عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة… (Translated to Arabic)

Cite this Article: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

Matevossian, A., Akbarian, S. Neuronal Nuclei Isolation from Human Postmortem Brain Tissue. J. Vis. Exp. (20), e914, doi:10.3791/914 (2008).

Abstract: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

الخلايا العصبية في الدماغ البشري تصبح تالية للتفتل بشكل كبير خلال التنمية قبل الولادة ، وبالتالي الحفاظ على النواة طوال العمر الكامل. ومع ذلك ، لا يعرف إلا القليل عن تغييرات في الخلايا العصبية وتنظيم الكروماتين النووي خلال مسيرة التنمية والشيخوخة ، أو في أمراض العصبية المزمنة. ومع ذلك ، حتى الآن فحوصات على الحمض النووي ، ومعظم لونين (عدا الأسماك) قرار عدم خلية واحدة. تحقيقا لهذه الغاية ، وعدم تجانس كبير الخلوي للأنسجة المخ يشكل قيدا كبيرا ، لأن تختلط الشرائح السكانية المختلفة عادة من الخلايا العصبية مع أنواع مختلفة من الخلايا الدبقية وغيرها من المنظمات غير العصبية. وأحد الحلول الممكنة لنمو الخلية من نوع ثقافات محددة ، ولكن معظم خلايا الجهاز العصبي المركزي ، بما في ذلك الخلايا العصبية ، هي فيفو السابقين المستدامة ، في أحسن الأحوال ، لمدة أسابيع قليلة فقط ، وبالتالي سيوفر نموذجا غير مكتمل للآليات العاملة جينية محتملة عبر عمر كامل . هنا ، ونحن نقدم على بروتوكول لاستخراج وتنقية النوى من المجمدة (أبدا الثابتة) في الدماغ بعد الوفاة الإنسان. الأسلوب ينطوي على استخراج النواة في المخزن تحلل ناقص التوتر ، تليها تنبيذ فائق وimmunotagging المضادة للNeuN الأضداد. ثم يتم جمع نوى الخلايا العصبية المسماة بشكل منفصل باستخدام مضان تنشيط الفرز. وينبغي أن تكون هذه الطريقة تنطبق على أي منطقة في الدماغ في مجموعة واسعة من الأنواع ومناسب للدراسات مناعي لونين مع الموقع وتعديلها محددة أضداد هيستون ، وفحوصات الحامض النووي وغيرها.

Protocol: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

استخراج النوى

طرح 250 ملغ من أنسجة المخ بعد الوفاة المجمدة في 5 مخزن تحلل مل ¹ في douncer ووضعه على الجليد. لاستقبال نحو 5 ملايين النوى بعد FACS الفرز ، ونحن عادة استخدام أنسجة من 1000 ملغ في كل عينة.
مرة واحدة وإذابة الأنسجة ، dounce النسيج لمدة 1 دقيقة في حين على الجليد.
أخذ نسيج متجانس ووضعه في أنبوب 15 مل نابذة فائقة السرعة واضحة. وضع أنبوب على الجليد.
تأخذ 9 مل من محلول السكروز ² مع ماصة ، ماصة وضع في أسفل الأنبوب نابذة فائقة السرعة واضحة ، والافراج عن حلول السكروز ² إلى إنشاء معامل تركيز مع الحل النسيج المتجانس على رأس الحل السكروز ^2.
وزن الأنابيب نابذة فائقة السرعة للتأكد من أن كل ما سوف يكون متوازنا في حين تناوب داخل نابذة فائقة السرعة. إجراء أية تعديلات على الوزن عن طريق إضافة ¹ إلى الاحتياطي تحلل الطبقة العليا.
بعد أن تم وزن الأنابيب ووضعها في دلاء الدوار.
إخضاع جميع الدلاء في الدوار SW28 ومكان بعناية الدوار في نابذة فائقة السرعة.
نابذة فائقة السرعة العينات في إطار التعاون الإقليمي ل107163.6 2.5 ساعة في 4 درجات مئوية.
بمجرد اكتمال الطرد المركزي ، وإزالة طاف ، جنبا إلى جنب مع طبقة من الأنقاض التي عثر عليها في التدرج التركيز ، مع استخدام فراغ ، مع الحرص على عدم تعكير صفو بيليه الذي يحتوي على نواة في الجزء السفلي من الأنبوب.
إضافة 500 ميكروليتر من PBS 1X إلى كل بيليه وترك الجلوس على الثلج لمدة 20 دقيقة. هذا يسمح بحل بيليه قليلا من تلقاء نفسها ، مما يسهل لاحقا من قبل بحل ميكانيكيا pipetting صعودا وهبوطا ، مما يقلل من مقدار الضغط تجربة النوى.
بعد النوى وحضنت على الجليد لمدة 20 دقيقة ، ماصة ميكانيكيا صعودا وهبوطا في حل تماما النوى داخل 1XPBS.
إزالة حل النوى التي تحتوي على أنابيب من نابذة فائقة السرعة ، والجمع بين محتويات أنبوبين في واحد 2 مل أنبوب microcentrifuge. مرة أخرى ، ووضع العينات في الثلج.

Immunostaining لFACS

عند هذه النقطة ، وجعل مزيج يتألف من جسم immunostaining الابتدائي والثانوي ، وحجب ميكس. لكل عينة ، والجمع بين 300 ميكرولتر من 1XPBS تحتوي على 1.2 ميكرولتر من الأجسام المضادة NeuN ، 100 ميكرولتر من مزيج الحظر ، الذي يحتوي على 0.5 ٪ BSA و 10 ٪ في مصل الماعز 1XPBS عادي ، و 1 ميكرولتر من فلور اليكسا 488. لعينات السيطرة ، استبعاد NeuN الضد الابتدائي ، وبدلا من ذلك ، فقط إضافة المزيد من 1XPBS.
دوامة الخليط immunostaining واحتضان لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة في الظلام.
في حين أن الخليط هو تلطيخ يحتضنها ، وجعل ضوابط لهذه العينات. FACS لفرز عينة ، تحتوي على نواة وحدها ، ودعا هناك حاجة إلى "السيطرة غير ملوثين" ؛ عينة الثانية ، سيطرة السلبية ، التي تحتوي على نوى مع فلور الضد اليكسا دون الثانوية 488 وهناك حاجة أيضا إلى الأجسام المضادة NeuN الابتدائي.
قسامة 20 ميكرولتر من نواة تحتوي على الحل في أنبوب microcentrifuge 2 مل تحتوي على 1XPBS لمراقبة غير ملوثين ، وآخر في آخر 20 ميكرولتر أنبوب 2 مل تحتوي على 980 UL من 1XPBS لمراقبة سلبية. رفع حجم النواة المحتوية على عينة ما يصل الى 1 مل مع 1XPBS. وضعت جميع العينات مرة أخرى على الجليد.
الآن بعد أن انتهت خليط immunostaining يحتضنها ، إضافة محتوياته من 401 ميكرولتر في العينات المناسبة. وسوف تتلقى نوى العينة تحتوي على خليط كلا NeuN واليكسا فلور 488 ، في حين أن العينة سلبية سوف تحصل على خليط يحتوي فقط على الأجسام المضادة الثانوية اليكسا فلور 488.
أخذ العينات في غرفة باردة لتدوير في الظلام لمدة 45 دقيقة.
بعد هذه العينات والمحتضنة في الظلام لمدة 45 دقيقة ، ووضعها على الجليد وتقديمهم إلى مرفق نظام مراقبة الأصول الميدانية. أثناء النقل إلى مرفق نظام مراقبة الأصول الميدانية ، ينبغي أن تبقى هذه العينات في الثلج والظلام.

FACS

في منشأة FACS تصفية العينات من خلال تصفية 40 ميكرون. ثم تشغيلها من خلال أداة لبضع دقائق ، في حين يتم الاحتفاظ الباردة ، من أجل الحصول على بعض البيانات الأولية قبل الفرز.
عند هذه النقطة ، فمن الضروري تعيين البوابات الملائمة اللازمة للفرز. وتستخدم بوابات متعددة ومختلفة لعينات الفرز. البوابة الأولى يعطي فكرة عن حجم نواة المختلفة الموجودة داخل العينة ، ويسمح separatation الحطام من نوى الفعلية. البوابة الثانية يسمح لنا لفرز نواة على حدة. يتم تجاهل أي تجاهل المجاميع عند هذه النقطة. أخيرا ، يتم تعيين البوابة الثالثة لطول الموجة ومضان محددة ، مطابقة لتلك الموجودة في جسم ملون تألقي دينا الثانوي. وضع يسمح لنا هذه البوابة لفرز وفصل + NeuN ، وبالتالي نواة الخلايا العصبية من NeuN -- النوى.
بعد يتم اختيار جميع البوابات ، يمكن فرز النوى في 1XPBS.
مرة واحدةعينة كاملة قد مرت ، والتحقق من نقاء من النوع عن طريق تشغيل قسامة من العينة فرزها من خلال الصك. تأكد من أن لا ينتشر مضان العينة للخروج ، وإنما يرد ضمن رباعي واحد. فمن الأفضل لاختيار العينات التي تزيد على 90 ٪ نقية.

بعد FACS

مرة واحدة وقد تم فرز عينة ، وتجهيز نواة يمكن أن تبدأ. يستغرق 10 مل من العينة فرز وإضافة إلى ذلك 2 مل من محلول السكروز ² ، 50 ماي من 1M CaCl ₂ و 30 من المجاهدين ميغاغرام 1M (ايس) _2. للتذكير ، أن تكون دائما على يقين من أن تبقي على عينة الجليد منذ النوى وغير المثبتة.
إذا كان هناك أقل من 10 مل من عينة تم فرزها ، ورفع حجم ما يصل الى 10 مل بإضافة 1XPBS ، أو ضبط مواد إضافية وفقا لذلك.
عكس العينة عدة مرات ومكان على الجليد لمدة 15 دقيقة.
بعد هذه العينات قد حضنت على الجليد لمدة 15 دقائق ، طرد مركزي لهم في الأرجوحة الدوارة في دلو RCF 1786 لمدة 15 دقيقة على ⁴ درجات مئوية.
تجاهل طاف مع استخدام فراغ ، ودون الإخلال بيليه الأبيض التي عثر عليها في الجزء السفلي من الأنبوب.
حل بيليه في 200 ميكرولتر أيا كان الحل الذي تحتاجه لإجراء التجارب ، وماصة صعودا وهبوطا.
نقل الى حل أصغر أنبوب وضعه في الثلاجة حتى -80 درجة مئوية استخدامها مرة أخرى.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

بروتوكول المقدمة هنا ينبغي أن تكون مفيدة بشكل خاص للدراسات التي تركز على التغيرات اللا جينية للونين العصبية ، وبشكل أعم ، على النمط الظاهري الجزيئي لنواة الخلايا العصبية ، أثناء المرض والشيخوخة النامية ، أو في الحالات العادية عصبية أو نفسية. الأسلوب هو من ميزة خاصة عند عدم تجانس الخلوي للأنسجة المخ ، بما في ذلك التحولات المحتملة في الخلايا العصبية إلى الدبقية التموينية خلال الشيخوخة أو بسبب المرض هي مصدر قلق ^1. على سبيل المثال ، من خلال الجمع بين بروتوكول الفرز الحالية مع التقنيات مناعي لونين ، ونحن في الآونة الأخيرة وصف الخلايا العصبية الخاصة أنماط مثلأيشن هيستون في الدماغ المستمدة عصبية المروج عامل الجينات (BDNF) ، و ² للجينات الخلايا العصبية الإضافية. وقد استخدمت طريقة مشابهة في السابق لجمع الخلايا العصبية من قشرة الدماغ الكبار للولادة تعود بأثر رجعي ^3. كان يعمل أيضا على تقنية الفرز في مخ الفأر ² ، ونظرا للاستقرار في نوى مجمدة آنذاك المذوبة. الأنسجة ، ونتوقع أن النهج المعروضة هنا ينطبق على طائفة واسعة من الأنواع لأن مناعي لونين من اقل من 10000 لخلايا غير مجدية حتى الآن عن تغطية أكثر شمولا الجينوم ⁴ ، فإنه قد يكون من الممكن استخدام كميات أقل بكثير من 1000 ملغ من المواد ابتداء أننا الموصى به أعلاه.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

Acknowledgements: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

الكتاب نقدر المشورة والدعم الفني المقدم من قبل الدكتور ريتشارد Konz والموظفين في صميم مرفق التدفق الخلوي في كلية طب جامعة ماساتشوستس. كما استخدمت الموارد الأساسية التي تدعمها أبحاث الغدد الصماء السكري DK032520 منح المركز. ويدعم هذا العمل عن طريق المنح المقدمة من المعهد الوطني للصحة العقلية (NIMH) ، والمعهد الوطني لتعاطي المخدرات (النداء) والمعهد الوطني لصحة الطفل والتنمية البشرية.

Materials: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

Reagents:

1. Lysis Buffer
0.32M	Sucrose	5.47 g
5 mM	CaCl₂	250 μl
3 mM	Mg(Acetate)₂	150 μl
0.1 mM	EDTA	10 μl
10mM	Tris-HCl, pH8	500 μl
1 mM	DTT	17 μl
0.1%	Triton X-100	50 μl
Adjust volume to 50 ml with Autoclaved water

2. Sucrose Solution
1.8 M	Sucrose	30.78 g
3 mM	Mg(Acetate)₂	150 μl
1 mM	DTT	17 μl
10 mM	Tris-HCl, pH8	500 μl
Adjust volume to 50 ml with Autoclaved water

3. Dounce buffer
10 mM	Tris	0.242 g
4 mM	MgCl₂	0.163 g
1 mM	CaCl₂	0.03 g
Adjust pH to 7.5 and volume to 200 ml with Autoclaved water

References: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

1. Siegmund, K.D., Connor, C.M., Campan, M., Long, T.I., Weisenberger, D.J., Biniszkiewicz, D., Jaenisch, R., Laird, P.W. and Akbarian, S. (2007) DNA methylation in the human cerebral cortex is dynamically regulated throughout the life span and involves differentiated neurons. PLoS ONE, 2, e895.

2. Jiang, Y., Matevossian, A., Huang, H.S., Straubhaar, J. and Akbarian, S. (2008) Isolation of neuronal chromatin from brain tissue. BMC Neurosci, 9, 42.

3. Spalding, K.L., Bhardwaj, R.D., Buchholz, B.A., Druid, H. and Frisen, J. (2005) Retrospective birth dating of cells in humans. Cell, 122, 133-43.

4. Acevedo, L.G., Iniguez, A.L., Holster, H.L., Zhang, X., Green, R. and Farnham, P.J. (2007) Genome-scale ChIP-chip analysis using 10,000 human cells. Biotechniques, 43, 791-797.

Ask the Author: عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

5 Comments

your method of isolating brain nuclei is practical straight forword and I am happy that I have across your paper and demonstration. I am interested to isolate intact nuclei. How do I know the isolated nuclei are intact? Do you have a suggestion for me to "test" my nuclei are intact?

thank you in advance for your help

Posted by: kahsai berakiApril 27, 2009, 12:50 PM

The quickest way is to stain with NeuN and check under the fluorescent microscope.

1.1

Posted by: LilyDecember 9, 2011, 12:00 PM

Hello,
thanks for your nice protocol for nuclei isolation and sorting. I tried the approach but had a problem with nuclei aggregates, can you tell how one can improve this?

Posted by: Thomas KremerNovember 16, 2011, 12:40 PM

At what stage in the process do you encounter aggregates? If it is after the ultracentrifugation, then spending more time re-suspending the nuclei pellet will result in better separation during FACS.

2.1

Posted by: LilyDecember 9, 2011, 12:03 PM

Thanks again for the video. In the meantime, aggregate formation is not an isse anymore. With regard to stainings: Did you test for other nuclear protein antibodies to distinguish neuronal/glial subtypes. If yes, can you tell which ab are suitable?
Thanks in advance again for the video and your response!

Posted by: ThomasDecember 10, 2011, 8:45 AM

Thank you for the video. Have you checked to see whether you can extract RNA for microarray or RNA-seq from these nuclei post-FACS?

Posted by: LisaJanuary 9, 2012, 7:56 AM

How do you keep the nuclei from clumping other than filter them with 40um filter? Thanks.

Posted by: Tao K.October 2, 2012, 3:00 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.

Date Published	10/01/2008
JoVE Section	General
JoVE Issue	20
Comments	5 Comments
View Count	Loading... (Details…)
DOI	doi:10.3791/914

Automatic Translation

عزل النواة من الخلايا العصبية البشرية تشريح أنسجة المخ

You must be subscribed to JoVE to access this content.

Related JoVE Videos

Video Article Chapters