-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Cancer Research
الجينات مراسل fluorescence النويدات المشعة التصوير لتتبع تطور الورم في نماذج القوارض الورم

Research Article

الجينات مراسل fluorescence النويدات المشعة التصوير لتتبع تطور الورم في نماذج القوارض الورم

DOI: 10.3791/57088

March 13, 2018

Alessia Volpe1, Francis Man1, Lindsay Lim1, Alex Khoshnevisan1, Julia Blower1, Philip J. Blower1, Gilbert O. Fruhwirth1

1Department of Imaging Chemistry and Biology, School of Biomedical Engineering and Imaging Sciences,King's College London

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

يمكننا وصف بروتوكول لتتبع الإكلينيكية في فيفو من سرطان خبيث. أنه يستند إلى مراسل النويدات مشعة-الأسفار الجمع بين سيمبورتير يوديد الصوديوم، الكشف عنها بواسطة غير الغازية [18و] رباعي فلوروبورات-الحيوانات الأليفة، وبروتين فلوري لتبسيط السابقين فيفو تأكيد. الأسلوب الواجب التطبيق السريري في فيفو خلية تتبع وراء ورم علم الأحياء.

Abstract

ورم خبيث المسؤولة عن معظم وفيات السرطان. وعلى الرغم من البحث المكثف، آليا إلى فهم العمليات المعقدة التي تحكم ورم خبيث لم تكتمل بعد. في فيفو نماذج لها أهمية قصوى لورم خبيث للبحث، ولكن تحتاج إلى صقل. تتبع خبيث عفوية غير الغازية في فيفو التصوير من الممكن الآن، ولكن لا تزال صعبة إذ أنها تقتضي المراقبة منذ فترة طويلة وحساسية عالية. ونحن تصف طولية مجتمعة النويدات المشعة والأسفار جسم كله في فيفو التصوير النهج لتعقب تقدم وتطور ورم خبيث عفوية. وتستخدم هذه المنهجية الجينات مراسل سيمبورتير يوديد الصوديوم (NIS) تنصهر فيها بروتين فلوري (FP). الخلايا السرطانية صممت لصريح ستابلي شيكل-FP متبوعاً بالتحديد استناداً إلى فرز fluorescence تنشيط الخلية. أن يتم إنشاء المقابلة الورم نماذج في الفئران. شيكل إسرائيلي جديد-FP الخلايا السرطانية إذ تعرب عن تعقب غير إينفاسيفيلي في فيفو على مستوى كامل الجسم بالتصوير المقطعي بالبوزيترون (PET) الدول المستقلة حديثا باستخدام radiotracer [18و] فرنك بلجيكي4–. الحيوانات الأليفة حاليا الأكثر حساسية في فيفو التصوير التكنولوجيا المتاحة في هذا الجدول ويمكن تقدير موثوق بها والمطلق. الأساليب الحالية تعتمد على أفواج كبيرة من الحيوانات التي هي euthanized لتقييم ورم خبيث عند نقاط زمنية مختلفة، أو الاعتماد على تصوير ثنائي الأبعاد بالكاد قابلة للقياس الكمي. مزايا الطريقة الموصوفة: (ط) عالية الحساسية غير الغازية في فيفو تصوير الحيوانات الأليفة 3D والتقدير الكمي، (ثانيا) الحيوانات الأليفة الراسم الإنتاج الآلي، (ثالثا) انخفاض كبير في إعداد الحيوانات المطلوبة بسبب تكرار خيارات التصوير، (رابعا). الحصول على البيانات المزدوجة من الدورات اللاحقة التصوير توفير بيانات إحصائية أفضل، و (v) خيار جوهري السابقين فيفو تأكيدا للخلايا السرطانية في الأنسجة بالأسفار مجهرية أو الخلوي. في هذا البروتوكول، يصف لنا جميع الخطوات المطلوبة من أجل الروتينية شيكل-FP-أتاحت غير الغازية في فيفو سرطان الخلية تتبع استخدام تأكيد PET/CT و السابقين فيفو فيفو في النتائج. هذا البروتوكول له تطبيقات تتجاوز أبحاث السرطان كلما كان في فيفو التعريب والتوسع ورصد منذ فترة طويلة لمحتوى الخلية من الفائدة.

Introduction

المرض المنتشر هو سبب معظم الوفيات الناجمة عن السرطان 1. وعلى الرغم من بحوث مستفيضة في عمليات المنتشر، رصد موثوق بها من سرطان خبيث في نظم نموذجية الحيوان من الصعب تحقيق. وقد مكنت التطورات الحديثة في تقنيات التصوير الجسم كله والنهج التصوير المتعدد الوسائط غير الغازية في فيفو خلية تتبع2،3،،من45. ويمكن استخدام هذا الأخير كأداة رصد وجود وتوزيع، والكمية، والجدوى من الخلايا، غير إينفاسيفيلي ومرارا وتكرارا الحيوانات حية أو من حقوق إنسان.

وغرض الأسلوب الموصوفة هنا طوليا وغير إينفاسيفيلي تتبع الخلايا السرطانية في 3D في نماذج الورم القوارض الحية. باستخدام هذا الأسلوب، سوف تكون قادرة على دقة قياس تطور الورم بما في ذلك انتشار المنتشر في 3D الباحثين. بالمقارنة مع التقنيات التقليدية غير المستندة إلى التصوير، يقدم هذا الأسلوب الحصول على البيانات الكمية مع إلى حد كبير انخفاض إعداد الحيوانات. ميزة أخرى لهذا الأسلوب أنه يتيح الارتباط في فيفو التصوير مع تحليل مبسط المصب السابقين فيفو المتعقبة خلايا الأنسجة المقطوع بالانسجة أو الخلوي3،6.

وكان الأساس المنطقي لتطوير هذا الأسلوب لتوفير أداة في فيفو للرصد والقياس الكمي لعملية كاملة المنتشر في نماذج القوارض الورم. الأهم من ذلك، وقد صممت للحد من استخدام الحيوانات في الوقت نفسه الحد من تقلب بين الحيوانات. تصوير كامل الجسم غير الغازية الطولي ممتاز مناسبة لإطلاع على ثمرة المنتشر، لهي في حد ذاتها من الصعب التنبؤ بدقة بوقت ومكان حدوثه. ولذلك تم تصوير كامل الجسم ثلاثي الأبعاد في مركز تنمية الأسلوب. حجم الفجوة بين الجسم كله في فيفو تصوير وإمكانات كان المصب السابقين فيفو تأكيد النسيجي، مقياس متعدد النهج التصوير استناداً إلى مراسل النويدات مشعة ذات الوضع المزدوج-الأسفار المعتمدة3، 6.

التصوير المقطعي بالبوزيترون (PET) هي الأكثر حساسية 3D كامل الجسم التصوير التكنولوجيا المتاحة حاليا تقدم ممتاز عمق الاختراق و الكمي المطلق7 مع قرار من < 1 مم8،9. حاليا، يمكن موثوق الإكلينيكية خلية تتبع على مستوى كامل الجسم من النويدات المشعة التصوير الكشف عن الخلايا في كثافة الخلايا ~ 1,000 كل حجم من 1 مليون الخلايا3،6 مع القرارات في المنطقة الفرعية ملليمتر. خلافا مجهرية إينترافيتال، فإنه لا يمكن الكشف عن الخلايا السرطانية نشر واحدة، بل أنها لا تتطلب الإجراءات الجراحية (مثل الدوائر النافذة)، ولا يقتصر مجال رؤية صغيرة، وليس باختراق الأنسجة منخفضة ومبعثر. التصوير الإضاءة الحيوية يوفر بديل غير مكلفة، لكن المقترنة مبعثر والمسائل امتصاص الضوء، فضلا عن ضعف عمق الاختراق، وبالتالي محدودة بشدة في تحديد مقدار2. تصوير كامل الجسم الأسفار وقد استخدمت للحصول على صور ثلاثية الأبعاد، إلا أنها حساسة أقل بكثير مقارنة ب تكنولوجيات الإضاءة الحيوية أو النويدات المشعة2. ومع ذلك، الأسفار يتيح الفرصة لإجراء تحليل السابقين فيفو المصب النسيج الخلوي أو الفحص المجهري. هذا الأخير يغلق المقياس-الفجوة بين تصوير كامل الجسم العيانية (القرار مم) والأسفار الأنسجة المجهرية التحليل (القرار ميكرومتر)3. ولذلك، طرائق النويدات المشعة والأسفار يكمل كل منهما الآخر، بدءاً من مستوى الجسم كله إلى النطاق الخلوية (sub-).

تصوير الجينات مراسل يعتبر مثاليا لفترات طويلة خلية تتبع كما هو مطلوب في أبحاث ورم خبيث. في هذا التطبيق متفوقة على وسم الخلية مباشرة كما هو (ط) لا تتأثر بتمييع التسمية وهكذا لا تقتصر في تتبع الوقت، وتعكس أرقام الخلية الحية (ثانيا) أفضل. ونتيجة لذلك، كامل الجسم خلية تتبع مفيد بشكل خاص للتطبيقات التي يمكن تتبعها الخلايا تتكاثر أو توسيع في فيفو، على سبيل المثال في سرطان البحثية3،6، للكشف عن تشكيل تيراتوما في الجذعية خلية البحث، أو للتحديد الكمي لجهاز المناعة الخليوي توسع5.

مختلف النويدات المشعة على مراسل الجينات هي المتاحة2. وتشمل هذه الإنزيمات مثل كيناز thymidine HSV11 فيروس الحلأ البسيط (HSV1-المعارف التقليدية)، وشركات النقل مثل سيمبورتير يوديد الصوديوم (NIS) أو إفراز الناقل (صافي)، وكذلك مستقبلات الخلية السطحية مثل الدوبامين (مستقبلات D2 D2R). شيكل إسرائيلي جديد هو بروتين عبر غشاء الغليكوزيلاتي الذي يتوسط بنشاط امتصاص يوديد، على سبيل المثال في جرابي خلايا الغدة الدرقية للتوليف اللاحقة لهرمونات الغدة الدرقية10. هذه العملية بدافع سيمبورت نا+ ويعتمد على التدرج الصوديوم الخلوية، الذي تم تطويره من قبل الجمعية الوطنية+/K+-أتباسي11. ونتيجة لذلك، شيكل إسرائيلي جديد يعكس بشكل أفضل المعيشة الخلية عدد من الصحفيين الآخرين كما يرتبط امتصاص يوديد/راديوتراسير نا نشطة+التدرج/K+ بدلاً من مجرد وجود الناقل. تقليديا، وقد استخدم راديويوديدي لتصوير شيكل. تتبع الخلية، وأبلغ راديوتراسيرس شيكل البديلة التي لم يتم تطويق أيضي في الغدة الدرقية لتكون متفوقة6. وهذا مؤخرا بوضع الحيوانات الأليفة radiotracer [18و] رباعي فلوروبورات (فرنك بلجيكي [18و]4–)،من1213 يظهر الدوائية متفوقة بالمقارنة مع راديويوديدي6 بينما يجري متاح في أنشطة محددة ارتفاع14 دون الحاجة إلى مرافق مجمع الكيمياء الإشعاعية. [18و] يمكن توليفها فرنك بلجيكي4– عبر طريقتين مختلفتين. وتستند الطريقة الأولى تبادل النظائر غير مشعة 19و في فرنك بلجيكي4– مع المشعة 18و12. الطريقة الثانية عن طريق إضافة 18و البورون غير مشعة فلوريد ثلاثي14. أفادت الأنباء أن تسفر عن أنشطة محددة ارتفاع14 الأسلوب الأخير وهو الأسلوب المفضل للتصوير السريري.

وأعرب عن شيكل هو الغاية في أنسجة الغدة الدرقية. فهو وارد أيضا في الغدد الثديية اللعابية ولاتشريمال والمرضعات، فضلا عن المعدة، ولكن على مستويات أقل بالمقارنة مع الغدة الدرقية10. ولذلك، يمكن تحقيقها تصوير ممتازة التباين في مناطق أخرى من الجسم باستخدام شيكل. وأيضا كبير مثلى بين الإنسان والفئران والفأر10. وعلاوة على ذلك، لا توجد تقارير السمية عند التعبير شيكل حمل خارج الرحم في الخلايا غير ثيرويدال. الأهم من ذلك، شيكل أيضا لم يكن المقترنة مع الاستجابات المناعية المضيف، لا في البشر ولا في القوارض. وقد استخدمت شيكل كجينات مراسل لقياس المروج النشاط15،،من1617 والجينات التعبير18،19،20،21،22 ،23 في عدة سياقات مختلفة. فقد استخدمت أيضا لتصوير غير الغازية للجينات العلاج ناقلات24،25وتتبع الخلايا في القلب4و المكونة للدم26والتهاب5والدراسات العصبية27. في الآونة الأخيرة، شيكل كما استخدمت كجينات مراسل لتعقب سرطان خبيث في فيفو3،6.

وباختصار، المزايا الرئيسية لهذا الأسلوب على التقنيات السابقة: (ط) عالية الحساسية غير الغازية 3D في فيفو التعريب والتحديد الكمي المنتشر انتشار، (ثانيا) الإنتاج من [18و] فرنك بلجيكي4– الآلي في أنشطة المولى عالية، (ثالثا) تخفيضاً كبيرا في الحيوانات المطلوبة من خلال التصوير الطولي، (رابعا) الحصول على البيانات المزدوجة من الدورات اللاحقة التصوير أدى إلى تحسين البيانات الإحصائية، مما يقلل بدوره مزيدا من استخدام الحيوانات، و (v) خيار جوهري السابقين فيفو تأكيدا للخلايا السرطانية في الأنسجة بالفحص المجهري الخلوي أو الأسفار.

Protocol

هذا البروتوكول يفي بجميع المتطلبات التي حددها فريق "المراجعة الأخلاقية" المحلية وتشريعات "المملكة المتحدة" (المملكة المتحدة). عند اتباع هذا البروتوكول، ضمان الإجراءات أيضا تلبية جميع المتطلبات التي تمليها التشريعات الوطنية وهيئة "المراجعة الأخلاقية" المحلية. تضمن كل التجربة التي تنطوي على نشاط إشعاعي متوافقة مع القوانين والقواعد المحلية والمؤداة بأمان.

1-الهندسة وتوصيف الخلايا السرطانية للتعبير عن مراسل الانصهار النويدات المشعة-الأسفار شيكل-تنظيم الأسرة

ملاحظة: لأغراض التبسيط، هو اختصار ميجفب A206K "التجارة والنقل"، ومشري ك "العروض" في الأجزاء اللاحقة من هذا البروتوكول.

  1. جيل جسيمات لينتيفيرال
    1. لإنتاج جزيئات lentivirus، شارك ترانسفيكت الخلايا 293T مع البلازميدات الأربعة التالية باستخدام أسلوب تعداء مناسبة: (ط) ترميز بلازميد الجينات مراسل (بلنت سفف شيكل-التجارة والنقل أو بلنت سفف شيكل-طلب تقديم العروض (انظر المعلومات التكميلية)، (ثانيا) الجيل الثالث pMD2.G (iii) برسف-القس، التعبئة والتغليف والبلازميدات بري وبلازميد (رابعا) الفيروس المغلف الذي يتضمن، على سبيل المثال، لينتيفيرال. قبل مزيج من البلازميدات قبل إضافتها لمزيج تعداء. أداء تعداء في غطاء ثقافة خلية.
      ملاحظة: يتم توفير معلومات إضافية تعداء في "المعلومات التكميلية".
    2. تقييم نجاح تعداء بعد 48 ساعة قبل الفحص المجهري معيار واسع المجال الأسفار مع إعدادات عامل التصفية المناسب للمراسل الانصهار المختار (NIS-التجارة والنقل أو شيكل-RFP).
      ملاحظة: إشارات Fluorescence الإرشادية لمراسل الجينات تعداء، وبذا لا بديل تعداء المشارك الناجح، وليس مؤشرا لإنتاج الفيروس ناجحة.
    3. حصاد الفيروسات التي تحتوي على الجسيمات المادة طافية استخدام المحاقن وإزالة الخلايا العائمة والحطام الخلية بعملية التصفية من خلال عامل تصفية بولييثيرسولفوني عقيمة (PES) 0.45 ميكرومتر. نقل إلى أنبوب البولي بروبلين رد فعل معقم 1.5 مل. أداء عمل الفيروس في غطاء ثقافة خلية والتأكد من الفيروس لا يعيش يترك البيئة الواردة.
  2. توصيل واختيار شيكل-FP وإذ تعرب عن سرطان الخلية الخطوط
    1. استخدام الفيروس جديدة نقية من الخطوة 1.1.3 مختلطة 1:1 (v/v) مع متوسط النمو الأمثل لكل خط خلية سرطان (دميم لجمعية نجمة داود الحمراء-ميغابايت-231 الخلايا و 1640 ربمي للخلايا 4T1؛ انظر "الجدول المواد" لتشكيل وسائل الإعلام). إجراء توصيل في غطاء ثقافة خلية.
      ملاحظة: بروتوكول أكثر عامة المشار إليها في "المعلومات التكميلية".
    2. ترانسدوسي الخلايا السرطانية مع المحتوية على الفيروس متوسطة في حاضنة مع الغلاف الجوي هوميديفيد التي تحتوي على 5% (v/v) CO2 في 37 درجة مئوية ح 72 (العمل على مقياس جيدا 6 أو 12-جيدا باستخدام 1 مل أو 0.4 مل من مزيج الفيروس من الخطوة 1.2.1).
    3. مراقبة التعبير شيكل-FP الخلية الهدف بالفحص المجهري الأسفار.
    4. توسيع نطاق الخلايا ترانسدوسيد بنجاح إلى نطاق خلايا 3 مليون باستخدام شروط الثقافة القياسية (انظر ATCC لخطوط الخلايا 4T1 ونجمة داود الحمراء-ميغابايت-231).
    5. استخدام خلية تنشيط fluorescence الفرز (نظام مراقبة الأصول الميدانية) لتنقية الخلايا وإذ تعرب عن FP شيكل من الخلايا غير ترانسدوسيد.
      ملاحظة: نظام مراقبة الأصول الميدانية، يمكن أن تكون مصدرا للعدوى بالميكوبلازما؛ من المستحسن للتحقق من وجود مفطورة قبل إنتاج الفيروس وتوصيل بل أيضا بعد نظام مراقبة الأصول الميدانية وقبل الخطوة 1، 3.
  3. توصيف شيكل-FP وإذ تعرب عن سرطان الخلية خطوط
    1. تأكيد التعبير المراسل بقياس تدفق القياسية كما هو موضح في مكان آخر من28.
    2. التأكد من سلامة المراسل ب immunoblotting القياسية كما هو موضح في مكان آخر29.
    3. تحليل التعريب مراسل الانصهار داخل الخلايا بالميكروسكوب الأسفار [كنفوكل].
      ملاحظة: تلطيخ مع أو التعبير المشارك غشاء البلازما علامة6 والتعريب المشارك اللاحقة تحليل30 سيسهل هذه الخطوة.
    4. تحليل امتصاص راديوتراسير في نيس-FP خطوط الخلايا وإذ تعرب عن.
      ملاحظة: أي الركازة شيكل المشعة المتوافقة مع المعدات الموجودة غير مناسبة، مثل النظائر يوديد (123أنا-، 124أنا-، 125أنا-، 131أنا–)، م 99 TcO4-،-، 188تكتنفها4[18و] حتى3و– أو [18و] فرنك بلجيكي4–.
      1. تنقية البذور 106 خلايا في لوحات 6-جيدا في المتوسطة على النمو الأمثل (انظر الجدول للمواد) قبل يوم واحد من التجربة. إعداد جميع العينات في ثلاث نسخ، وتدرج عينات التحكم: (ط) خصوصية "ضوابط"، أي شيكل-FP وإذ تعرب عن الخلايا المحتضنة مسبقاً مع الركازة شيكل تنافسية لاختبار امتصاص خصوصية؛ (ثانيا) "عناصر الخلية الأبوية"، أي خلايا لم تعرب عن FP شيكل ولكن تلقي راديوتراسير لاختبار امتصاص القاعدية في الخلايا الأبوية.
      2. في صباح اليوم التالي، يغسل خلايا مرة واحدة مع متوسط النمو خالية من المصل.
      3. احتضان خلايا خالية من المصل النمو المتوسطة بحضور 50 بيكيريل 99 mTcO4– أو [18و] فرنك بلجيكي4– لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية (1 مل الحجم الإجمالي). لعناصر التحكم في الخصوصية، قبل احتضان الخلايا لمدة 30 دقيقة مع منافسة الركازة ناكلو4– (12.5 ميكرون تركيز النهائي). الحفاظ على تركيز منافسة الركازة ثابت في كافة مراحل التجربة.
      4. جمع المادة طافية ونقل 100 ميليلتر إلى أنبوب جمع معدّة المسمى "طافية".
      5. تغسل الخلايا مرتين مع 1 مل المثلج مخزنة الفوسفات المالحة (PBS) تحتوي على Ca2 +/Mg2 +. جمع كل حل المياه والصرف الصحي ونقل 100 ميليلتر من كل منها إلى أنبوب جمع معدّة المسمى "wash1" أو "wash2"، على التوالي.
      6. رفع الخلايا بإضافة 500 ميليلتر PBS المحتوية على التربسين 0.25% (w/v) و 0.53 ملم يدتا، وتفرخ في 37 درجة مئوية حتى فصل الخلايا (الاختيار بصريا باستخدام مجهر). نقل التعليق في أنبوب استعداد مجموعة المسماة "خلايا". غسل الآبار مع 500 ميليلتر المثلج برنامج تلفزيوني يتضمن Ca2 +/Mg2 + وإضافة إلى الأنبوب "الخلايا". بيليه الخلايا بالطرد المركزي (250 x ز, 4 دقيقة, 4 درجة مئوية).
      7. تعيين عدد جميع أنواع العينة أربعة من كل كذلك باستخدام أشعة غاما التصدي على النحو الملائم للنظائر المشعة خيار (هنا: 18و أو م 99Tc).
        ملاحظة: نظراً للعدد الكبير من عينات في هذا التحليل، ينصح باستخدام γ-عداد الآلي قادرة على تصحيح الانحلال التلقائي.
      8. تحليل البيانات بجمع التهم جاما التي تم الحصول عليها من عينات من كل بئر لتحديد عدد مجموع النشاط إشعاعي للبئر الواحد.
        ملاحظة: أن اليقوتينج في الخطوات 1.3.4.4 و 1.3.4.5 في الاعتبار بضرب الأرقام من 10 ل "طافية"، و "غسل" الكسور.
      9. التعبير عن امتصاص radiotracer الخلوية كنسبة الإقبال على النحو المشار إليه في Equ.1. حساب المتوسطات والانحرافات المعيارية من ثلاث تجارب.
        Equation 1(Equ.1)
        ملاحظة: هنا، تجارب التحقق من صحة مراسل موصوفة، لكن في نهاية المطاف الوظائف الخلوية غير متعلقة بمراسل (مثل انتشار، وغزو خلايا السرطان، التعبير الجيني إلخ) الخاصة بالتطبيق والمسؤولية لكل مستخدم.

2-إنشاء نماذج ورم في فيفو

  1. استخدم فقط تتميز الكامل والتحقق من صحة الخلايا لإجراء تجارب عليها في فيفو . التحقق من صف خلايا قبل الإدارة بأي أسلوب مناسب (مثل الأسفار مجهرية، التدفق الخلوي) في كل مناسبة.
  2. إنشاء نموذج الورم في الفئران الإناث الصغار والكبار 5-6 أسابيع من العمر. استخدام بالب/كانكرل أو الفئران بالب/cAnN.Cg-Foxn1نو (عارية بالب/ج) لنموذج الورم 4T1 و إيماءة. بركدك cgإخضاعها Il2rgtm1WjI/SzJ الفئران (مجموعة موردي المواد النووية) لنموذج جمعية نجمة داود الحمراء ميغابايت-231-المستندة إلى الورم. حلق الحيوانات محلياً واستخدام تقنية العقيم. مباشرة حقن 50 ميليلتر من تعليق يتضمن 106 شيكل-FP إذ تعرب عن سرطان خلايا/مل في لوحة الدهون الثديية بين الرابعة وفي الحلمة الخامسة31.
    ملاحظة: لتحسين دقة الحقن، من المستحسن إجراء الحقن تحت التخدير العام باستخدام مخدر هنالك مثل إيسوفلوراني (1-2% (v/v) في س2).
    ملاحظة: غرس الجراحي لقطع ورم من الأورام شيكل-FP وإذ تعرب عن نهج بديل للورم نموذج إنشاء31.
  3. تحقق من الأسفار خلايا في مواقع الحقن بعد الإدارة وفي الأيام الأولى بعد الحقن. استخدام الأسفار الشعلة وتصفية نظارات مناسبة لتنظيم الأسرة الاختيار.
  4. رصد نمو الورم والتحقق من وجود أي علامات سريرية (لا سيما في نقاط زمنية لاحقة).
    ملاحظة: لاورام سطحية، أي أورثوتوبيك الثدي أورام في هذا البروتوكول، واستخدام الفرجار، والصيغة لقطر الورم يعني (مليون دينار) = ½· (ل + W) 32.

3-إنتاج [18 و] فرنك بلجيكي 4– باستخدام منصة توليف (جمعية الإغاثة اﻷرمنية) راديوتراسير الآلي.

ملاحظة: هنا، توليف4– فرنك بلجيكي الآلي [18و] استناداً إلى الأسلوب من 18و بالإضافة إلى فلوريد البورون الثلاثي هو وصف. مستخدمين منصة ARS متاح على نطاق واسع (انظر الجدول للمواد)، يمكن تحميل ملف لغة التوصيف القابلة للتوسيع (XML) المقابلة المطلوبة لتشغيل تسلسل الآلي على هذا النظام الأساسي (ملف تكميلي). ويرد شرحاً مفصلاً لتخطيط كاسيت هو مبين في الشكل 1 في (الجدول 1) فضلا عن وصف مفصل لكل خطوة في ملف XML التسلسل (الجدول 2) لدعم الترجمة إلى أي منصة مؤتمتة.

  1. إعداد منهاج جمعية الإغاثة اﻷرمنية كما هو موضح في الجدول 1 والتأكد من أنها التشغيلية مع ملف XML صحيح تحميلها على الكمبيوتر التحكم. ضمان وضع منهاج جمعية الإغاثة اﻷرمنية في غطاء كيميائية مناسبة لسلامة العمل مع كميات جبق من النشاط الإشعاعي.
  2. نضح أنتجت سيكلوترون [18و] و– (عادة جبق 1.5-2 في 2-7 مل [18س] ح2س) عن طريق مدخل الخزان (V6).
  3. مصيدة النشاط الإشعاعي راتنج تبادل شاردة (مثل رباعي الأمونيوم شاردة تبادل خرطوشة; V5 ل V4)، استرداد [18س] ح2س في قنينة منفصلة (V1).
  4. الوت [18و] و– (عكس شطف، V5 ل V4) في المفاعل (V8) مع ميليلتر 750 من 0.9% (w/v) المحلول الملحي (V2)، تليها 1.5 مل من الاسيتو الانيتريل (V16).
  5. إزالة المياه بالتبخر أزيوتروبي تحت تدفق الفراغ والنيتروجين بتدفئة في 105 درجة مئوية ثم 120 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
  6. خفض درجة حرارة المفاعل إلى 80 درجة مئوية.
  7. إضافة 800 ميليلتر من 5-15-التاج في الاسيتو الانيتريل اللامائى (46 ملغ، 0.21 ملمول) إلى الجاف [18و] و– من خلال الميناء المركزي للمفاعل (V8).
  8. إضافة ميليلتر 850 فرنك بلجيكي3. أويت2 في الاسيتو الانيتريل اللامائى (0.16 mg، 1.13 µmol) للمفاعل.
  9. الرد لمدة 5 دقائق بينما كان عائدا إلى درجة حرارة الغرفة.
  10. تمرير الخليط رد فعل عن طريق خرطوشة أكسيد الألومنيوم (V17 ل V18) إلى اعتراض تريفلوروبوراتي.
  11. العودة الخليط رد فعل لحقنه S2 وتخفف بالماء (حوالي 1.6 مل).
  12. تمرير الخليط رد فعل عن طريق خرطوشة تبادل شاردة ثانية (V19 إلى V20) إلى اعتراض المنتج4– فرنك بلجيكي [18و].
  13. أغسل المفاعل بالماء (حوالي 5.5 مل).
  14. تمرير حل الناتجة عن طريق شركة ألومينا وخراطيش تبادل شاردة الثانية.
  15. شطف المحاقن S2 و S3 بالماء.
  16. أغسل خرطوشة تبادل شاردة الثانية مع المياه والجافة مع غاز النيتروجين.
  17. الوت المنتج (V19 إلى V20) مع 1 مل من 0.9% كلوريد الصوديوم (V14) في المحاقن S3.
  18. نقل المنتج (400-500 ميليلتر) عن طريق خط منفذ (V21) لقنينة جمع زجاج 1 مل.
    ملاحظة: نشاط المولى جانبا هاما من كل راديوتراسير. ومع ذلك، عزمها الروتينية ليس فقط مضيعة للوقت لكن أيضا يتطلب كميات كبيرة من تجميعي طازجة [18و] فرنك بلجيكي4-، مثل أن يصبح عاملاً مقيداً لعدد الحيوانات التي يمكن تصويرها. لاختبار إمكانية تكرار نتائج وأنشطة المولى لما نتج عنها [18و] فرنك بلجيكي4–، من المستحسن لجدولة عدد قليل من تشغيل اختبار مخصصة لهذا الغرض. لمزيد من التفاصيل حول أنشطة المولى، يرجى الرجوع إلى قسم النقاش.

4-الخلايا في فيفو تصوير شيكل-FP الإعراب عن طريق نانوبيت/CT

  1. إعداد الحيوانات
    1. تخدير الفئران مع isoflurane 1.5-2.0% (v/v) في س2 بمعدل 1.0-1.5 لتر في الدقيقة في دائرة التعريفي لتدفق. للتحقق من وجود نظرة التخدير كافية لغياب رد الفعل الدواسة.
    2. ضمان تطبيق مرهم البيطرية في عيون الحيوان لمنع جفاف بينما تحت التخدير
    3. حرك الماوس على لوحة تدفئة مع الآنف في قناع توريد مخدر والحارة الذيل (مثلاً بأنها تستنزف المياه 37 درجة مئوية أو باستخدام مصباح ضوء الأشعة تحت حمراء).
    4. تمييع فرنك بلجيكي الطازجة العقيمة التي تمت تصفيتها [18و] حل4– مبق 5 الواحد 50 ميليلتر مع المالحة العقيمة 0.9 في المائة.
    5. استخدام حقنه متصلة إبرة حقن (قياس 29-31) ورسم 100 ميليلتر من الحل4– فرنك بلجيكي [18و] وقياس النشاط الإشعاعي في المحاقن وملاحظة القيمة ووقت القياس.
    6. إدارة 50 ميليلتر من الحل4– فرنك بلجيكي [18و] الوريد الوريد ذيل المعالجون مسبقاً.
    7. قياس النشاط الإشعاعي المتبقي في المحاقن وملاحظة القيمة ووقت القياس. الفرق بين القيم التي تم قياسها في الخطوات 4.1.7 و 4.1.5 هي حقن جرعة (ID).
    8. تعيين مؤقت العد التنازلي من 45 دقيقة (وقت البدء لتصوير الحيوانات الأليفة = 0 دقيقة).
    9. ضع الماوس على السرير للماسح الضوئي نانوبيت/الأشعة المقطعية وضمان الإمداد بمخدر إعادة المرفق بشكل صحيح.
    10. تحقق يبقى التخدير الكامل عن طريق اختبار لغياب رد الفعل دواسة.
    11. ضمان وضع الماوس على السرير بالطريقة المرجوة، مثل 'أبو الهول'-مثل الموقف.
    12. تثبيت أجهزة مراقبة الحيوان وفقا لتوصيات الشركة المصنعة، مثل مجس درجة حرارة المستقيم، مجس قياس الحيوان في التنفس، أو أقطاب لتسجيل كهربية. التحقق من وظيفة مناسبة لجميع الصكوك.
      ملاحظة: للاختبارات المجراة في خصوصية مع نيس radiotracer [18و] فرنك بلجيكي4–، الحيوانات يتم تصويرها كما هو موضح أعلاه، وثم استراح مستيقظا حتى قد التهاوي النشاط الإشعاعي بما فيه الكفاية اعتبار لا يعتد بها، مثلاً ح 48 1.3·10 في وقت لاحق عندما فقط−6% المتبقية 18و النشاط الإشعاعي سيكون حاضرا في الحيوان. في الدورة اللاحقة التصوير، تدار الركيزة تنافسية أومه4– بجرعة 200 مغ/كغ و 30 دقيقة قبل الإدارة راديوتراسير، والتصوير يتم كما هو موضح أعلاه.
  2. التصوير بواسطة نانوبيت/CT
    1. تعيين المطلوب CT تصوير المعلمات، مثل استخدام الجهد أنبوب كفب 55 نانوبيت/CT، وتعيين وقت التعرض إلى 1200 مرض التصلب العصبي المتعدد مع تصعيد درجة واحدة الزاوي وإسقاطات 180 درجة.
    2. تعيين المعلمات للحصول على الصور الحيوانات الأليفة. استخدام ثابت مسح معلمات الحيوانات الأليفة لمدة 30 دقيقة، ووضع صدفة 1:5 400-600 كيفب الطاقة النافذة.
    3. في وقت العد التنازلي = 15 دقيقة الحصول على الصور المقطعية ابدأ.
    4. في وقت العد التنازلي = 0 دقيقة ابدأ الحيوانات الأليفة الحصول على الصور.
      1. إذا كان المسلسل تصوير الحيوانات الحيوانات المطلوبة، دعونا يتعافى تماما من التخدير، أي استعادة وعيه تحت الإشراف. وفي وقت لاحق، نقلها إلى وحدة صيانة.
      2. إذا كانت هذه هي المحطة الطرفية التصوير الدورة، المضي قدما إلى القتل الرحيم الحيوانية أما جرعة مخدر، ارتفاع تركيز ثاني أكسيد الكربون، أو التفكك في الرقبة.

5-تحليل البيانات في فيفو

  1. إعادة إنشاء البيانات PET/CT باستخدام خوارزمية تكرارية 3D الكاملة المستندة إلى مونتي كارلو. ضمان أن يتم بحث التصويبات التوهين والوقت الميت وتحلل النظائر المشعة. للتفاصيل، راجع إرشادات الشركة المصنعة للصك PET/CT في استخدام.
  2. الصور المقطعية الاختيار والحيوانات الأليفة شارك مسجلة بشكل صحيح وحفظ البيانات في تنسيق تبادل مناسبة مثل 'التصوير الرقمي والاتصالات في الطب' (DICOM).
  3. تحليل الصور
    1. تحميل ملفات DICOM أعيد بناؤها في صورة مناسبة تحليل برمجيات التي تمكن من التعرف على وترسيم المناطق الاهتمام (رويس) والحيوانات الأليفة اللاحقة إشارة الكمي في هذه رويس.
    2. الجزء رويس استخدام العتبة اليدوي أو التكيفية لتعريف رويس33،34 باستخدام حزمة برامج مناسبة. معلومات الصورة التشريحية من المقطعية يساعد دليل دوروا التعيين، مثل أورام سطحية أو أحجام الرئة.
    3. استخدام برمجيات التحليل وفقا لإرشادات الشركة المصنعة والتأكد من معايرة لجرعة إشعاعية حقن البيانات وتصحيحها التوهين والانحلال الإشعاعي.
  4. رسم الرسوم البيانية عرض البيانات من هذا التقدير الكمي في فيفو . بيانات صريحة في المائة أما حقن جرعة/وحدة التخزين (%ID/mL) أو قيمة الإقبال القياسي (سيارات الدفع الرباعي)، وهو تدبير بديل النظر في النشاط الإشعاعي في الجسم كله لهذا الموضوع.
    1. حساب القيم %ID/g افتراض كثافة الأنسجة لتكون مثل الماء، أي ~ 1 غ/ل. جدير بالذكر أن هذا الافتراض يمكن أن تكون صالحة للأجهزة مع كثافات مختلفة إلى حد كبير، مثل الرئة أو العظام.
    2. حساب الدفع الرباعي المختلفة لتقدير سيارات الدفع الرباعي صحيح (على سبيل المثال. سوفمين، سوفماكس)؛ سوفماكس هو أكثر موثوقية للأجسام الصغيرة، ويستخدم بشكل متكرر أكثر من سوفمين35.

6-تحليلات السابقين فيفو

إجراء تحليلات المتلقين للمعلومات المدرجة: تصوير (ط) الأسفار من الأجهزة التي تحتوي على الخلايا السرطانية الفلورسنت (الورم الرئيسي والانبثاث) أثناء تشريح الحيوان، (ثانيا) قياس توزيع الأنسجة راديوتراسير، و (ثالثا) نسيجية أو (رابعا) تقييم سيتوميتريك لأجهزة سرطانية.

  1. قياس التوزيع radiotracer γ-عد (السابقين فيفو بيوديستريبوشن) و السابقين فيفو fluorescence تصوير الأنسجة السرطانية.
    1. قياس النشاط الإشعاعي للحيوان الميت كله وملاحظة القيمة والوقت.
    2. تشريح الحيوانات والحصاد الأنسجة التالية: الرئة، القلب، الدم (باستخدام الشعيرات الزجاج عيار 20 ملم)، الكبد، المعدة، الكلي، الطحال، الأمعاء الصغيرة والكبيرة، الغدة الدرقية والغدد اللعابية، قطعة من عضلة من الساق، وعظم قصبة الخلفي، و ذات الصلة وديسيكتيبلي الغدد الليمفاوية والأنسجة السرطانية.
    3. قياس النشاط الإشعاعي للذبيحة المتبقية بما في ذلك أولاً ثم باستثناء الذيل وملاحظة القيم والأوقات للقياس.
      ملاحظة: النشاط الإشعاعي في الذيل يمكن اعتبار النابعة من راديوتراسير التي تم حقن سوء، وهكذا لم تصل إلى الدورة الدموية؛ ومن ثم، لا تساهم هذه الكمية من راديوتراسير حقن الجرعة. النشاط الإشعاعي ذيل يخدم أيضا كمعلمة أثر رجعي من نوعية الحقن.
    4. تزن كل الأنسجة (استخدام أنابيب موزون مسبقاً).
    5. التقاط صور فوتوغرافية لأجهزة سرطانية في وضح النهار وتحت ضوء الأسفار.
      ملاحظة: استخدم موقف كاميرا للحفاظ على المسافة بين عدسة الكاميرا وجهاز ثابت (أو استخدام أداة تجارية مخصصة لهذا الغرض).
    6. تضمين أجهزة/أنسجة مخصصة لعلم الأنسجة المصب في أكتوبر أو تزج لهم في الفورمالين للتثبيت. يمكن أن تختلف إعداد نموذج لغيرها من تطبيقات المتلقين للمعلومات.
    7. إعداد radiotracer معايير المعايرة في المكررة، مثل بيكيريل [18و] من 0 إلى 1000 فرنك بلجيكي4–.
      ملاحظة: معايرة المعايير تلزم (ط) تتعلق التهم يقاس كل دقيقة لقيم النشاط الإشعاعي (في بيكيريل)، و (ثانيا) تبسيط تصحيح الاضمحلال؛ 18 يمكن استبدال و– –[18و] فرنك بلجيكي4.
    8. حساب النشاط الإشعاعي لجميع الأنسجة المقطوع باستخدام عداد γ جنبا إلى جنب مع معايير معايرة النشاط الإشعاعي من الخطوة 6.1.7. ملاحظة وقت القياس. إذا كان حساب معدلات مرتفعة للغاية (أي خارج الخطي للمعايرة القياسية أو المشار إليه بعاليه للغاية للكشف عن قتلى مرات)، إعادة عد عينات اثنين radiotracer التنصيف في وقت لاحق.
    9. تقديم البيانات أما %ID/g أو قيم الإقبال القياسي (سيارات الدفع الرباعي) (Equ.2).
      سيارات الدفع الرباعي = Equation 2 (Equ.2)
    10. تجاهل جميع الأنسجة المقطوع غير مطلوبة لمزيد من التحليلات المصب وفقا لقواعد إدارة النفايات المحلية.
  2. تحليل الأنسجة السرطانية بالخلوي أو الأنسجة وفقا لتفضيلات المستخدم ومستوى البروتوكولات الملحقة بها (كما هو موضح في مكان آخر3،،من628).

Representative Results

الخطوة الأولى يتطلب الهندسة الوراثية للخلايا السرطانية للفائدة. هنا، والنتائج لتوصيل لينتيفيرال خلايا سرطان الثدي المنتشر مورين 4T1 التحريضية والبشرية خلايا MDA-ميغابايت-231 المنتشر مع lentivirus تظهر جزيئات تحمل الحمض النووي ترميز شيكل-التجارة والنقل أو شيكل-طلب تقديم العروض. توصيل كفاءات تراوح بين خطوط خلايا السرطان (الشكل 2A، العمود الأيسر). ومع ذلك، ترانسدوسيد الناتجة كل خلية سرطانية تم اختيار خطوط بنظام مراقبة الأصول الميدانية للنقاء (الشكل 2A، حق). الأسفار [كنفوكل] مجهرية (الشكل 2) أثبت التعريب الصحيح غشاء البلازما للدول المستقلة حديثا-كان كمياً FPs شيكل-FP الدالة استخدام امتصاص radiotracer الممنوحة من الدول المستقلة حديثا (الشكل 2-2E) وأظهرت دالة شيكل و خصوصية. جدير بالذكر أن لا اختلافات كبيرة بين 4T1. شيكل إسرائيلي جديد-التجارة والنقل و 4T1. تم العثور على خطوط الخلايا إذ تعرب عن الدول المستقلة حديثا-طلب تقديم العروض مع مستويات مماثلة من التعبير شيكل (الشكل 2).

أثر كامل في المختبر توصيف خط الخلية، تم إعداد نماذج الورم مع خطوط خلايا السرطان يمكن تتبعها الذي تم إنشاؤه حديثا. على سبيل مثال، 4T1. شيكل إسرائيلي جديد-بروتينات فلورية خضراء الورم النموذجي، نموذجا لسرطان الثدي التحريضية، يظهر هنا (الشكل 3). في الحيوانات الحاملة للورم طولية الجسم كله الحيوانات الأليفة التصوير ثم على علم بتطور الورم بما في ذلك انتشار المنتشر (الشكل 3B). كان ضروريا لتصوير الحيوانات الأليفة radiotracer [18و] فرنك بلجيكي4– والطازجة المنتجة في الصباح من كل الحيوانات الأليفة التصوير الدورة. تم إجراء توليف من [18و] فرنك بلجيكي4– باستخدام الأسلوب ARS وصف. عادة، تستخدم كمدخل ~1.6 جبق 18و– وحصل ~ 244 BF مبق [18و]4– في 40.5±3.9 دقيقة (N = 17). تم تحليلها بواسطة الراديو طبقة رقيقة اللوني أو أيون اللوني المنتج وأظهرت درجة نقاء الكيمياء الإشعاعية من 94.7±1.4%. وكان العائد الكيمياء % 19.4±4.0 (تسوس تصحيح).

في اليوم 19 بعد التطعيم الورم، الورم الرئيسي وضوح استخدام الحيوانات الأليفة، ولكن العثور على لا الانبثاث. بعد عشرة أيام (يوم 29)، الفئران الحاملة للورم نفسه إعادة المصورة وحددت ورم خبيث البعيدة في مختلف المواقع في جميع الحيوانات (ورم خبيث في الرئة، ورم خبيث لمختلف الغدد الليمفاوية الاربية و/أو إبطي). المثال في الشكل 3 يبين ورم خبيث في الرئة واسعة النطاق مع العديد من العقيدات يمكن تحديدها بوضوح وقابلة للقياس في الرئة (الشكل 3B-3E). وعلاوة على ذلك، قدم الحيوان الإقليمية انتشار الورم في الجدار البريتوني فضلا عن ورم خبيث في الاربية وكلا الليمفاوية إبطي. تختلف قيم معرف % من الانبثاث الفردي في الرئة (رقم 3E) على نطاق واسع، ولكن ذلك لم وحدات التخزين المحتلة العقيدات المنتشر الكامنة. وفي المقابل، كانت القيم تطبيع حجم %ID/mL (رقم 3E) موحدة أكثر بكثير. وكان هذا مفهومة الانبثاث مختلف مراحل التنمية مماثلة (أي بين أيام 19 و 29؛ الشكل 3). على النقيض من ذلك، كانت قيمة %ID/mL طبيعية للورم الرئيسي أقل من تلك التي الانبثاث الرئة، وهو ما يتماشى مع كتلة ورم قد مزيد من الوقت لإحراز تقدم وإعادة تشكيلها بما في ذلك تدفق أنواع الخلايا الأخرى (الخلايا اللحمية والخلايا المناعية) ، لا سيما في هذا النموذج من سرطان الثدي التحريضية.

تسترشد بالصور في فيفو والأسفار من الخلايا السرطانية (مرئية أثناء تشريح الحيوان تحت الضوء الفلورية)، أجهزة عميقة الجذور الصغيرة مثل الليمفاوية موثوق حصادها، وفي الوقت نفسه، بتقييم للعقيدات سرطانية (المحتوى الشكل 4A). كان يدل على وجود ورم الخلية إشارة fluorescence أثناء تشريح الحيوان، فمن المهم لضمان هذا التصنيف كان يرافقه السابقين فيفو قياسات النشاط الإشعاعي للأنسجة المقطوع. يظهر الشكل 4B القيم الإقبال القياسي (سيارات الدفع الرباعي) الحصول على أنسجة مختلفة عبر مجموعة حيوانات الثلاثة، التي قدمت مع ورم خبيث. اندوجينوسلي شيكل-الإعراب عن أجهزة مثل الغدة الدرقية والغدد اللعابية (حصاد جنبا إلى جنب) أو المعدة أظهرت أيضا استيعاب radiotracer العالية المتوقعة. وعلاوة على ذلك، يسمح هذا النهج FP شيكل تحديد خلية السرطان مباشرة خلال الأنسجة (الشكل 4). أظهرت البيانات المثال الأنسجة الفلورة هذا ورم الأوعية الدموية في 4T1. نموذج الورم شيكل-التجارة والنقل. وأظهرت هذه البيانات أيضا أن المراسل شيكل-بروتينات فلورية خضراء يقيمون أساسا في الأغشية البلازمية للورم خلايا أيضا في فيفو (الشكل 4)، وبالتالي التحقق من صحة نتائج الإقبال.

Figure 1
رقم 1. مخطط تفاصيل إنشاء منصة توليف راديوتراسير الآلي للإنتاج [18و] فرنك بلجيكي4– عن طريق الأسلوب إضافة فلوريد ثلاثي الفلور-18--إلى--البورون- يتم طباعة أسماء الكاشف على أنابيب كل منهما في المخطط. كما هو الاختصار لتبادل شاردة أمونيوم رباعي، ويشير إلى المواد المستخدمة الفصل الكروماتوغرافي المرحلة الصلبة. وتتوفر تفاصيل إضافية في الجدولين 1 و 2. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 2
رقم 2. نتائج توصيف نموذجي لخطوط خلايا سرطان ستابلي يعبر عن الدول المستقلة حديثا-التجارة والنقل أو شيكل-طلب تقديم العروض. (أ) أجريت خطوط الخلايا المشار إليها باستخدام لينتيفيروسيس نقل شيكل-التجارة والنقل أو شيكل-طلب تقديم العروض. يوضح العمود الأيسر السكان ترانسدوسيد (الأخضر أو الأحمر نيون) بالمقارنة مع الخلايا الأبوية كل منهما (رمادي؛ 4T1 ونجمة داود الحمراء-ميغابايت-231 الخلايا، على التوالي). إظهار النسب المئوية كفاءة توصيل حسبما يقرره التدفق الخلوي. يظهر العمود الأيسر نتائج تدفق التحليلات سيتوميتريك بعد تنقية نظام مراقبة الأصول الميدانية للسكان مختلطة في العمود الأيسر. وتبين أن جميع خطوط الخلايا > 99 ٪ نقية لأشار إلى الخلايا معربا عن شيكل (عن طريق التدفق الخلوي). (ب) يبين الفحص المجهري الأسفار [كنفوكل] من خطوط الخلايا المنقي التعريب غشاء البلازما شيكل-التجارة والنقل أو شيكل-طلب تقديم العروض في خطوط الخلايا الخاصة بكل منها. وغ Alexa633 كعلامة غشاء البلازما. (ج، د) التحقق من الصحة الوظيفية من البروتين شيكل-FP المعرب عنها في رد حديثا إنشاء خطوط خلايا السرطان. وتم قياس الدالة شيكل استخدام radiotracer 99 mTcO4– (50 بيكيريل الواحدة ملايين الخلايا). واستخدمت خلايا الوالدين كعناصر تحكم، فضلا عن الانصهار مراسل تعرب عن الخلايا التي كانت تعامل مع بيركلورات الركازة المشارك شيكل قبل وأثناء الفحص (التحكم بخصوصية). النتائج تبين بوضوح وظيفة FP شيكل وخصوصية في جميع خطوط الخلايا. (ه) التحقق من الصحة الوظيفية من 4T1. شيكل إسرائيلي جديد-FP خطوط الخلايا استخدام [18و] فرنك بلجيكي4– راديوتراسير للدول المستقلة حديثا. وكانت جميع الشروط الأخرى مطابقة ل (ج). الأهم من ذلك، الإقبال النسبي مشابهة جداً تم الحصول على نتائج لكل خطوط الخلايا المشتقة من 4T1 مع كلا راديوتراسيرس (الشكل 2 وهاء)، وبالتالي تبرير استخدام للتبادل في المختبر التوصيف الوظيفي لكل من وإذ تعرب عن خطوط الخلايا FP شيكل. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 3
الشكل 3. الممثل نتيجة لورم خبيث تتبع طريق [18و] فرنك بلجيكي4–-PET/CT تصوير في ماوس واضعة 4T1. ورم شيكل-التجارة والنقل- (أ) 1 مليون 4T1. تم حقن الخلايا شيكل-التجارة والنقل في منصات الدهون الثديية من 5-6 أسابيع من العمر بالب/ج CanN.Cg-Foxn1نو/Crl الفئران وأعقب نمو الورم على مر الزمن باستخدام الفرجار. سبب fluorescence بروتينات فلورية خضراء من الخلايا السرطانية، كان تقييم الهوية البصرية الخام/النمو أيضا إمكانية استخدام شعلة الأسفار والنظارات مرشح مناسب (انظر الإطار الداخلي). (ب/يسار) كان وضوح الورم الرئيسي (خط أصفر متقطع) يوم 19 وظيفة ورم التطعيم، لكن لا ورم خبيث. الصورة المعروضة إسقاط أقصى شدتها (MIP) بصورة الحيوانات الأليفة. وسجلت أيضا إشارات شيكل الذاتية (واصفات الأبيض)، أي الغدة الدرقية والغدد اللعابية (Th + سان جرمان)، المعدة (S)، وكذلك، عند مستويات منخفضة جداً، بعض أجزاء الغدد الثديية ولاتشريمال. إشارة المثانة (ب) ينبع من إفراز الراسم. (ب/يمين) في يوم 29 وظيفة ورم التطعيم، ورم خبيث قد تحدد بوضوح: الانبثاث متعددة في الرئة (الخط المنقط صفراء)، فضلا عن العقد الليمفاوية المنتشر (إيلن، أكسلن؛ رؤوس الأسهم الصفراء). الصورة المعروضة هي MIP الصورة PET/CT. الورم الرئيسي (خط أصفر متقطع) نما ليس فقط في شكل كروي عند هذه النقطة الزمنية، ولكن أيضا قد غزت داخل الجدار البريتوني. (ج) تطبيق 3D تقنية العتبة أوتسو تمكين عرض سطح ثلاثي الأبعاد في الأنسجة السرطانية؛ وهذه يتم فرضه على MIP الحيوانات الأليفة. الانبثاث الرئة مبينة في العقد الليمفاوية إبطي أبيض، المنتشر باللون الأحمر، والعقدة الليمفاوية الاربية المنتشر باللون الأصفر، والورم الرئيسي التي غزت في الجدار البريتوني في عملية "توركواز". (د) صورة ضربة متابعة ل MIP PET/CT في (ب/يمين) للإشارة إلى الانبثاث الرئة الفردية. (ه) كمياً من الصور الثلاثية الأبعاد (معرف %) امتصاص راديوتراسير في الأنسجة السرطانية وتطبيعها بأحجامها كل منهما (%ID/mL). وتتوافق مع الانبثاث الرئة فردية الترقيم في (د). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 4
الشكل 4. من الأمثلة النموذجية على السابقين فيفو البيانات يمكن الوصول إليها من الفئران الحاملة للورم FP شيكل. (أ) أثناء الحصاد الأنسجة لتحليلات المصب، خصائص الخلايا السرطانية أعرب شيكل-FP الفلورسنت بمثابة مؤشر توجيه تشريح الحيوان. كالنماذج، الأنسجة من الحيوان في الشكل 3، يتم إظهار أي الرئة مع عدة آفات المنتشر واثنين الليمفاوية إيجابية. التصوير الصيفي كذلك تظهر الصور الفلورية. وقد اتخذت الصور الأسفار مع الكاميرا نفسها كالصور الصيفي ولكن تحت زرقاء خفيفة الإثارة (450±10 شمال البحر الأبيض المتوسط ممر الموجه مرشح) مع عامل تصفية انبعاثات خضراء (530±30 شمال البحر الأبيض المتوسط ممر الموجه مرشح) وضعت أمام عدسة الكاميرا. (ب) توزيع راديوتراسير في مختلف أجهزة الحيوانات مع 4T1 ('بيوديستريبوشن'). أورام شيكل-التجارة والنقل (N = 3؛ يوم 29 وظيفة ورم التطعيم 5 فرنك بلجيكي مبق [18و]4–). الإقبال القياسي تم حساب قيم (سيارات الدفع الرباعي) وقيم > 1 تشير إلى تراكم محددة من راديوتراسير في الأجهزة المعنية. تشير البيانات إلى امتصاص radiotracer محددة في الأنسجة السرطانية، أي الورم الرئيسي، العقد الليمفاوية المنتشر (كما تم تحديدها بالتصوير والتشريح تحت الفلورية الخفيفة)، والرئة (تم تشريح ككل دون فصل الانبثاث الفردي)، وكذلك الإعراب عن أجهزة اندوجينوسلي شيكل، أي الغدة الدرقية والغدد اللعابية والمعدة. (ج) الفلورة علم الأنسجة الورم الابتدائي من الماوس نفسه كما هو مبين في الشكل 3. الورم الرئيسي كان حصادها والمضمنة في أكتوبر والمجمدة قبل مقطعة (10 ميكرون) والمجهزة لتلطيخ. وحددت شيكل-التجارة والنقل وإذ تعرب عن الخلايا السرطانية مباشرة دون الحاجة إلى تلطيخ جسم. كانت ملطخة الأوعية الدموية بجسم أرنب ضد الماوس بيكم-1/CD31 (2 ميكروغرام/مل) وجسم ثانوية أرنب المضادة مترافق Cy5 ماعز. كانت الملون الأنوية مع 2'-(4-ethoxyphenyl)-5-(4-methyl-1-piperazinyl)-2,5'-Bi-1H-benzimidazole (1 ميكروغرام/مل) والعينة التي شنت في بولي (الكحول الفينيل-خلات الفينيل) التي تحتوي على 2.5% (w/v) دابكو أنتيفادي. تم الحصول على صور [كنفوكل] استخدام مجهر [كنفوكل] مع الإعدادات المناسبة ل 2'-(4-ethoxyphenyl)-5-(4-methyl-1-piperazinyl)-2,5'-Bi-1H-benzimidazole، Cy5 والتجارة والنقل. هذه البيانات المثال تبين بوضوح أنه في 4T1. هو vascularized الورم شيكل-التجارة والنقل ولكن أيضا تلك الأوعية الدموية يختلف في مداه (انظر الحافة العلوية اليسرى مع الوسط السفلي). ويظهر أيضا أن المراسل شيكل-التجارة والنقل يقيم غالباً في أغشية البلازما ورم الخلايا في فيفو (داخلي)، وبالتالي التحقق من صحة نتائج الإقبال في المختبر . الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

صمام فاستلاب المتعددة كاشف، والمذيبات، وخرطوشه أو أنابيب * تفاصيل
V1 أنابيب سيليكون إلى [18س] ح2س زجاجة النفايات 14 سم
V2 0.9 محلول كلوريد الصوديوم %، ميليلتر 750 قنينة 11 مم
V3 محقنة S1 1 مل
V4 انيون تبادل خرطوشة C1، قبل مكيفة مع كلوريد الصوديوم 1 م (10 مل) وح2س (10 مل) مثل سبتمبر-باك "أكسيلل بالإضافة إلى قما بالإضافة إلى الضوء" (المياه، ولجنة مناهضة التعذيب. لا. WAT023525)
V5 أنابيب سيليكون شاردة تبادل خرطوشة C1 14 سم
V6 [18س] ح2س/18و مدخل الخزان ماكس 5 مل
V7 أنابيب سيليكون للسفينة المفاعل (الجانب الأيسر؛ مدخل الغاز) 14 سم
V8 أنابيب سيليكون لمفاعل السفينة (ميناء المركزية؛ ومدخل/مخرج السائل) 14 سم
V9 مغلقة
V10 مغلقة
V11 محقنة S2 5 مل
V12 15-التاج-5, 46 ملغ في 800 ميليلتر ميكن قنينة 11 مم
V13 تريفلوروبوراتي ثنائي إثيل اثيراتي، ميليلتر 0.14 في 850 ميليلتر ميكن (تمييع ميليلتر 14 فرنك بلجيكي3. OEt2 مع 1 مل ميكن. تمييع 10 ميليلتر لهذا الحل إلى 850 ميليلتر مع ميكن). قنينة 13 مم
V14 0.9 محلول كلوريد الصوديوم %، 1 مل قنينة 13 مم
V15 سبايك كيس المياه
V16 الاسيتو الانيتريل (ميكن)، 1.5 مل قنينة 13 مم
V17 سيليكون أنابيب لشركة ألومينا محايدة خرطوشة C2 14 سم
V18 شركة ألومينا محايدة خرطوشة C2، قبل مكيفة مع ح2س (10 مل)، الأسيتون (10 مل) والهواء (20 مل) مثل سبتمبر-باك "الألومينا N بالإضافة إلى الضوء" (المياه، ولجنة مناهضة التعذيب. لا. WAT023561)
V19 أنابيب سيليكون شاردة تبادل خرطوشة C3 14 سم
V20 انيون تبادل خرطوشة C3، قبل مكيفة مع كلوريد الصوديوم 1 م (10 مل) وح2س (10 مل) مثل سبتمبر-باك "أكسل بالإضافة إلى ذلك كما بالإضافة إلى الضوء" (المياه، ولجنة مناهضة التعذيب. لا. WAT023525)
V21 أنابيب سيليكون لجمع قنينة 40 سم
V22 مغلقة
V23 مغلقة
V24 S3 حقنه 5 مل
V25 أنابيب سيليكون للسفينة المفاعل (الجانب الأيمن؛ وميناء التفريغ) 40 سم
* ملاحظة: بسبب المسامير البلاستيكية، حجم القتلى للقنينات 11 مم وقنينات 13 مم حوالي 0.35 مل و 0.4 مل، على التوالي. ولذلك، المبالغ الفعلية من الكواشف التي نقلت إلى المفاعل تكون مختلفة قليلاً. كافة الكميات المشار إليها في هذا الأسلوب يشير إلى المبالغ الفعلية التي أدخل في كل قنينة كاشف.

الجدول 1. وصف تخطيط كاسيت لتوليف4– فرنك بلجيكي الآلي [18و] عن طريق الأسلوب إضافة الفلور-18--إلى--البورون فلوريد ثلاثي (انظر الشكل 1).

تسلسل الخطوات التعليق
[1-2] ممارسة الضغط على النظام ومسح المتشعبة مع N2
[3-15] شطف حقنه S3 مرتين مع ح2س (V15)، تدفق المتشعبة مع N2
[16-23] ممارسة الضغط على القنينات الكاشف في مواقف V16, V14, V13 و V12، بيغ المتشعبة مع N2 بين كل قنينة
[24-26] فتح مدخل النشاط (V6)
الاتصال القنينة التي تحتوي على 18f. إذا كان الحجم الإجمالي > 5 مل، فقط أدخل الإبرة في منتصف الطريق في القنينة قبل المتابعة.
[27-39] إغلاق مدخل النشاط (V6)، فخ 18و في خرطوشة كما C1 (V5)، جمع [18س] ح2س في زجاجة النفايات (V1). إذا كان الحجم الإجمالي > 5 مل، وقفه بالتسلسل في خطوة 37، أرجع إلى الخطوة 26، أدخل الإبرة بالكامل في القنينة التي تحتوي على 18و، واستئناف العملية.
[40] إغلاق ح [18س] نفايات الزجاجة2س (V1)، ومسح المتشعبة مع N2
[41] ممارسة الضغط على القنينة الوينت في موقف V2
[42-44] فتح صمام مفاعل V8، نضح الوينت من V2 في محقن S1
[45-50] الوتي قما خرطوشة C1 إلى المفاعل (V8) باستخدام المياه المالحة من المحاقن S1، وضبط درجة حرارة المفاعل إلى 90 درجة مئوية
[51] مسح خرطوشة كما C1 مع ن2 وزيادة درجة حرارة المفاعل إلى 105 درجة مئوية
[52-53] رسم الاسيتو الانيتريل من V16 في محقن S2
[54-57] نقل الاسيتو الانيتريل من المحاقن S2 إلى المفاعل (V8)
[58-60] حرارة المفاعل في 120 درجة مئوية للحد الأدنى 5 Evaporate المذيب مع تدفق ن2 للمفاعل (V7).
[61-65] تعيين درجة حرارة 105 مئوية، حقنه جافة S1 مع N2
[66-69] رسم الحل 15-التاج-5 من V13 في محقن S2، وزيادة درجة حرارة المفاعل إلى 120 درجة مئوية
[70-71] خفض درجة الحرارة إلى 105 درجة مئوية، دافق المتشعبة مع N2
[72] تبريد المفاعل (مجموعة درجة الحرارة إلى 40 درجة مئوية) لمدة 5 دقائق
[73-78] ضبط درجة حرارة المفاعل إلى 80 درجة مئوية، أو نقل الحل 15-التاج-5 من المحاقن S2 للمفاعل (V8)
[79-81] رسم BF3. حل2 OEt من V14 في محقن S2
[82-87] تحويل فرنك بلجيكي3. حل2 OEt من المحاقن S2 للمفاعل (V8)، مسح السطر المفاعل مع N2
[88] مسح المتشعبة مع N2
[89] رد فعل لمدة 5 دقائق، اسمحوا حرارة العودة إلى RT
[90-95] نقل الخليط رد فعل (V8) بحقنه S2
[96-104] تمرير الخليط رد فعل عن طريق "ن الألومينا" خرطوشة C2، في محقن S3
[105] مسح المتشعبة مع N2
[106-109] العودة الخليط رد فعل لحقنه S2
[110-112] إفراغ حقنه S3، رسم ح2س (V15) في محقن S2 تمييع الخليط رد فعل
[113-115] تحميل الخليط رد فعل على خرطوشة كما C3
[116-118] رسم ح2س (V15) في محقن S2
[119-124] شطف المفاعل (V8) مع ح2س من المحاقن S2، نضح الغسالات في محقن S2
[125-128] تمرير الغسالات خلال خراطيش C2 و C3
[129-130] الجاف الخراطيش والمتشعبة مع N2
[131-136] حقنه تغسل S1 مع ح2س (V15)
[137-142] حقنه تغسل S2 مع ح2س (V15)
[143] مسح المتشعبة مع N2
[144-147] رسم ح2س (V15) في محقن S2
[148-151] مسح كما خرطوشة C3 مع ح2س من المحاقن S2
[152-153] جاف كما خرطوشة C3 مع ن2 ومسح المتشعبة مع N2
[154-157] الوت كما خرطوشة C3 مع 0.9% كلوريد الصوديوم (V14) في محقن S3
[158-161] نقل المنتج من المحاقن S3 إلى القنينة جمع (V21)
[162-163] كما تدفق خرطوشة C3 مع ن2 إلى القنينة جمع (V21)
[164-166] مسح المتشعبة مع N2
[167-170] مسح خراطيش C2 و C3 (النفايات زجاجة) والمتشعبة مع N2
[171] تدفق أنابيب جمع (V21) مع N2

الجدول 2. وصف الخطوات في ملف التسلسل XML.

Discussion

الكتاب يعلن أن لديهم لا تضارب المصالح المالية.

Disclosures

يمكننا وصف بروتوكول لتتبع الإكلينيكية في فيفو من سرطان خبيث. أنه يستند إلى مراسل النويدات مشعة-الأسفار الجمع بين سيمبورتير يوديد الصوديوم، الكشف عنها بواسطة غير الغازية [18و] رباعي فلوروبورات-الحيوانات الأليفة، وبروتين فلوري لتبسيط السابقين فيفو تأكيد. الأسلوب الواجب التطبيق السريري في فيفو خلية تتبع وراء ورم علم الأحياء.

Acknowledgements

وأيده البحث كلية لندن للملك و UCL المركز الشامل للسرطان التصوير، تموله المملكة المتحدة "لأبحاث السرطان" و EPSRC بالاشتراك مع لجنة نهر الميكونج ووزارة الصحة (إنكلترا)؛ المعهد الوطني للبحوث الصحية (NIHR) "مركز البحوث الطبية الحيوية" في الرجل وسانت توماس دائرة الصحة الوطنية مؤسسة الثقة وكوليدج لندن كينغز؛ مركز الامتياز في "الهندسة الطبية" الممولة من مؤسسة ويلكوم ترست و EPSRC تحت منحة رقم WT 088641/Z/09/Z؛ السرطان بحوث المملكة المتحدة متعددة التخصصات إرساء المشروع لصندوق القناص وبجب، والملك "شركاء الصحة" منحة لصندوق القناص. الماسحات الضوئية نانوبيت/CT ونانوسبيكت/CT تم شراؤها والتي تحتفظ بها على منحة معدات من مؤسسة ويلكوم ترست. الآراء التي أعرب عنها هي آراء المؤلفين وليس بالضرورة تلك المستشفيات العامة، وفي NIHR، أو وزارة الصحة.

Materials

متاح متاح محلول نظام تصوير الخلايا ثلاثي محاقن < Cy5 AffiniPure Goat المضادة للأرانب IgG (H + L) Jackson / Stratech 111-175-144 تستخدم في 1: 500 (2 & micro;مجهر
<قوي>الخطوة 1) هندسة وتوصيف الخلايا السرطانية للتعبير عن مراسل اندماج النويدات المشعة-الفلوريسكنيس NIS-FP.
2'-(4-ethoxyphenyl)-5-(4-methyl-1-piperazinyl)-2،5'-Bi-1H-benzimidazoleThermo ScientificH3570اسم تافه: Hoechst 33342; رقم سجل المستخلصات الكيميائية: 23491-52-3 ؛ Hoechst 33342 ، ثلاثي هيدروكلوريد ، ثلاثي الهيدرات - محلول 10 مجم / مل في الماء.
4T1 خط خلايا سرطان الثدي الفئرانATCCCRl-2539للحصول على التفاصيل ، راجع موقع ATCC
التلقائي عداد الخلايا ، على سبيل المثال CASYCounterRoche Diagnostics GmbH5651697001CASY Model TT Cell Counter and Analyzer
CASYclean Cleaning ReagentSedna Scientific2501036
CASYton IsotonicSedna Scientific2501037
مجهر مضان متحد البؤر ، <م > على سبيل المثال < / م > Leica TCS SP5Leica ، Wetzlar ، ألمانيامجهزة ب Plan-Neofluor 25 & times ؛ 0.5NA و Plan-Apochromat 63 & مرة ؛ 1.4NA أهداف الأشعة فوق البنفسجية للنفط والصمام الثنائي (405 نانومتر) وأرجون-أيون (458 ، 477 ، 488 ، 496 ، 514 نانومتر) وليزر HeNe (543 و 633 نانومتر) ؛ تم استخدام برنامج Leica LAS AF Lite 4.0.11706 (Leica Microsystems CMS GmbH) للحصول على الصور وزلات غطاء التحليلات
رقم 1.5 سمكVWR International631-0150
DabcoSigma290734Stock 125 mg / mL
DMEMSigmaD5546Supplement مع 10٪ (حجم / حجم) FBS و L< / em>-glutamine (2 ملليمتر) لتشكيل وسط النمو الأمثل لخلايا MDA-MB-231.
فارز FACS ، على سبيل المثال BD FACSAria III   ؛BD Biosciencesمجهزة ببرنامج BD FAC Diva ، ونظام 6 ليزر (375/405/488/561/633 نانومتر ليزر) - خلايا مرتبة باستخدام 100 & mu ؛ فوهة M تحت ضغط تدفق 20 رطل لكل بوصة مربعة ، تمديد النافذة 2.0 و مو ؛ م ، 2.0 مرشح الكثافة المحايدة و 3 كيلو فولت جهد لوحة
مصل الأبقار الجنيني (FBS) سيجماF9665الحرارة معطلة عند 56 درجة ؛ C لمدة 30 دقيقة
عداد جاما الآلي ، على سبيل المثال 1282 CompugammaLKB Wallac Laboratory99mTc-pertechnetate نافذة الطاقة 110-155 keV                      نافذة طاقة 18F 175-220 keV
Hoechst 33342 حلLife TechnologiesH13991-3 & micro ؛ جم / مل ؛ يمكن استخدام DAPI (من موردين مختلفين) بدلا من ذلك.
L-glutamineSigmaG7513Solution 200 mM مركز ، مفلتر
معقم بولي إيثيلينيمين خطي (PEI) Polyscience23966-2خطي ، 25 كيلو دالتون ؛ كاشف تعداء لخط خلية 293T.
MDA-MB-231 خلايا سرطان الثدي البشريةATCCHTB-26للحصول على التفاصيل ، انظر موقع ATCC
Mowiol 4-88Sigma81381
pLNT SFFV NIS-mEGFPطلب من مختبرناغيرللحصول على التفاصيل (التوليد والخرائط) راجع المعلومات التكميلية
طلب pLNT SFFV NIS-mCherryمن مختبرناغيرللحصول على التفاصيل (التوليد والخرائط) انظر المعلومات التكميلية
pMD2.GAddgene # 12259بلازميدات ترميز لمغلف VSV-G
pRREAddgene # 12251التعبئة والتغليف البلازميد
pRSV-RevAddgene # 12253محلول البلازميد التعبئة
والتغليف Paraformaldehyde 4٪ (وزن / حجم) في PBSSanta Cruz Biotechnologysc-281692
Penicillin-StreptomycinSigmaP43330يحتوي على البنسلين (10,000 وحدة / مل) والستربتومايسين (10 مجم / مل) ،
ملحي معقم مفلتر بالفوسفات (PBS) سيجماD8537درجة الحموضة 7.4 ، مفلتر معقم وبدون كلوريد الكالسيوم وكلوريد المغنيسيوم
بولي (كحول الفينيل - أسيتات الفينيل) Polysciences17951اسم تافه: Mowiol 4-88 ؛ رقم سجل المستخلصات الكيميائية: 9002-89-5
Puromycin dihydrochlorideSigmaP8833من Streptomyces alboniger< / em> ، أعيد تشكيله في ماء معقم   ؛
جهاز طرد مركزي على الطاولة ، على سبيل المثال جهاز الطرد المركزي Rotina 380 R BenchtopHettich Lab Technology
RPMI 1640SigmaR0883مع 10٪ (حجم / حجم) FBS و L< / em>-glutamine (2 ملليمتر) لتشكيل وسط النمو الأمثل لخلايا 4T1.
مرشح حقنة SFCA 0.45 & mu ؛ ممحاقن كورنينج
10 ملBD Emeraldمحاقن غير معقمة يمكن التخلص
منها مجهر مضان لثقافة الأنسجة ، على سبيل المثال EVOS-FL & nbsp ؛في Life Technologiesمجهز بهدف 10 مرات (PlanFL PH2 ، 10 مرات ؛ / 0.25 ، &infin ؛ / 1.2) وكاميرا ملونة
Trypsin-EDTA حل 10X & nbsp ؛سيجما59418C (0.5٪ (وزن / حجم) التربسين ، 0.2٪ (وزن / حجم) EDTA) جاما مشعة بعملية SER-TAIN وبدون فينول أحمر   ؛
جنين القمح Agglutinin Alexa Fluor 633 Conrupgate لايف تكنولوجيز W21404مستخدم في 1: 1000 (2 & micro ؛ جم / مل) للتألق المناعي
للخلية<قوي>الخطوة 2) إنشاء نماذج الورم in vivo< / em>.< / strong>
Digital الفرجارالعالمية أدواتالدقة 501601
الأيزوفلوران 1000 مجم / جمIsocareلاستنشاق
شعلة التألق ، على سبيل المثال NightSea Fluorescence Torch DFP-1علوم المجهر الإلكترونيSFA-LFS-RBS / GRمجهزة بمرشحات انبعاث GFP و RFP ونظارات مرشح NightSea (DFP-1)
محاقن 0.3 مل أنسولين U-100Terumo29G & مرات ؛ 1/2 '' - 0.33 & مرات ؛ 12 مم
المواد / المعدات القياسية لتقنية التعقيم وصيانة
<قوي>الخطوة 3) إنتاج [18< / sup>F] BF4< / sub>-< / sup> باستخدام منصة توليف التتبع الإشعاعي الآلية.< / strong>
15-crown-5سيجما ألدريتش188832CAS 33100-27-5
أسيتونيتريل (لا مائي) أكروس أورجانيكس326811000
فلوريد البورون ثنائي إيثيل إيثراتسيجما ألدريتش216607BF3. OEt2،< / sub> منقى عن طريق إعادة التقطير ، & ge ؛ 46.5٪ BF3< / sub> الأساس. CAS 109-63-7
منصة التوليف الراديوي الآلي (ARS) ، على سبيل المثال أشرطة FASTLabGE Healthcare
التي يمكن التخلص منها لمنصة ARS ، على سبيل المثال أشرطة FASTLabحزمة مطور GE HealthcareFASTlab حزمة مطور
Polygram Alox N / UV254 ألواحبوليستر Macherey-Nagel802021لوحات RadioTLC ، 40 مرة.
خرطوشة تبادل أنيون قوية مقاس 80 مم ، على سبيل المثال Sep-Pak Accell Plus QMA PlusLight WatersWAT023525حالة مع 1M كلوريد الصوديوم (10 مل) و H2O (10 مل)
خرطوشة الألومينا المحايدة ، على سبيل المثال Sep-Pak Alumina N Plus LightWatersWAT023561Condition مع H2< / sub>O (10 مل) ، الأسيتون (10 مل) والهواء (20 مل)
مياه للحقن USPGE Healthcare
Nitrogen فلترMilliporeSE2M049I05معقم 0.2 & مايكرو; م FG Millex 13 مم
<قوي>الخطوة 4) In vivo< / em> تصوير الخلايا الشفبرة عن NIS-FP بواسطة nanoPET / CT.< / strong>
Isoflurane 1000 مجم / جمIsocareلاستنشاق
أداة التصوير متعدد الوسائط قبل السريرية PET / CT ، على سبيل المثال nanoScan PET / CTMediso Medical Imaging System ، بودابست ، المجر
شعلة التألق ، على سبيل المثال NightSea Fluorescence Torch DFP-1علوم المجهر الإلكترونيSFA-LFS-RBS / GRمجهزة بمرشحات انبعاث GFP و RFP ونظارات مرشح NightSea (DFP-1)
غرفة تحريض تخدير القوارضVet-TechAN010Rمع صمامات ثلاثية الاتجاهات (x2) ، موصل تثبيت الأنبوب للمدخل ، أنابيب PVC لمدخل الغاز (2 متر) وأنبوب كشف 22 مم (2 م)
نظام تخدير القوارضVet-TechAN001Bبما في ذلك قناع وجه بحجم مناسب للحيوانات ذات الأهمية ومبخر إيسولفلوران
BO0334B فسيولوجية معقمةThermo Scientific Oxoid
0.3 مل أنسولين U-100Terumo29G & مرات ؛ 1/2 '' - 0.33 & مرات ؛ 12 مم ، للحقن الوريدي للتتبع الإشعاعي
Veterinary ScavengerVet-TechAN200VetScav آلية وزن المرشح - 240 فولت مع تعويض تلقائي لدرجة الحرارة ونظام LED
5) In vivo< / em> data analysis.
Tera-Tomo Monte Carlo المستندة إلى خوارزمية تكرارية ثلاثية الأبعادكاملة Mediso Medical Imaging System ، بودابست ، المجر
VivoQuant SoftwareInvicro LLC. ، بوسطن ، الولايات المتحدة الأمريكية
strong>6) Ex vivo< / em> تحليلات< / قوي>
2- ميثيل بوتان  سيجما59070-1L-Dمبرد مسبقا فوق النيتروجين السائل لتجميد الأنسجة المضمنة في OCT
ألبومين مصل الأبقار (BSA) Sigma85040C
غطاء ينزلق 22 مرة ؛ 50 ممVWR InternationalSMITMCQ211022X50
Cryostat ، على سبيل المثالآلة تضمين الأنسجة المعيارية المكونة من قطعتين من Cryostat MNT SLEE المجهزة بوحدة تضمين وحجرة تخزين الأنسجة ولوحة باردة
جم / مل)
مخزون DabcoSigma290734 125 مجم / مل
شفرات Microtome ، على سبيل المثال Feather S35   ؛CellPath
Fluorescence (مجال واسع أو كونفوكال) ، على سبيل المثال نيكون Eclipse Ti-E مقلوب مجهرمضان نيكونمجهز ب 10 مرات ؛ 20 مرة ؛ (الهواء) وبشكل مثالي 40 مرة. أهداف (الزيت) والليزر / المرشحات أو مكعبات الترشيح ، على التوالي ، المناسبة ل Hoechst 33342 و GFP و Cy5
Automated Gamma Counter ، على سبيل المثال 1282 CompugammaLKB Wallac Laboratory99m< / sup>Tc-pertechnetate نافذة الطاقة 110-155 كيلو فولت ، نافذة الطاقة 18F 175-220 كيلو فولت
Hoechst 33342 حلLife TechnologiesH1399
محول مضان لتشريح المجهر ، على سبيل المثال محول NightSeaElectron Microscopy SciencesSFA-LFS-RBS / GRمجهزة بمرشحات انبعاث GFP و RFP
مركب O.C.T. &�nbsp ؛VWR الدولي361603E
قلم الشمع ، على سبيل المثال PAP-PENDako UK Ltdقلم شمع للرسم حول قسم الأنسجة لتقليل أحجام محلول التلوين / الغسيل المطلوبة
محلول Paraformaldehyde 4٪ (وزن / حجم) في PBSSanta Cruz Biotechnologysc-281692
Rabbit anti-CD31Abcamab28364Polyclonal anti-Mouse used 1:50 (20 & micro; جم / مل) لشرائح المجهر المناعي للأنسجة
، على سبيل المثال شرائح SuperfrostVWR و Lutterworth و UK
Tris-buffered Saline (TBS) متوفرة من مختلف الموردين.محلول ملحي مخزن ثلاثي الأبعاد ؛ 150 ملي كلوريد الصوديوم ، 25 ملي تريس / حمض الهيدروكلوريك عند درجة الحموضة 7.4

References

  1. Chaffer, C. L., Weinberg, R. A. A perspective on cancer cell metastasis. Science. 331 (6024), 1559-1564 (2011).
  2. Brader, P., Serganova, I., Blasberg, R. G. Noninvasive molecular imaging using reporter genes. J Nucl Med. 54 (2), 167-172 (2013).
  3. Fruhwirth, G. O., Diocou, S., Blower, P. J., Ng, T., Mullen, G. E. A whole-body dual-modality radionuclide optical strategy for preclinical imaging of metastasis and heterogeneous treatment response in different microenvironments. J Nucl Med. 55 (4), 686-694 (2014).
  4. Terrovitis, J., et al. Ectopic expression of the sodium-iodide symporter enables imaging of transplanted cardiac stem cells in vivo by single-photon emission computed tomography or positron emission tomography. J Am Coll Cardiol. 52 (20), 1652-1660 (2008).
  5. Seo, J. H., et al. Trafficking Macrophage Migration Using Reporter Gene Imaging with Human Sodium Iodide Symporter in Animal Models of Inflammation. J Nucl Med. 51 (10), 1637-1643 (2010).
  6. Diocou, S., et al. [18F]tetrafluoroborate-PET/CT enables sensitive tumor and metastasis in vivo imaging in a sodium iodide symporter-expressing tumor model. Scientific Reports. 7 (1), 946 (2017).
  7. Lajtos, I., et al. Cold wall effect eliminating method to determine the contrast recovery coefficient for small animal PET scanners using the NEMA NU-4 image quality phantom. Phys Med Biol. 59 (11), 2727-2746 (2014).
  8. Nagy, K., et al. Performance evaluation of the small-animal nanoScan PET/MRI system. J Nucl Med. 54 (10), 1825-1832 (2013).
  9. Deleye, S., et al. Performance evaluation of small-animal multipinhole muSPECT scanners for mouse imaging. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 40 (5), 744-758 (2013).
  10. Portulano, C., Paroder-Belenitsky, M., Carrasco, N. The Na+/I- symporter (NIS): mechanism and medical impact. Endocr Rev. 35 (1), 106-149 (2014).
  11. Dohan, O., et al. The sodium/iodide Symporter (NIS): characterization, regulation, and medical significance. Endocr Rev. 24 (1), 48-77 (2003).
  12. Jauregui-Osoro, M., et al. Synthesis and biological evaluation of [F-18]tetrafluoroborate: a PET imaging agent for thyroid disease and reporter gene imaging of the sodium/iodide symporter. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 37 (11), 2108-2116 (2010).
  13. Weeks, A. J., et al. Evaluation of [18F]-tetrafluoroborate as a potential PET imaging agent for the human sodium/iodide symporter in a new colon carcinoma cell line, HCT116, expressing hNIS. Nucl Med Commun. 32 (2), 98-105 (2011).
  14. Khoshnevisan, A., et al. [(18)F]tetrafluoroborate as a PET tracer for the sodium/iodide symporter: the importance of specific activity. EJNMMI Res. 6 (1), 34 (2016).
  15. Groot-Wassink, T., et al. Noninvasive imaging of the transcriptional activities of human telomerase promoter fragments in mice. Cancer Res. 64 (14), 4906-4911 (2004).
  16. Chen, L., et al. Radioiodine therapy of hepatoma using targeted transfer of the human sodium/iodide symporter gene. J Nucl Med. 47 (5), 854-862 (2006).
  17. Sieger, S., et al. Tumour-specific activation of the sodium/iodide symporter gene under control of the glucose transporter gene 1 promoter (GTI-1.3). Eur J Nucl Med Mol Imaging. 30 (5), 748-756 (2003).
  18. Chisholm, E. J., et al. Cancer-specific transgene expression mediated by systemic injection of nanoparticles. Cancer Res. 69 (6), 2655-2662 (2009).
  19. Klutz, K., et al. Targeted radioiodine therapy of neuroblastoma tumors following systemic nonviral delivery of the sodium iodide symporter gene. Clin Cancer Res. 15 (19), 6079-6086 (2009).
  20. Merron, A., et al. Assessment of the Na/I symporter as a reporter gene to visualize oncolytic adenovirus propagation in peritoneal tumours. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 37 (7), 1377-1385 (2010).
  21. Merron, A., et al. SPECT/CT imaging of oncolytic adenovirus propagation in tumours in vivo using the Na/I symporter as a reporter gene. Gene Ther. 14 (24), 1731-1738 (2007).
  22. Dingli, D., et al. Combined I-124 positron emission tomography/computed tomography imaging of NIS gene expression in animal models of stably transfected and intravenously transfected tumor. Mol Imaging Biol. 8 (1), 16-23 (2006).
  23. Carlson, S. K., et al. Quantitative molecular imaging of viral therapy for pancreatic cancer using an engineered measles virus expressing the sodium-iodide symporter reporter gene. AJR Am J Roentgenol. 192 (1), 279-287 (2009).
  24. Barton, K. N., et al. GENIS: gene expression of sodium iodide symporter for noninvasive imaging of gene therapy vectors and quantification of gene expression in vivo. Mol Ther. 8 (3), 508-518 (2003).
  25. Siddiqui, F., et al. Design considerations for incorporating sodium iodide symporter reporter gene imaging into prostate cancer gene therapy trials. Hum Gene Ther. 18 (4), 312-322 (2007).
  26. Rad, A. M., et al. AC133+ progenitor cells as gene delivery vehicle and cellular probe in subcutaneous tumor models: a preliminary study. BMC Biotechnol. 9, 28 (2009).
  27. Hwang do, W., et al. Noninvasive in vivo monitoring of neuronal differentiation using reporter driven by a neuronal promoter. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 35 (1), 135-145 (2008).
  28. Edmonds, S., et al. Exploiting the Metal-Chelating Properties of the Drug Cargo for In Vivo Positron Emission Tomography Imaging of Liposomal Nanomedicines. ACS Nano. 10 (11), 10294-10307 (2016).
  29. Zhang, R., et al. Probing the Heterogeneity of Protein Kinase Activation in Cells by Super-resolution Microscopy. ACS Nano. 11 (1), 249-257 (2017).
  30. Dunn, K. W., Kamocka, M. M., McDonald, J. H. A practical guide to evaluating colocalization in biological microscopy. Am J Physiol Cell Physiol. 300 (4), C723-C742 (2011).
  31. Pulaski, B. A., Ostrand-Rosenberg, S. Mouse 4T1 breast tumor model. Curr Protoc Immunol. , (2001).
  32. Workman, P., et al. Guidelines for the welfare and use of animals in cancer research. Br J Cancer. 102 (11), 1555-1577 (2010).
  33. Foster, B., Bagci, U., Mansoor, A., Xu, Z., Mollura, D. J. A review on segmentation of positron emission tomography images. Comput Biol Med. 50, 76-96 (2014).
  34. Otsu, N. A Threshold Selection Method from Gray-Level Histograms. IEEE Transactions on Systems, Man, and Cybernetics. 9 (1), 62-66 (1979).
  35. Kinahan, P. E., Fletcher, J. W. Positron emission tomography-computed tomography standardized uptake values in clinical practice and assessing response to therapy. Semin Ultrasound CT MR. 31 (6), 496-505 (2010).
  36. Zacharias, D. A., Violin, J. D., Newton, A. C., Tsien, R. Y. Partitioning of lipid-modified monomeric GFPs into membrane microdomains of live cells. Science. 296 (5569), 913-916 (2002).
  37. Snapp, E. L., et al. Formation of stacked ER cisternae by low affinity protein interactions. J Cell Biol. 163 (2), 257-269 (2003).
  38. Yang, H., et al. One-step generation of mice carrying reporter and conditional alleles by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 154 (6), 1370-1379 (2013).
  39. Hume, S. P., Gunn, R. N., Jones, T. Pharmacological constraints associated with positron emission tomographic scanning of small laboratory animals. Eur J Nucl Med. 25 (2), 173-176 (1998).
  40. O'Doherty, J., et al. 18F-Tetrafluoroborate, a PET Probe for Imaging Sodium/Iodide Symporter Expression: Whole-Body Biodistribution, Safety, and Radiation Dosimetry in Thyroid Cancer Patients. J Nucl Med. 58 (10), 1666-1671 (2017).
  41. Couzin-Frankel, J. Breakthrough of the year 2013. Cancer immunotherapy. Science. 342 (6165), 1432-1433 (2013).
  42. Boardman, D. A., et al. Expression of a Chimeric Antigen Receptor Specific for Donor HLA Class I Enhances the Potency of Human Regulatory T Cells in Preventing Human Skin Transplant Rejection. American Journal of Transplantation. , (2017).
  43. Rashid, T., Takebe, T., Nakauchi, H. Novel strategies for liver therapy using stem cells. Gut. 64 (1), 1-4 (2015).
  44. Ellison, G. M., et al. Adult c-kit(pos) cardiac stem cells are necessary and sufficient for functional cardiac regeneration and repair. Cell. 154 (4), 827-842 (2013).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

الجينات مراسل fluorescence النويدات المشعة التصوير لتتبع تطور الورم في نماذج القوارض الورم
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code