The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Swedish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Studera Membran biogenes med en luciferas-Based Reporter Gene Assay

1, 1,2

1Department of Molecular and Cell Biology, Harvard, 2Molecular and Metabolic Signalling Centre, Division of Basic Medical Sciences, St. George's University of London

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 72.44.48.122, User IP: 72.44.48.122, User IP Hex: 1210855546

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Studera Membran biogenes med en luciferas-Based Reporter Gene Assay

Zhang, S., Nohturfft, A. Studying Membrane Biogenesis with a Luciferase-Based Reporter Gene Assay. J. Vis. Exp. (19), e920, doi:10.3791/920 (2008).

Abstract: Studera Membran biogenes med en luciferas-Based Reporter Gene Assay

Att studera samordningen av olika vägar lipid syntes under membranet biogenes det är bra att arbeta med ett experimentellt system där membranet biogenes sker snabbt och på ett inducible sätt. Vi har funnit att fagocytos av latex pärlor är praktiskt för dessa ändamål som celler snabbt syntetisera membran lipider för att fylla på membran pooler förlorade emballeringsmaterial under partikel omvälvning. Här beskriver vi rutiner för att studera förändringar i fagocytos-inducerad genuttryck med en luciferas-baserad reporter gen metod att använda Dual-Glo luciferas analyssystem från Promega.

Protocol: Studera Membran biogenes med en luciferas-Based Reporter Gene Assay

Cell Culture

  1. Stock kulturer med humana embryonala njur 293 (HEK293) celler odlas i 10-cm kultur rätter i "medium A", bestående av Dulbecco ändrade Eagles Medium (DMEM) kompletteras med en cocktail av antibiotika (100 enheter per ml penicillin och 100 mikrogram per ml streptomycin sulfat) och 10% fetalt bovint serum (FBS).
  2. För att ställa in celler för ett experiment, är mediet sugs bort, och cellerna tvättas två gånger med 5 ml fosfatbuffrad saltlösning (PBS) lösning.
  3. PBS tas sedan bort och ersätts med 0,6 ml av en lösning som innehåller 0,25% trypsin.
  4. Skålen är inkuberas vid 37 ˚ C i ca 2 min tills cellerna har börjat att lossa.
  5. 5,5 ml av mediet A skall läggas för att neutralisera trypsin och cellerna räknas med en hemocytometer.
  6. Celler späds till 320.000 celler per ml och doseras med 0,1 ml per brunn i en polylysine-belagd 96-bra kultur plattan.
  7. Placera skålen i en vävnadsodling inkubator vid 37 ˚ C med en atmosfär som innehåller 8,8% CO2 och växa i 24 timmar.

Transfections

  1. I förberedelserna för transfections, bör det övervägas hur många replikat som ska utföras per experimentella förhållanden och vilka mängder av plasmid kommer att transfekterades. Vi utför rutinmässigt alla villkor i tre exemplar och transfektera totalt 50 till 100 ng av plasmid-DNA per brunn. Plasmid blandar bör innehålla minst en reporter konstruera uttrycka eldfluga luciferas och en kontroll plasmid uttrycka Renilla luciferas från en konstitutiv promotor.
  2. Plasmid lösningar pipetteras till 1,5 ml mikrocentrifugrör och kompletteras med 10 l per prov av serum-fria och antibiotika-fria DMEM. Till exempel, om 20 brunnar ska vardera transfererats med 50 mikrogram DNA, tillsätt 200 l DMEM till 1 mikrogram DNA.
  3. Till DMEM / DNA-lösning tillsätts 3 l "transit 293 reagens (Mirus) per mikrogram DNA. Blanda genom att pipettera upp och ner och låt proverna stå i rumstemperatur i minst 10 min.
  4. Under denna period, ta bort materialet från den 96-bra kultur plattan och ersätta med 90 l av färska medelstora A.
  5. Till varje brunn Tillsätt 10 ìl av DMEM / DNA / Transit 293 blandning.
  6. Placera skålen i en vävnadsodling inkubator vid 37 ˚ C med en atmosfär som innehåller 8,8% CO2 och växa i 24 timmar.

Fagocytos

  1. Förbered innehållande medelstora B (en 1:1 blandning av DMEM och Hams F12 medelstora plus antibiotika och 10% FBS) plus 0,75-ìm latex pärlor på noll till 1 mg per ml.
  2. Ta bort materialet från den 96-bra kultur plattan och ersätta med 0,1 ml pärla suspensioner i medelstora B.
  3. Snurra plattan i 2 min vid 1000 x g.
  4. Därefter är cellerna odlas vid 37 ˚ C i 6 till 16 timmar. Beroende på förutsättningar och initiativtagaren används för att driva luciferas ökade reporter genuttryck kan upptäckas efter 1 till 3 timmar.
  5. I samma fall kan det vara nödvändigt att inkubera celler med pärlor i 30 till 60 minuter, gör sedan två tvättar med PBS för att ta bort oregistrerade pärlor och lägga till nya media innan inkubering av cellerna för ytterligare perioder.

Dual-GloTM luciferas-analys

  1. OBS: våra protokoll för att använda detta kit skiljer sig i vissa avseenden från det som rekommenderas av tillverkaren. Det har modifierats för att minska mängden reagens som behövs per prov.
  2. Bered en lösning av 1 M DTT, dela upp i flera små portioner och förvara vid -20 ˚ C.
  3. Förbered en lyseringsbuffert innehållande 20 mM Tris-HCl (pH 7,8), 10% (v / v) glycerol och 0,5% (v / v) Triton X-100. Före användning, uppmätt ett belopp som behövs för experimentet och tillsätt 1 l per ml 1 M DTT plus proteashämmare cocktail till en slutlig koncentration av 0,5 till 1x. Återanvänd inte överblivna DTT lösningen.
  4. När du använder dubbla GloTM kit för första gången, förbereda (Firefly) luciferas Reagent genom att överföra hela innehållet i en flaska med dubbla GloTM luciferas Buffer (medföljer kitet) till en flaska med dubbla GloTM luciferas Substrat (förutsatt med satsen). Dela oanvända luciferas reagens i 10-ml-portioner och förvara vid -20 ˚ C.
  5. Ta bort 96-brunnar från vävnadsodling inkubatorn och placera den på is. Ta bort materialet genom aspiration, tillsätt 40 l per brunn lyseringsbuffert och sedan lämna tallriken på is i 30 min.
  6. I en vit, ogenomskinlig 96-håls platta (OptiplateTM-96, Perkin Elmer katalognummer 6.005.290) alikvot 15 l per brunn av luciferas Reagens och sedan lägga till 15 l av cell lysat.
  7. Inkubera plattan vid rumstemperatur i 10 min och sedan läsa luminiscens i en mikroplattor läsare.
  8. Omedelbart före användning, förbereda en lämplig mängd Renilla luciferas substratlösning genom att tillsätta 1 del dubbla GloTM Stop & Glo ®; Reagent (medföljer kitet) till 100 delar Dual-GloTM Stop & Glo ® Buffer (medföljer kitet).
  9. Till varje brunn Tillsätt 15 l per brunn av Renilla luciferas substratlösning, inkubera vid rumstemperatur i 10 min och sedan mäta luminiscens igen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Studera Membran biogenes med en luciferas-Based Reporter Gene Assay

Ask the Author: Studera Membran biogenes med en luciferas-Based Reporter Gene Assay

4 Comments

Hi Dr Zhang,

 

I am currenlty using the same reporter assay kit to test the effect of promoter polymorphisms on luciferase expression.  The polymorphims under investigation were assessed statistaclly in a previous experiment and found to significantly associated with variation in muscularity.  Due to their location, I thought a reporter assay was the most suitable method for providing some biological evidence for the statistacal assaociation. 

 

However, I have run the assays a number of times and my results are the opposite to what I expected, based on the statistical analysis.  Upon closer inspection, I observed my plasmid preps (4 reporter constructs) varied greatly in the amount of supercoiled plasmid present.  From my luciferase results there is a trend where i observe greater expression in the preps with more supercoiled DNA compared to preps with a greater quantity of the relaxed plasmid form.

 

I am currently repeating the assay with linear plasmid to standardise plasmid form for each construct.  I will have these results soon, but not sure how much the linear DNA will compromise transient transfection.  An alternative would be to repeat my plasmid preps and ensure cultures have not reached stationary phase to ensure a greater proportion of supercoiled plasmid (because gyrase is not/less active in stationary phase culture).  My concern with this apporach is that it would be difficult to quantify the amount of supercoiled plasmid in each prep and slight differences between each reporter construct could have a large impact on luciferase results.

 

For your reporter gene application did you find it necessary to standardise the plasmid form for each reporter construct (control plasmid not essential since this is consistent in each well)?  How did you standardise?

 

Kind regards,

 

Brendon

1

Reply

Posted by: Brendon O'RourkeSeptember 10, 2008, 10:54 PM

Dear Brendon,

 

A representative from the Journal of Visualized Experiments requested that Promega Technical Services respond to your question.  I am a Technical Service Scientist at Promega and would be happy to answer your question about dual-reporter assays.

 

For transient reporter gene assays, most researchers use supercoiled plasmid DNA as there is no apparent advantage to using linearized plasmid.  A more important consideration for optimal results in a transient reporter assay is the quality of the plasmid DNA.  The purified plasmid preparation should be free of protein, RNA and chemical contamination (as indicated by an A260/A280 ratio of 1.8-1.9).  It should also contain a relatively low percentage of nicked and/or damaged DNA.  If the quality of the firefly plasmid preparation is suspect, it may be worthwhile to prepare new plasmid stocks and repeat your experiments with the new preparations. 

 

There may be other variables that should be considered when performing and analyzing dual-luciferase assays.  Without more specific information about the vectors being used and your experimental design, it is difficult to identify other potential issues.   If you would like more assistance or have any other questions, please feel free to contact us directly.  

 

Promega Technical Services

800-356-9526

techserv@promega.com

3

Reply

Posted by: Promega Technical ServicesSeptember 17, 2008, 10:02 AM

I wanna wwatch this video. I aleady subscribe but no there is no response. Please.... Help me

4

Reply

Posted by: Dania C.July 26, 2011, 10:01 PM

If you have an individual subscription to JoVE you should have no problems viewing this content. Please send a screenshot of the problem to subscriptions@jove.com

4.1

Reply

Posted by: ward parryJuly 27, 2011, 8:33 AM

Dcheaha. Can you contact subscriptions@jove.com for specific questions relating to access. Thanks. Ward Parry

5

Reply

Posted by: ward parryJuly 27, 2011, 8:31 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter