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Woods, G., Zito, K. Preparation of Gene Gun Bullets and Biolistic Transfection of Neurons in Slice Culture. J. Vis. Exp. (12), e675, doi:10.3791/675 (2008).
Biolistic Transfektion ist eine physikalische Mittel zur Transfektion von Zellen durch den Beschuss Gewebe mit hoher Geschwindigkeit DNA beschichtete Partikel. Wir bieten Ihnen ein detailliertes Protokoll für biolistischen Transfektion von Ratten-Hippocampus Scheiben, von der ersten Herstellung von DNA-ummantelten Kugeln um die letzten Schießen der organotypischen Kulturen mit einer Gen-Kanone. Gene gun Transfektion ist eine effiziente und einfach mittels Transfektion von Neuronen und ist besonders nützlich für Fluoreszenzmarkierung eine kleine Untergruppe von Zellen im Gewebe zu schneiden. In diesem Video haben wir zunächst einen Überblick über die erforderlichen Schritte zu beschichten Goldpartikel mit DNA. Wir nächsten demonstrieren, wie auf der Innenseite der Kunststoffschlauch mit dem Gold / DNA Kugeln Linie, und wie man diese Rohre geschnitten, um die Kunststoff-Patronen zum Laden in den Gen-Kanone zu erhalten. Schließlich führen wir biolistischen Transfektion von Ratten-Hippocampus Scheibe Kulturen demonstrieren Umgang mit dem Bio-Rad Helios Gene Gun, und bietet Fehlersuche Ratschläge für gesunde und optimal transfiziert Gewebeschnitte zu erhalten.
Bullets sind gut für bis zu 6 Monate, kann aber anfangen, in Transfektionseffizienz nach 2-3 Monaten zu verringern. Bullets sollte bei 4 ° C in Anwesenheit von Trockenmittel Pellets gelagert werden. Lassen Sie immer das Szintillationsgefäße, in denen Kugeln gespeichert sind, auf Raumtemperatur erwärmt vor dem Öffnen der Flasche.
Bevor Sie beginnen müssen bereit:
Spermidin (0,05 M)
CaCl 2 (1M)
EtOH (100%-high grade-ungeöffnete Flasche)
Autoklaviert H 2 0
DNA zu transfizieren
Polyvinylpyrrolidon (PVP-20 mg / ml Stammlösung)
2 X 15 ml konisch (2/bullet set)
Tubing (Schnitt in 1 X ~ 30 Zoll / Kugel gesetzt)
Szintillationsgefäße (1/bullet set)
Austrocknung Pellets
10 ml Spritze w / Schläuche am Ende
Bereiten Schlauch:
Dry ~ 30 Zoll-Schlauch (ungefähr 2 Zoll, die über rechten O-Ring) in den Schlauch Station w / N 2-Gas (0,4 Druck) für mindestens 20 min.
Ausfallende DNA auf Gold Perlen:
Bereiten DNA in 50 μmL Gesamtvolumen in Mikrozentrifugenröhrchen (maximal 50 ug Gesamt-DNA) transfiziert werden
Abwiegen 6-8 mg Gold und Überweisung auf ein Mikrozentrifugenröhrchen
100 l 0,05 M Spermidin, um Gold und beschallen für 20 sec
Fügen Sie die 50 ul DNA, um das Gold / Spermidin
Vortex (rund Einstellung 5) w / cap öffnen
Fügen Sie tropfenweise 100 ul 1M CaCl 2
Ultraschallbad kurz (<5 sec)
Absetzen lassen für 10 Minuten bei Raumtemperatur
Ultraschallbad kurz
Bereiten Sie PVP-Lösung während der Beschallung:
Machen Sie verdünnten PVP-Lösung in 15 ml konisch, 3.5ml verdünnten PVP für jeden Satz von Kugeln (add 7,5 ul der 20mg/ml PVP Lager zu 3,5 ml 100% EtOH)
Spülen Goldperlen mit EtOH:
Spin down Goldperlen bei voller Geschwindigkeit für 10 Sekunden in Mikrozentrifuge
Überstand, aber halten Sie eine kleine Menge der Flüssigkeit auf der Goldperlen
Waschen mit 1 ml EtOH 3X, kurz beschallen jedes Mal, wenn nötig
Resuspendieren gold / DNA in PVP-Lösung:
Resuspendieren Gold Pellet in 200 ul der 3,5 ml verdünnten PVP / EtOH-Lösung
Vortex das Gold Pellet zu resuspendieren (kurz beschallen falls erforderlich)
Übertragen Sie die 200 ul von Gold / PVP-Lösung zu einem neuen 15 ml konischen
Fahren Sie auf diese Art und Weise, Zugabe von 200 ul von PVP in einer Zeit, bis alles Gold ist, die 15 ml konische übertragen worden, und das Endvolumen beträgt 3,2 mL
Coating-Schlauch:
Schalten N 2 bei der Schlauch-Station und nehmen Sie getrocknete Schlauch
Bringen getrocknet Schlauch an den 10 ml-Spritze
Kräftig schütteln 15 ml konisch mit gold / PVP gefüllt
Das Ende des Schlauches in gold / PVP-Lösung und saugen sich langsam darauf achten, um Blasen zu vermeiden
Lassen Sie ~ 2 Zoll trocken von beiden Enden des Rohres
Mit dem Schlauch noch Spritze befestigt und mit dem Gold / PVP-Lösung, vorsichtig die Schläuche wieder in die Station
Mark die Enden des Rohres, wo die Lösung liegt
Lassen Sie das Gold für 5 Minuten absetzen mit der Spritze befestigt
Suck-up die Lösung sehr langsam, indem Sie die Spritze so, dass die ständige Gold hinter sich (vergewissern Sie sich, um Back-wash) links
Trennen Sie die Spritze
Um 90 ° und lassen Sie sich 2 Sekunden
Um 180 ° drehen und lassen Sie sich weitere 2 Sekunden
Drehen Rohr für 5 Sek.
Schalten Sie die N 2, so dass das Ventil liest zwischen 0,4 bis 0,5 und drehen Sie das gold-beschichtete Schlauch während der Trocknung für 5 min.
Cutting-Schlauch:
Entfernen Sie den Schlauch aus dem Schlauch prep-Station und schneiden Sie die Enden an den Markierungen.
Setzen Sie ein markiertes Scintillationsfläschchen unter dem Schlauch Chopper zu schneiden Patronen zu fangen
Legen Sie Schlauch in das Rohr Chopper und schneiden Sie den Schlauch mit sauberen Rasierklinge
Legen Sie eine Austrocknung Pellets in Scintillationsfläschchen
Lagern Sie Kassetten bei 4 ° C
Shooting Gewebeschnitten
Bei der Aufnahme von kultivierten Scheiben, ist es wichtig, eine relativ sterile Technik einzusetzen, um Kontaminationen zu vermeiden. Denken Sie daran, dass bei der Aufnahme von zwei verschiedenen Konstrukte, beide Sätze von Kugeln in der gleichen Patronenhalter geladen werden kann, aber der Lauf-Liner und Bildschirm sollte zwischen Konstrukten verändert werden.
Bevor Sie beginnen müssen bereit:
DNA Kugeln (let Scintillationsfläschchen auf Raumtemperatur erwärmt, bevor)
Gewebeschnitten
Helios Gene Gun
Helium-Tank mit Gen-Kanone Schlauch angebracht </ Li>
Kartuschenhalter
Barrel-Liner mit Kunststoff-O-Ring an seinem Platz
Diffuser (modifiziert)
Streuscheibe
Zange
Prepping der Gen-Kanone:
Mit einer Pinzette Ort der mit Gold beschichteten Kunststoff-Patronen in den Patronenhalter.
Setzen Sie den Patronenhalter in die Gen-Kanone, indem Sie zuerst Zurückschieben lock
Sichern Sie den Patronenhalter mit Schloss
Besorgen Sie sich einen Barrel-Liner mit einem O-Ring und der Diffusor Bildschirm sicher in Position
Schrauben Sie die Lauf-Liner in die Gen-Kanone
Shooting kultivierten Scheiben mit der Gen-Kanone:
Setzen Sie auf Gehörschutz
Stecken Sie den Gen-Kanone in Schlauch verbunden Helium-Gas-Tank
Schalten Sie den Druck auf Tank bis 180 PSI
Nehmen Sie ein leeres in die Luft, um Staub und Schmutz aus dem Diffusor Bildschirm zu entfernen. Um die Waffe zu schießen, zuerst drücken Sie die Sicherheitsverriegelung drücken, bis die Waffe piept, dann abdrücken.
Nach der Aufnahme des Rohlings, entfernen Sie die Scheiben aus dem Inkubator
Advance-Pistole an erste Konstrukt
Schießen Sie mit dem Diffusor-Bildschirm über 0,5 bis 1 Zoll von der Scheibe
Schieben Sie die Patrone zwischen den Wells.
Nach der Aufnahme der letzten gut, legen Sie die Scheiben wieder in den Inkubator
Schalten Sie Gas-und Lösedruck vor dem Abnehmen der Pistole aus dem Helium-Schlauch
Lösen Sie den Lauf-Liner, und entfernen Sie die Patrone und die verwendeten Schalen
Reinigungskassette Inhaber und Lauf-Liner:
Legen Sie Patronen, Fass-Linern und Diffusor-Bildschirme in ein Becherglas mit Seifenwasser
Legen Becher in Ultraschallbad und beschallen für 20 min
Gründlich mit Wasser ausspülen, bis alle Seifenreste entfernt werden
Tauchen Sie ein in 70% EtOH für eine Stunde
Legen Sie auf trockenen Papiertuch über Nacht zu trocknen
Reinigen der Patronen, Fass-Linern und Bildschirmen kann dann in nachfolgenden biolistischen Transfektionen wiederverwendet werden
Fehlersuche Tipps für Biolistic Transfektion
Biolistic Transfektion kann manchmal zu einer suboptimalen Transfektionsbedingungen führen. Es kann zu wenige oder zu viele Zellen transfiziert, zu hohe oder zu niedrige Expression führen können oder Gewebeschnitten dazu führen, dass sich in der Regel gesund. Oft ungesund Scheiben ergeben sich aus der Druckwelle. Hier sind einige Tipps, um optimal transfiziert Gewebeschnitte zu erhalten.
Wenn Scheiben scheinen ungesund sein (oder, wenn zu viele Zellen / Scheibe transfiziert), versuchen Sie:
zunehmende Aufnahmeabstand
abnehmendem Druck auf Gastank
Verringerung der Menge an Gold
Ausschneiden der Mitte des Bio-Rad-Diffusor und Ersetzen der Mitte mit einer Streuscheibe.
Wenn zu wenige Zellen transfiziert sind, versuchen Sie:
abnehmender Aufnahmeabstand
zunehmenden Druck auf die Gas-Tank
Erhöhung der Menge von Gold
Erhöhung der Anzahl von Gewebeschnitten / well
sicherstellen, dass die O-Ring in den Lauf-liner ist intakt.
Wenn Sie Slices erhalten sowohl mit zu vielen und zu wenigen Zellen während der gleichen Aufnahmebedingungen stellen Sie sicher, transfiziert:
dass Sie mit der Waffe symmetrisch über gut
dass Gold gleichmäßig Beschichtung der Innenseite der Rohre. (Wenn Sie immer eine Reihe von Gold sind, ziehen den Überstand vom Schlauch mit einer schnelleren Rate, wenn das Gold abgesetzt hat, und drehen Sie das Gold mehr, bevor Sie den Stickstoff. Wenn auf der anderen Seite bekommen Sie Streifenbildung von Gold Dies ist wahrscheinlich auf zu viel Feuchtigkeit Exposition während der Kugel machen: stellen Sie sicher, Sie verwenden eine ungeöffnete Flasche EtOH, dass der Schlauch gründlich vor der Beschichtung trocken, und dass Sie Capping Deckel und Vorbereitung Kugeln in einer fristgerechten Weise).
Wenn Transfektionseffizienz scheint optimal (#-Zellen transfiziert / Stück), aber der Ausdruck Ebene scheint zu hoch oder zu niedrig:
Anpassung des Verhältnisses DNA zu Gold. (ZB wenn sie zu niedrig halten die Menge des Goldes, sondern die Menge an DNA.)
Anpassung der Höhe der Zeit zwischen Aufnahme-und Datenerfassung
Im Falle von Dual-Transfektion, wenn Sie auch zu wenig Ausdruck eines Ihrer Konstrukte, passen Sie das Verhältnis der beiden Konstrukte in geeigneter Weise und stellen Sie sicher, dass beide Konstrukte unter den gleichen Promotor, so stellen Sie sicher, dass man Promotor wird nicht out-Wettbewerb der anderen Seite.
Biolistic Transfektion ist eine physikalische Mittel zur Transfektion von Zellen über Beschuss von lebendem Gewebe mit hoher Geschwindigkeit DNA beschichtete Goldpartikel. In der Teilchen-vermittelten Gentransfer im Allgemeinen transfizierten Zellen entstehen, wenn die Kugel kommt in den Kern ruhen. Während viele verschiedene Transfektion Methoden existieren, wie Mikroinjektion, Lipofektion, Calcium-Phosphat-Transfektion, Elektroporation und virale Transfektion kann biolistischen Transfektion bieten eine weniger arbeitsintensiv und effiziente Alternative zur Transfektion von Zellen, die nicht einfach sind, transfiziert mit diesen anderen Methoden. In der Tat war es zunächst als eine Technik für den Gentransfer in Pflanzen entwickelt, da das Vorhandensein der Zellwand aus Transfektion schwierig mit existierenden Methoden 1. Ebenso hat Biolistik Popularität auf dem Gebiet der Neurobiologie gewonnen, da post-mitotischen Neuronen notorisch schwer zu 2,3 transfizieren sind. Insbesondere ist es weithin als das Prinzip Technik, um in Experimenten bei der Beurteilung feinen Morphologie der einzelnen Neuronen im intakten Gehirn Scheiben sollen verwendet werden anerkannt. Die hier beschriebenen Methoden liefern eine detaillierte und umfassende Erklärung, wie biolistischen Transfektion von kultivierten Hirnschnitten durchführen mit einer Hand gehalten Gen-Kanone (die Helios Gene Gun-System; Bio-Rad).
Biolistic Transfektion ist die bevorzugte Methode zur Transfektion von Neuronen in Scheiben Kultur, weil es die Transfektion von einem spärlichen Anzahl von Zellen im Gehirn Scheibe ermöglicht. Auf diese Weise können einzelne Neuronen isoliert betrachtet werden. Da diese Technik eignet sich besonders gut zur Transfektion von Neuronen im Gehirn Scheibe geeignet, ist es oft in Verbindung mit 2-Photonen-Mikroskopie verwendet, da 2-Photonen-Anregung ermöglicht die Visualisierung von fluoreszenzmarkierten Zellen tief im Lichtstreuung Gewebe 4. In der Tat die hohe Vergrößerung Bilder einzelner Pyramidenneuronen in diesem Video vorgestellt wurden unter Verwendung einer speziell angefertigten 2-Photonen-Laser-Scanning-Mikroskop. Abschließend biolistischen Transfektion ist ein effizientes Mittel zur Transfektion von einzelnen Zellen im Kontext einer hohen Dichte von umgebenden Zellen, und als solche hat sich als extrem nützlich für die Fluoreszenzmarkierung einzelner Neuronen in neuronalen Stück Kultur.
Wir möchten Mark lukanische und Hwai-Jong Cheng für die Hilfe bei dem Erwerb der geringer Vergrößerung Bilder des gesamten Hippocampus Scheiben in diesem Video vorgestellt danken. Wir möchten auch Sarah Parrish für die Unterstützung mit dem Begleittext das Video zu danken.
Although we have listed all the products seperately, it is more economical to purchase "Helios Gene-Gun System", which includes with all the products from Bio-Rad listed above (cat # 165-2431).
1. Klein, TM., Fromm, M., Weissinger, A., Tomes, D., Schaaf, S., Sletten, M. and Sanford, JC. Transfer of foreign genes into intact maize cells with high-velocity microprojectiles. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 85, 4305-4309 (1988).
2. Wellmann, H., Kaltschmidt, B. and Kaltschmidt, C. Optimized protocol for biolistic transfection of brain slices and dissociated cultured neurons with a hand-held gene gun. J. Neurosci. Methods. 92, 55-64 (1999).
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Do you routinely have problems with humidity in the lab environment? I work down at UTMB in Galveston, TX and we were told that it would be difficult to make the bullets because of our high relative humidity. Your article is great, very concise and easy to follow, and it seems like you don't worry about relative humidity at all.
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It is relatively dry in Davis (~20% humidity), so yes: we do not worry about humidity. But Dr. Zito used to make bullets back at Cold Spring Harbor in the thick of humid New York summers and never had any problems. If you dry your tubing thoroughly (~30 min) with nitrogen and use a newly unopened bottle of EtOH every time I imagine that you should be fine.
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First of all, I must credit the authors and video team for an extremely well written protocol. I have been struggling to get a complete picture of biolistic tranformation and this video entry very effectively demonstrates the use of the Bio-Rad Gene Gun.
I am in the process of developing a biolistic method for the transformation of bacterial cell cultures. Since biolistics is not very often utilized for bacterial transformation even the technical reps over at Bio-Rad knew little about the details. Do the authors or anybody else know others that have worked with transforming bacterial cell lines using the Gene Gun? If so, I would appreciate any references for these methods.
I am aware that their is a secodary biolistic system available through Bio-Rad called the method using a Biolistic® PDS-1000/He Particle Delivery System . This system consists of a pressurized chamber component - as opposed to the Gene Gun - for particle delivery. It is my understanding that this system is better for bacterial transformation. However, I have come across a loaner Gene Gun system (not the PDS-1000) and would like to attempt bacterial transformation with this.
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This is a wounderful video on use of gene gun. I would like to download this video, how could i should do this. i am starting to apply this technique in studying ion channels. could you please let me know the way of downloading this clip.
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Greetings Nagesh! Good to hear you want to put biolistic transfection to such noble use! I spent my graduate career as a channelologist. Please contact me directly and I will set you up with a way to access this video for download.
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I had never done this protocol before, and using this technique has been HUGELY helpful. It it an easy to use protocol, well written, and the video showing the steps have been so easy to follow.
Thanks so much, with this protocol I am already becoming quite proficient, and my boss is thrilled with me.
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Hi... This protocol was very useful and I agree with all the positive comments posted above! I am using it to transect hippocampal brain slices. I have a question about the distribution of the bullets into the slices. Although, I am following this protocol, I am not able to achieve optimal transfection efficiency. Also, the distribution of the transfected cells throughout the slice does not remain uniform. I have tried using the mesh suggested in this protocol and that too does not make much difference; While In the images displayed in this protocol I could see very well uniformly transfected cells throughout the slice. Can you give any suggestions to improve uniformity in distribution of transfected cells?
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Hi Shruti, I can think of two likely possibilities: (1) the gold in the bullets is not evenly distributed -- try to make sure that it does not end up all on one side (2) you are shooting too close to your samples-- try backing up a bit Best of luck!
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Hi, I was wondering if it is possible to stain the tissues with other antibodies either before or after labeling with the gene gun. I usually label brain slices with DiI using the gene gun but I also want to look at some other proteins and I was thinking of using the same slices for IHC as well if possible?
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Hi Paula- sorry for the delay. The mesh can be obtained from McMaster-Carr - item number 9317T109 - http://www.mcmaster.com/#catalog/118/412/=iirztc - Corrosion-Resistant 304 SS Wire Cloth Disc 100 X 100 Mesh, 1-1/4" Diameter, .0045" Wire Dia - let me know if you have any problems and good luck!
Wow! This is a great article! A detailed visual and written protocol, superb. Congratulations to the authors and editors!
I have only one minor criticism: the use of "inches" (instead of centimeters).
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ReplyPosted by: AnonymousFebruary 15, 2008, 7:38 AM