held gene gun. J. Neurosci. Methods. 92, 55-64 (1999).

3. McAllister, AK. Biolistic transfection of neurons. Sci. STKE 51, 1-13 (2000).

4. Svoboda, K. and Yasuda, R. Principles of two-photon excitation microscopy and its applications to neuroscience. Neuron. 50, 823-839 (2006).

Ask the Author: Подготовка генной пушки Маркеры и Biolistic Трансфекция Нейроны фрагмент культуры

14 Comments

Wow! This is a great article! A detailed visual and written protocol, superb. Congratulations to the authors and editors!

I have only one minor criticism: the use of "inches" (instead of centimeters).

1

Reply

Posted by: AnonymousFebruary 15, 2008, 7:38 AM

Do you routinely have problems with humidity in the lab environment?  I work down at UTMB in Galveston, TX and we were told that it would be difficult to make the bullets because of our high relative humidity.  Your article is great, very concise and easy to follow, and it seems like you don't worry about relative humidity at all.

Thanks for any help you can give!

2

Reply

Posted by: AnonymousFebruary 21, 2008, 3:46 PM

It is relatively dry in Davis (~20% humidity), so yes: we do not worry about humidity. But Dr. Zito used to make bullets back at Cold Spring Harbor in the thick of humid New York summers and never had any problems. If you dry your tubing thoroughly (~30 min) with nitrogen and use a newly unopened bottle of EtOH every time I imagine that you should be fine.

-Georgia

2.1

Reply

Posted by: AnonymousFebruary 22, 2008, 2:29 PM

 

First of all, I must credit the authors and video team for an extremely well written protocol.   I have been struggling to get a complete picture of biolistic tranformation and this video entry very effectively demonstrates the use of the Bio-Rad Gene Gun.

I am in the process of developing a biolistic method for the transformation of bacterial cell cultures.  Since biolistics is not very often utilized for bacterial transformation even the technical reps over at Bio-Rad knew little about the details.  Do the authors or anybody else know others that have worked with transforming bacterial cell lines using the Gene Gun?  If so, I would appreciate any references for these methods.

I am aware that their is a secodary biolistic system available through Bio-Rad called the method using a Biolistic® PDS-1000/He
Particle Delivery System
.  This system consists of a pressurized chamber component - as opposed to the Gene Gun - for particle delivery.  It is my understanding that this system is better for bacterial transformation.  However, I have come across a loaner Gene Gun system (not the PDS-1000) and would like to attempt bacterial transformation with this.

Any help will be appreciated.

 

 

   

3

Reply

Posted by: AnonymousFebruary 28, 2008, 2:20 PM

Hi Trook, I'm interested to know if you succeeded in transforming bacteria with the gene gun?

3.1

Reply

Posted by: JJAugust 3, 2011, 2:46 AM

This is a wounderful video on use of gene gun. I would like to download this video, how could i should do this.  i am starting to apply this technique in studying ion channels.  could you please let me know the way of downloading this clip.

Thanking you

Sincerely

Nagesh. M

 

4

Reply

Posted by: nagesh muniyappaMay 16, 2008, 3:04 PM

Greetings Nagesh!  Good to hear you want to put biolistic transfection to such noble use!  I spent my graduate career as a channelologist.  Please contact me directly and I will set you up with a way to access this video for download.

AaronK@JoVE.com

 

4.1

Reply

Posted by: Aaron K.May 16, 2008, 6:20 PM

I had never done this protocol before, and using this technique has been HUGELY helpful.  It it an easy to use protocol, well written, and the video showing the steps have been so easy to follow.

Thanks so much, with this protocol I am already becoming quite proficient, and my boss is thrilled with me.

5

Reply

Posted by: SheriJuly 2, 2008, 10:39 AM

why do you use gold particles instead of tugstene particles?

6

Reply

Posted by: patsyOctober 18, 2008, 8:00 PM

It turns out that tungsten can be toxic to cells, and catalytically
degrades DNA.(Sanford et al. 1993). Hope that helps.

7

Reply

Posted by: Georgia WoodsOctober 21, 2008, 12:49 PM

Thank you very much for making this video! Very precise and easy to follow. This really helps my experiment.

8

Reply

Posted by: YoichiNovember 29, 2008, 3:48 PM

Hi...
This protocol was very useful and I agree with all the positive comments posted above! I am using it to transect hippocampal brain slices.
I have a question about the distribution of the bullets into the slices. Although, I am following this protocol, I am not able to achieve optimal transfection efficiency. Also, the distribution of the transfected cells throughout the slice does not remain uniform. I have tried using the mesh suggested in this protocol and that too does not make much difference; While In the images displayed in this protocol I could see very well uniformly transfected cells throughout the slice. Can you give any suggestions to improve uniformity in distribution of transfected cells?

9

Reply

Posted by: ShrutiJuly 14, 2010, 5:04 PM

Hi Shruti,
I can think of two likely possibilities:
(1) the gold in the bullets is not evenly distributed -- try to make sure that it does not end up all on one side
(2) you are shooting too close to your samples-- try backing up a bit
Best of luck!

9.1

Reply

Posted by: Karen Z.July 27, 2010, 12:15 PM

how can i download the video?.

10

Reply

Posted by: jimuelOctober 18, 2011, 6:54 AM

It is not possible to download any of our video articles. This particular article is free to view so you can enjoy it many times over.

Best,
JoVE

10.1

Reply

Posted by: ward parryOctober 18, 2011, 11:59 AM

Hi, I was wondering if it is possible to stain the tissues with other antibodies either before or after labeling with the gene gun. I usually label brain slices with DiI using the gene gun but I also want to look at some other proteins and I was thinking of using the same slices for IHC as well if possible?

11

Reply

Posted by: HarpreetJanuary 26, 2012, 5:18 PM

Hi Harpreet,
We have never done this but I don't see why not... try it?
Best of luck!

12

Reply

Posted by: kzJanuary 29, 2012, 8:03 PM

Dear Dr. Woods,

First, I wanted to thank you for this video. It allows to show very clearly all stages of the biolistic transfection protocol.

I would like to try your modified diffusion screen but the catalog number 144258 is unobtainable.

I would be very grateful if you could maybe give me the characteristics of your screen mesh please?

I am looking forward to hearing from you.

Best regards,

Paula

13

Reply

Posted by: Paula P.July 6, 2012, 5:55 AM

Hi Paula- sorry for the delay. The mesh can be obtained from McMaster-Carr - item number 9317T109 - http://www.mcmaster.com/#catalog/118/412/=iirztc - Corrosion-Resistant 304 SS Wire Cloth Disc 100 X 100 Mesh, 1-1/4" Diameter, .0045" Wire Dia - let me know if you have any problems and good luck!

14

Reply

Posted by: Karen Z.July 22, 2012, 5:43 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter