RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ar
Menu
Menu
Menu
Menu
Research Article
Stefan Hahnewald1,2, Marta Roccio1,2, Anne Tscherter3, Jürg Streit3, Ranjeeta Ambett1,2, Pascal Senn1,2,4
1Department of Otorhinolaryngology,Inselspital and University of Bern, 2Department of Clinical Research,Inselspital and University of Bern, 3Department of Physiology,University of Bern, 4Department of Clinical Neurosciences, Service ORL & HNS,University Hospital Geneva
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
نقدم بروتوكولا لزراعة الخلايا العصبية العقدية الحلزونية الأولية للفئران على مصفوفات متعددة الأقطاب الكهربائية لدراسة ملامح الاستجابة العصبية وتحسين معلمات التحفيز. تهدف هذه الدراسات إلى تحسين واجهة الخلايا العصبية والقطب الكهربائي لغرسات القوقعة الصناعية لإفادة السمع لدى المرضى وكذلك استهلاك الطاقة للجهاز.
تشارك الخلايا العصبية العقدية الحلزونية (SGNs) في العملية الفسيولوجية للسمع عن طريق نقل الإشارات من خلايا الشعر الحسية إلى نواة القوقعة في جذع الدماغ. يعد فقدان خلايا الشعر سببا رئيسيا لفقدان السمع الحسي. تعمل الأجهزة التعويضية مثل غرسات القوقعة الصناعية عن طريق تجاوز خلايا الشعر المفقودة وتحفيز SGNs كهربائيا مباشرة ، مما يسمح باستعادة السمع لدى المرضى الصم. يعتمد أداء هذه الأجهزة على وظائف SGNs وإجراء الزرع وعلى المسافة بين الأقطاب الكهربائية والخلايا العصبية السمعية.
افترضنا أن تقليل المسافة بين SGNs ومجموعة الأقطاب الكهربائية للغرسة سيسمح بتحسين التحفيز ودقة التردد ، مع أفضل النتائج في وضع خال من الفجوات. نفتقر حاليا إلى أنظمة الثقافة المختبرية لدراسة وتعديل وتحسين التفاعل بين الخلايا العصبية السمعية ومصفوفات الأقطاب الكهربائية وتوصيف استجابتها الفيزيولوجية الكهربية. لمعالجة هذه المشكلات ، قمنا بتطوير اختبار حيوي في المختبر باستخدام مزارع SGN على مصفوفة مستوية متعددة الأقطاب الكهربائية (MEA). بهذه الطريقة تمكنا من إجراء تسجيل خارج الخلية للنشاط القاعدي والمستحث كهربائيا لمجموعة من الخلايا العصبية العقدية الحلزونية. تمكنا أيضا من تحسين بروتوكولات التحفيز وتحليل الاستجابة للمنبهات الكهربائية كدالة لمسافة القطب. يمكن أيضا استخدام هذه المنصة لتحسين ميزات القطب الكهربائي مثل الطلاء السطحي.
وفقا لمنظمة الصحة العالمية ، يعاني 360 مليون شخص في جميع أنحاء العالم من فقدان السمع مع عواقب وخيمة على الحياة المهنية والخاصة. يمكن للمعينات السمعية استعادة الوظيفة الحسية في أشكال معتدلة من فقدان السمع. ومع ذلك ، في الحالات الأكثر شدة ، فإن خيار العلاج الأكثر فعالية هو جهاز اصطناعي يسمى غرسة القوقعة الصناعية (CI). تحتوي CIs على مصفوفة أقطاب كهربائية خطية تصل إلى 24 قطبا كهربائيا ، والتي يتم إدخالها جراحيا في scala tympani للقوقعة. تحفز الأقطاب الكهربائية بشكل مباشر الخلايا العصبية العقدية الحلزونية ، وتشكل العصب السمعي 1.
مع أكثر من 300,000 جهاز تم زرعها في جميع أنحاء العالم ، تعد CIs غرسات طبية ناجحة للغاية وتصنف من بين أكثر الإجراءات فعالية من حيث التكلفة التي تم الإبلاغ عنها على الإطلاق. على الرغم من نجاحها ، لا تزال غرسة القوقعة الصناعية تعاني من قيود مثل انخفاض دقة التردد مقارنة بالسمع الفسيولوجي. يمكن أن يؤدي ذلك إلى عجز في التواصل الفعال في المجموعات أو البيئات الصاخبة ، والقدرة على فك تشفير الأصوات المعقدة للغاية مثل الموسيقى. من المحتمل أن يكون هذا التردد المنخفض بسبب الفجوة بين أقطاب CI والخلايا العصبية العقدية الحلزونية ، مما يؤدي إلى تحفيز مجموعات كبيرة من الخلايا العصبية. هذه الفجوة في حدود مئات الميكرومتر 2،3. سيؤدي القضاء على هذه الفجوة إلى تسهيل تحفيز مجموعات أصغر من الخلايا العصبية لكل قطب كهربائي ، وبالتالي زيادة دقة التردد والأداء العام للجهاز 4.
لدراسة تأثير الفجوة بين القطب الكهربائي والخلايا العصبية وتأثير بروتوكولات التحفيز المحسنة المختلفة ، قمنا بتطوير اختبار حيوي في المختبر بناء على توصيف الفيزيولوجيا الكهربية غير الغازية ل SGNs على مصفوفات متعددة الأقطاب الكهربائية (MEAs) 5. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن تعديل MEAs بسهولة لتغيير شكل القطب والحجم والمواد وخشونة السطح ، لتحسين واجهة الخلايا العصبية والقطب. فيما يلي بروتوكول خطوة بخطوة للحصول على تسجيلات من مزارع الخلايا العصبية العقدية الحلزونية للفئران وتقييم الاعتماد على المعلمات المذكورة أعلاه.
وقد أجريت رعاية الحيوان والتجريب وفقا للمبادئ التوجيهية للسلطات المحلية سويسري (آمت FÜR Landwirtschaft اوند الناطور قصر Kantons برن، سويسرا).
1. إعداد حلول للتجارب
2. غسل وتعقيم الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف
معشوقة = "jove_content"> ملاحظة: الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف المستخدمة في التجارب تحتوي على 68 الأقطاب مرتبة في شبكة مستطيلة الشكل (1E). كل قطب كهربائي لديها حجم 40 × 40 ميكرون 2 مع تباعد من 200 ميكرون من مركز لآخر. مصنوعة أقطاب من البلاتين. يتم توصيل الأقطاب الكهربائية إلى جهات الاتصال المقابلة من قبل دائرة مصنوعة من أكسيد الإنديوم القصدير. معزول هذه الدائرة من قبل طبقة 5 ميكرون من SU-8. انظر الجدول المواد للاطلاع على تفاصيل الموفر. قد تكون تخطيطات MEA أخرى مناسبة لهذه التجارب.
3. إعداد الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف لتجارب الثقافة
4. لولبية العقدة تشريح
ملاحظة: تشريح الإجمالي يمكن أن يتم خارج غطاء تدفق الصفحي (الخطوة 4،1-4،4). لظروف معقمة تشريح غرامة (الصفحي غطاء تدفق) إلزامية (من الخطوة 4.5).
5. لولبية العقدة يزدرع الثقافة على الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف
6. تسجيلات الكهربية المعنية بالتحقيق في العفوي والكهربائي تحفيز آخر تابع
تحليل 7. البيانات
وقد وصفت تحليل البيانات سابقا بالتفصيل في 6 و 5: ملاحظة. للحصول على تفاصيل عن البرامج المستخدمة في هذه الدراسة معرفة المواد جدول، أشر 7.
8. الأنسجة التثبيت وإمunohistochemistry
ملاحظة: إن عملية تلطيخ تدمير الشرق الأوسط وأفريقيا. انظر المواد جدول رقم (النقطة 4) للمواد.
ويلخص الشكل 1 الإجراء لعزل الأنسجة، وإعداد والثقافة في الشرق الأوسط وأفريقيا. نقدم لك مجموعة من الخطوات متتالية من تشريح الأنسجة لعزل العقدة الحلزونية (SG) من الظهارة الحسية من جهاز كورتي (OC) وعائي السطر (SV) وضمتها الرباط الحلزوني (الشكل 1 A - C). يتم قطع إإكسبلنتس العقدة الحلزونية (3-4 في العدد) مع مقص الصغرى من العقدة كما هو موضح تخطيطي في الشكل 1D وضعت على الشرق الأوسط وأفريقيا (الشكل 1E)، فوق منطقة القطب المحتلة (2.2 ملم 2). يتم وضع OC في القرب، خارج سطح القطب. يمكن مراقبة نمو ثقافة على مر الزمن (الشكل 1G). ويظهر رسم تخطيطي للبروتوكول في الشكل 1F. ويمكن الكشف عن النشاط الكهربية بعد 6 أيام من الثقافة، والتي تزيد مع مرور الوقت ثقافة لفترة طويلة. نحن صecommend تقييم 18 الثقافات اليوم التي تنتج الأرقام أعلى بكثير من أقطاب تسجيل مقارنة نقاط وقت سابق 5.

الشكل 1. إعداد خلية ثقافة. (A) تشريح طازجة الماوس الأذن الداخلية. متقطع الأبيض خط يشير إلى موقع القوقعة، يشير خط متقطع الأسود المنطقة الدهليزي. (ب) ماوس الأذن الداخلية بعد إزالة الجدار عظمي القوقعة. يشار يتحول قوقعة بخطوط متقطعة البيضاء. (ج) لولبية العقدة (SG) وعماد القوقعة، وترد جهاز كورتي (OC) وعائي السطر (SV) والرباط الحلزوني بعد تشريح. (د) رسم تخطيطي للسان جرمان وتشريح OC وإعداد سان جرمان يزدرع {شخصية مقتبسة من 5 بموافقة من الناشر}. (E) رسم توضيحي لمجموعة القطب متعددة المستخدمة في هذه الدراسة. إعادة ترميز ويتم تنظيم أقطاب في شبكة مستطيلة في الوسط وتحتل مساحة 2.2 مم 2. ويوضح أقطاب 4 الأرضي واتصالات جانبية. (F) رسم تخطيطي للبروتوكول الثقافة. وتجرى التسجيلات في اليوم 18. (G) الصور التمثيلية (مشرق صور الميدان) ومخططات إإكسبلنتس سان جرمان في الشرق الأوسط وأفريقيا رصدها في الثقافة في يوم 1 و 6 و 18. مقياس الحانات = 400 ميكرون. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
يمكن الكشف عن النشاط العفوي في الشرق الأوسط وأفريقيا وكما هو مبين مؤامرة النقطية حيث كل سطر من مؤامرة يمثل ارتفاعا الكشف. ويرد مثال ممثل تظهر النشاط العفوي الكشف من عدة أقطاب (ألوان مختلفة في الرسوم البيانية) (الشكل 2A، 2B، و2C).
-together.within الصفحات = "1"> بالإضافة إلى ذلك، أقطاب الشرق الأوسط وأفريقيا يمكن أن تستخدم لتحفيز الثقافة. وأبرز مثال يظهر نبض ثنائي الطور تستخدم لتحفيز (الشكل 2D)، ويرد 5 أقطاب الاستجابة (آثار حمراء اللون) والأقطاب الكهربائية غير الاستجابة (آثار الزرقاء) في الشكل 2E. لهذه التجارب تم استخدام القطب واحد لتحفيز وسائر الأقطاب للتسجيل. ظهرت إمكانات العمل واحدة 1 ميللي ثانية بعد قطعة أثرية التحفيز (أسود رأس السهم). يمكن immunostained الشرق الأوسط وأفريقيا في نهاية هذا الإجراء من أجل تقييم تغطية العمليات العصبية على منطقة القطب. تم استخدام القطب أشار باللون الأخضر في الشكل 2F لتحفيز، واستخدمت الأقطاب هو مبين في الحمراء لتسجيل استجابات (الشكل 2E).

الشكل 2. تسجيلات البيانات في الشرق الأوسط وأفريقيا. (A </ قوي>) آثار التسجيلات الأصلية لستة من أصل 63 الأقطاب تظهر النشاط العفوي. (ب) النقطية مؤامرة من الأقطاب ستة من الشكل 2A بعد اكتشاف ارتفاع. يمثل كل شريط إمكانية عمل واحد. يتم تسجيل (C) مؤامرة النقطية بما في ذلك جميع أقطاب (كما في ألف وباء) آخر من 63 الأقطاب الكهربائية (قنوات رقم 0-63) لمدة 2 دقيقة. (D) والتحفيز ثنائي الطور مع إجمالي مدة 80 μsec وسعة 80 أمبير كان يستخدم لتحفيز الثقافة من القطب واحد (E58 في الشكل 2F). (E) مثال توضيحي من آثار البيانات الخام التي تم الحصول عليها بعد التحفيز من القطب 58 تظهر امكانات العمل (آثار الحمراء) أو بدون ردود (آثار الزرقاء) بعد التحفيز (الأسود السهم الرأس). (F) ثقافة العقدة لولبية في الشرق الأوسط وأفريقيا immunostained للعلامة العصبية TUJ (الأخضر) في نهاية التجربة لتصور العصبية تغطية نال من منطقة القطب {شخصية مقتبسة من 5 بموافقة من الناشر}. يشار إلى القطب 58 تستخدم لتحفيز باللون الأخضر، وأشار أقطاب الاستجابة باللون الأحمر. شريط النطاق = 50 ميكرون. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
وأخيرا، فإن الإعداد الشرق الأوسط وأفريقيا يسمح لدراسة إمكانية تعديل سطح القطب التي قد تزيد حساسية تسجيل. واستخدمت قطبين الشرق الأوسط وأفريقيا المتاحة تجاريا في هذه الدراسة مع اثنين من مختلف السطوح البلاتين: رمادي البلاتين (رمادي حزب العمال)، ويتكون من 150 نانومتر طبقة سميكة حزب العمال (مقاومة: 400 أوم / 1 كيلو هرتز) والأسود البلاتين، (الأسود، وحزب العمال)، التي حصلت عليها ترسب الكهروكيميائية من حزب العمال في نهاية عملية تصنيع دقيق (مقاومة: 20 أوم / 1 كيلو هرتز). انظر المواد جدول رقم (6 نقاط) للحصول على التفاصيل.
والأنف والحنجرة "FO: المحافظة على together.within الصفحات =" 1 "> تم تنفيذ ستة التجارب الشرق الأوسط وأفريقيا مستقلة لكل نوع القطب الأسود حزب العمال MEA يسمح للكشف عن نشاط الخلايا العصبية على عدد أكبر من الأقطاب الكهربائية في الشرق الأوسط وأفريقيا (الشكل 3A) والحد من. هناك حاجة للحصول على رد (الشكل 3B) السعة التحفيز. حللنا عن 30-35 أزواج القطب مستقلة، في 6 تجارب مختلفة، العتبة الحالية اللازمة لتحقيق استجابة. أداء الأقطاب الأسود حزب العمال بشكل ملحوظ تظهر أفضل عتبة 31.09 μ A +/- 2.4 مقارنة مع أقطاب رمادي حزب العمال 47.57 μ A +/- 1.97.
الشكل 3. مقارنة رمادي مقابل الأقطاب الأسود حزب العمال. وهناك نوعان من الأقطاب الكهربائية (رمادي واسود حزب العمال) وتمت مقارنة جنبا إلى جنب باستخدام 12 الثقافات الشرق الأوسط وأفريقيا المستقلة، 6 على كل نوع الشرق الأوسط وأفريقيا. (أ) العدد الإجمالي للإعادةويرد أقطاب sponding في التجربة. ويرد (B) عتبة الإتساع للحصول على رد، وتقاس باستخدام 30-35 أزواج القطب مستقلة في 6 التجارب الشرق الأوسط وأفريقيا المستقلة. وتظهر البيانات كما يعني + SD. (الطلاب ر اختبار ف <0.001) الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.
نقدم بروتوكولا لزراعة الخلايا العصبية العقدية الحلزونية الأولية للفئران على مصفوفات متعددة الأقطاب الكهربائية لدراسة ملامح الاستجابة العصبية وتحسين معلمات التحفيز. تهدف هذه الدراسات إلى تحسين واجهة الخلايا العصبية والقطب الكهربائي لغرسات القوقعة الصناعية لإفادة السمع لدى المرضى وكذلك استهلاك الطاقة للجهاز.
الكتاب أشكر روث Rubli في قسم علم وظائف الأعضاء في جامعة برن، سويسرا للحصول على المساعدة الفنية القيمة مع التجارب. وأيد هذا العمل في جزء من برنامج الاتحاد الأوروبي FP7-NMP (اتفاقية منحة لا 281056، NANOCI المشروع - www.nanoci.org).
| <قوي > متوسط ثقافة < / قوي > | |||
| متوسط عصبي | إنفيتروجين | 21103-049 | 24 مل (25 مل) |
| HEPES | Invitrogen | 15630-080 | 250 & mu ؛ ل (ل 25 مل) |
| Glutamax | Invitrogen | 35050-061 | 250 & mu ؛ ل (25 مل) |
| B27 | Invitrogen | 17504-044 | 500 & mu ؛ ل (25 مل) |
| FBS | GIBCO | 10099-141 | 10٪ (25 مل) |
| BDNF | R& D Systems | 248-BD-025 / CF | نهائي 5 نانوغرام / مل (ل 25 مل) |
| <قوي>الاسم | Company < / قوي > | < قوي > رقم الكتالوج < / قوي > | < قوي > تعليقات < / قوي |
| > < قوي > محلول خارج الخلية (درجة الحموضة 7.4) < / قوي > | |||
| كلوريد | الصوديوم 145 ملي | ||
| كلوريد الصوديوم | 4 ملي مولار | ||
| MgCl 2< / sub> | 1 ملي | ||
| ثانية CaCl 2< / sub> | 2 ملي هيبس | ||
| 5 ملي | |||
| Na-pyruvate | 2 ملي | ||
| جلوكوز | 5 مليمتر | ||
| <قوي>الاسمقوي> | <قوي>الشركة < / strong> | رقم الكتالوج < / strong> | تعليقات < / strong> |
| blocking solution< / strong> | |||
| PBS | Invitrogen | 10010023 | |
| BSA | Sigma | A4503-50G | 2٪ |
| Triton X-100 | Sigma | X100 | 0.01٪ |
| Name< / strong> | Company < / strong > | رقم الكتالوج < strong > | التعليقات < strong > |
| Immunostaining Solutions < / strong > | |||
| TuJ | R& D Systems | MAB1195 | dil 1: 200 |
| DAPI | Sigma | D9542 | |
| Paraformaldehyde | Sigma | 158127 | 4٪ |
| Fluoreshild | Sigma | F6057 | |
| Name < / strong > | Company   ؛ < / strong> | رقم الكتالوج< / strong> | تعليقات< / strong> |
| plastic/tools< / strong> | |||
| Petri dish 35 mm | Huberlab | 7.627 102 | |
| طبق بتري 94 مم | Huberlab | 7.633 180 | |
| Dumont # 5 ملاقط | WPI | 14098 | |
| Dumont # 55 ملقط | WPI | 14099 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials < / قوي > | |||
| محلول إنزيمي: Terg-a-Zyme | Sigma | Z273287-11KG | |
| Extracell Matrix (ECM) mix: Matrigel TM | Corning | 356230 | |
| MEA electrodes | Qwane Biosciences | (لوزان ، سويسرا) | |
| Name | Company < / strong> | رقم الكتالوج < / strong> | تعليقات < / strong> |
| Software< / strong> | |||
| Labview | National Instruments | Switzerland | |
| IgorPro | WaveMetrics | Lake Oswega ، الولايات المتحدة الأمريكية |