أكتوبر 22, 2010
نقدم بروتوكول لانتاج المستضد محددة الماوس T - تنبيغ الخلايا باستخدام فيروسات
الهدف من هذا الإجراء هو التعبير عن مستقبلات الخلايا التائية الخاصة بالمستضد الوظيفي على الخلايا التائية للفأر. أولا ، قم بنقل خط خلية منتجة للفيروسات القهقرية مع البلازميد الذي يحتوي على جين TCR ذي الأهمية لتعبئة TCR الذي يعبر عن الفيروس القهقري. بعد ذلك ، عزل وتنقية الخلايا التائية من طحال الفأر يصيب هذه الخلايا التائية المنقاة بالفيروس القهقري المنتج في الخطوة الأولى.
أخيرا ، قم بتوسيع الخلايا التائية المنقولة للتعبير عن مستويات ملحوظة من المستقبلات والحصول عليها. في النهاية ، يمكن الحصول على نتائج تظهر التعبير عن TCRs الخاصة بالمستضد الوظيفي على الخلايا التائية للفأر من خلال قياس التدفق الخلوي. مرحبا ، اسمي ميشيل كرو جارد.
أنا في معهد السرطان بجامعة نيويورك في كلية الطب بجامعة نيويورك. سنوضح لكم اليوم كيفية تحويل الخلايا التائية الأولية ، الأشخاص الذين سيوضحون لك كيفية القيام بذلك سيكونون شيونغ ، باحثة ما بعد الدكتوراه في المختبر ، كالينا ميليك ، طالبة دراسات عليا في المختبر ، وأريان بيريز جارسيا ، باحثة ما بعد الدكتوراه في المختبر. الميزة الرئيسية لهذه التقنية على الطريقة الحالية مثل الفئران المعدلة وراثيا هي أنها تستغرق وقتا أقل بكثير.
يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة المناعية الرئيسية مثل TCR التي يمكن أن تعطي استجابة أفضل ضد المستضدات. يمكن تطبيق هذه التقنية على العلاج بالتبني لنقل الخلايا التائية ، والذي ثبت أنه واعد لعلاج مرضى السرطان ويتكون من التعديل في المختبر للخلايا التائية البشرية لضمان التعبير المتساوي لمستقبلات الخلايا التائية ألفا وسلاسل بيتا. استنساخ الجين محل الاهتمام في نفس ناقل الفيروسات القهقرية تحت سيطرة نفس المروج.
قم بإعداد الحمض النووي للبلازما عالي الجودة باستخدام مجموعة Kyogen Maxi الإعدادية وقم بعمل مخزون من ميكروغرام واحد لكل ميكرولتر. قم بإزالة الوسائط من اللوحة باستخدام خلايا تغليف الفيروسات القهقرية البلاتينية E واغسل اللوحة مرة واحدة باستخدام XPBS واحد. قم بإزاحة الخلايا عن طريق إضافة التربسين EDTA واحتضانها عند 37 درجة مئوية لبضع دقائق.
قم بتحييد الخلايا المخلوطة باستخدام وسائط DMEM ونقلها إلى أنبوب الصقر. بعد ذلك ، قم بالطرد المركزي للخلايا عند 1000 مرة G لمدة خمس دقائق. استنشق الحبيبات وإعادة تعليق الحبيبات الخلية في وسائط DMEM.
حدد عدد الخلية وقم بتخفيف الخلايا بمعدل 0.6 في 10 إلى ستة لكل مليلتر. 10 ملليلتر من تعليق الخلية في صفيحة زراعة الأنسجة المطلية بالبولي ليسين 10 ملم وتنمو بين عشية وضحاها في حاضنة خلية عند 37 درجة مئوية في 5٪ ثاني أكسيد الكربون. في صباح اليوم التالي ، افحص الخلايا تحت المجهر الضوئي للتحقق من الطلاقة المشتركة بنسبة 80٪ تقريبا.
قم بإزالة الوسائط برفق من اللوحة. اغسل الخلايا مرة واحدة باستخدام XPBS واحد وأضف 10 مل من وسائط DMEM الطازجة الدافئة مسبقا بدون البنسلين أو الستربتومايسين. بالنسبة لمركب تعداء الشفاه ، قم بإعداد مزيجين وقم بتحسين ME M1 من الحمض النووي والآخر من توازن كاشف استئصال الدهون بشكل منفصل لمدة خمس دقائق في درجة حرارة الغرفة.
ثم اخلطيهم معا برفق واحتضنهم لمدة 20 دقيقة. في درجة حرارة الغرفة ، قم بتقطير الخليط ببطء في خلايا البلاتين E. هز اللوحة برفق ذهابا وإيابا لتوزيع خليط التعداء بالتساوي.
ثم احتضان الخلايا عند 37 درجة مئوية و 5٪ ثاني أكسيد الكربون في حاضنة الخلية. بعد ست إلى ثماني ساعات ، استبدل الوسط ب 10 ملليلتر من وسط DMEM الطازج لإنتاج الفيروس. احصد طحال الفأر وانقله إلى وسط RPMI.
ضع الطحال في مصفاة خلوية. اهرسي الطحال بمكبس حقنة في صفيحة زراعة الأنسجة التي يبلغ طولها خمسة سنتيمترات. اشطف الخلايا من مصفاة الخلية باستخدام PBS معقم من أجل حصاد أجهزة الطرد المركزي للخلايا عند 1000 مرة جم لمدة خمس دقائق.
تخلص من sup natant. استمر عن طريق تعليق Resus لحبيبات الخلية في مخزن مؤقت للتحلل CK. إضافة ملليلترين لكل طحال تحتضن لمدة دقيقتين.
في درجة حرارة الغرفة. أضف متوسط RPMI حتى 20 مل وجهاز طرد مركزي عند 1000 مرة G لمدة خمس دقائق. أخيرا ، أعد تعليق حبيبات الخلية في PBS المعقمة.
حدد رقم الخلية وجهاز الطرد المركزي عند 1000 ضعف G لمدة خمس دقائق عند أربع درجات مئوية. من أجل تنشيط الخلايا التائية للفأر قبل نقل الفيروس ، قم بتغطية الأجسام المضادة المنشطة ، وهي مضاد للقرص المضغوط ثلاثة إبسيلون ومضاد للقرص المضغوط 28. تحضير خليط من الأجسام المضادة من ميكروغرام واحد لكل مليلتر من مضاد CD وثلاثة إبسيلون وميكروغرامين لكل ملليلتر من مضاد CD 28 في PBS المعقم ، وتوزيع 250 ميكرولتر من خليط الأجسام المضادة في كل بئر من لوحة زراعة أنسجة 24 جيدا واحتضانها لمدة ساعتين عند 37 درجة مئوية.
قم بتسمية خلايا الطحال مغناطيسيا وفقا لدليل المنتج. ضع عمود LS في المجال المغناطيسي. قم بتطبيق تعليق الخلية المسمى على العمود.
جمع التدفق من خلال الماوس المخصب القرص المضغوط ثمانية بالإضافة إلى الخلايا التائية. اغسل العمود ثلاث مرات بثلاثة ملليلتر من العازلة ودمجه مع الضربة السابقة. تلطيخ الخلايا بمضادات القرص المضغوط ثلاثة إبسيلون ومضادة للقرص المضغوط ثمانية أجسام مضادة ألفا وتحليل قياس التدفق الخلوي.
بعد ذلك ، قم بالطرد المركزي للخلايا عند 1000 مرة G لمدة خمس دقائق وأعد تعليق خلية الخلية إلى 1 مليون خلية لكل مليلتر في وسط RPMI مع IL البشري المؤتلف اثنين. قم بإزالة محلول الجسم المضاد من لوحة التنشيط. اشطف كل بئر باستخدام PBS المعقم.
أضف ملليلترا واحدا من تعليق الخلية إلى كل بئر وضع اللوحة على 37 درجة مئوية. 5٪ ثاني أكسيد الكربون في حاضنة الخلية. بعد يومين من إنتاج الفيروس ، يجب أن يصبح الوسط الموجود في صفيحة خلية ESE البلاتينية أصفر.
انقل السوبينات الفيروسية إلى أنبوب مخروطي سعة 15 مليلتر لإزالة بقايا الخلايا. الطرد المركزي للفيروس S طافي عند 1000 مرة G لمدة خمس دقائق. انقل الفيروس بعناية إلى أنبوب جديد.
اترك بعض السوائل في قاع الأنبوب ولا تزعج حطام الخلايا. اجمع الخلايا التائية المنشطة من اللوحة إلى أنبوب مخروطي 50 ملم. حدد رقم الخلية.
احتفظ ببعض الخلايا في أنبوب منفصل لاستخدامها كجهاز طرد مركزي للتحكم السلبي عند 1000 مرة G لمدة خمس دقائق وتخلص من المعالج المستلق. ثم أعد تعليق حبيبات الخلية في ضعيف الفيروس. Natant عند 10 إلى الخلايا الست لكل مليلتر مع 20 نانوغرام لكل مليلتر من الإنسان المؤتلف ، والإنترلوكين اثنين و 10 ميكروغرام لكل مليلتر من كبريتات البروتين.
أضف ملليلترا واحدا من تعليق الخلية إلى كل بئر من لوحة 24 بئر لأنبوب التحكم. ريسوس. قم بتعليق الخلايا في وسط RPMI بنفس كثافة الخلية بنفس الكمية من الإنسان المؤتلف ، والإنترلوكين الثاني وكبريتات البروتين. أضف الخلايا إلى نفس اللوحة.
لف اللوحة بجهاز طرد مركزي بغشاء بلاستيكي لمدة 90 دقيقة عند 2000 مرة جم عند 32 درجة مئوية دون انقطاع. بعد الطرد المركزي ، قم بإزالة الفيلم البلاستيكي. أضف ملليلترا واحدا من وسط RPMI الطازج مع 20 نانوغرام لكل مليلتر من الإنترلوكين البشري المؤتلف اثنين إلى كل منهما ، ثم أعد اللوحة إلى الحاضنة.
من المهم فحص الخلايا التائية المنقولة يوميا. قسم الخلايا بنسب واحدة إلى ثلاث نسب عند الضرورة. لا تدع الخلايا تنمو أكثر من اللازم أو تدع الوسط يتحول إلى اللون الأصفر في اليوم السادس أو اليوم السابع.
تلطيخ الخلايا بجسم مضاد ورباعي معقد التوافق النسيجي الكبير الخاص ب TCR لتقييم التعبير عن TCR على سطح الخلية التائية. استخدم الخلايا التائية UNSD كعنصر تحكم. هذه الخلايا التائية المحولة جاهزة الآن لمزيد من التطبيقات النهائية.
قبل نقل الفيروس. من المفيد الحصول على مجموعات فرعية عالية النقاء للخلايا التائية باستخدام الخرز المغناطيسي التجاري لتقييم مستوى التعبير عن TCRs على الخلايا التائية. يمكن استخدام الأجسام المضادة الخاصة بسلاسل TCR أو ألفا أو بيتا.
عادة ، يمكن ل 30٪ إلى 80٪ من الخلايا التعبير عن TCR المحول اعتمادا على جينات TCR وعيار الفيروسات. يمكن أيضا استخدام معقد التوافق النسيجي الكبير الرباعي الخاص ب TCR لمزيد من التحقق من التعبير الوظيفي ل TCRs. بمجرد إتقانها ، يمكن القيام بهذه التقنية في أسبوع واحد إذا تم إجراؤها بشكل صحيح.
أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر الحفاظ على الخلايا في حالة صحية باتباع هذا الإجراء. يمكن إجراء طرق أخرى مثل حمض السمية الخلوية أو فحوصات إطلاق السيتوكين من أجل الإجابة على أسئلة إضافية مثل خصوصية وحساسية التحويل. TCRs.
بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن تكون خبيرا في تحويل TCR المفضل لديك إلى خلايا تائية أولية. لذا نراكم في المختبر.
تقدم هذه المقالة بروتوكولاً لإنتاج خلايا T خاصة بالضد في الفئران من خلال النقل الفيروسي الخلفي. يهدف الأسلوب إلى التعبير عن مستقبلات خلايا T الوظيفية على خلايا T الفئران، مما يسهل البحوث المناعية والتطبيقات العلاجية المحتملة.
Retroviral transduction of TCRs into mouse T-cells enables rapid generation of antigen-specific T-cell models for immunotherapy research. This approach reduces timelines from weeks to days, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in immuno-oncology pipelines. The method provides a scalable, reproducible system for evaluating TCR specificity and function prior to human T-cell engineering.
The method fits within the discovery-to-preclinical continuum, enabling rapid TCR evaluation after target identification and before lead optimization in immunotherapy programs.