-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
تصوير الخلايا الحية للنشاط النسخي في فواصل الحمض النووي مزدوجة ستراند
تصوير الخلايا الحية للنشاط النسخي في فواصل الحمض النووي مزدوجة ستراند
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Live-Cell Imaging of Transcriptional Activity at DNA Double-Strand Breaks

تصوير الخلايا الحية للنشاط النسخي في فواصل الحمض النووي مزدوجة ستراند

Full Text
3,059 Views
09:07 min
September 20, 2021

DOI: 10.3791/62968-v

Madalena R. de Almeida1, Eduardo Gameiro1, Sérgio F. de Almeida1, Robert M. Martin1

1Instituto de Medicina Molecular João Lobo Antunes,Faculdade de Medicina da Universidade de Lisboa

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol introduces a reporter gene system designed to detect transcription occurring at DNA double-strand breaks with single-molecule sensitivity. It provides insights into how DNA damage influences ongoing transcription processes in live cells.

Key Study Components

Research Area

  • Cell biology
  • Molecular biology

Background

  • Understanding the interplay between transcription and DNA damage responses is crucial for elucidating cellular processes.
  • Traditional methods may not capture transcription events at the single-molecule level.

Methods Used

  • Utilization of fluorescence microscopy to observe individual RNA transcripts in live cells.
  • Experiments conducted in human cell lines, specifically observing the effects of doxycycline on transcription.
  • Calibration and advanced imaging techniques including 3D timelapse microscopy.

Main Results

  • The technique enables the observation of transcription events with temporal resolution down to seconds.
  • It reveals the dynamics of transcription in response to DNA double-strand breaks.
  • The results demonstrate a direct correlation between DNA lesions and transcriptional activity.

Conclusions

  • The study showcases a novel method for assessing transcriptional responses to DNA damage.
  • It contributes to a deeper understanding of the cellular response mechanisms to genetic stress.

Frequently Asked Questions

What are DNA double-strand breaks?
DNA double-strand breaks are severe forms of DNA damage that can lead to genomic instability if not properly repaired.
How does the new reporter gene system work?
It utilizes fluorescently-labeled RNA transcripts to visualize transcription events at the site of DNA damage.
What is the significance of observing transcription in live cells?
Observing transcription in live cells allows researchers to understand dynamic biological processes in their natural environment.
How long can transcription events be monitored using this protocol?
Transcription events can be monitored over a total period of one hour or more.
What type of microscopy is used in this protocol?
The protocol employs fluorescence microscopy, specifically confocal microscopy for enhanced imaging.
Does this study have applications beyond basic research?
Yes, understanding transcriptional responses to DNA damage can have implications in cancer research and therapy.

يقدم هذا البروتوكول نظام جين مراسل جديد والإعداد التجريبي للكشف عن النسخ في فواصل حبلا مزدوجة الحمض النووي مع حساسية جزيء واحد.

يسمح هذا البروتوكول بمراقبة واكتشاف أحداث النسخ ويعطي رؤى حول آثار فواصل حبلا مزدوجة الحمض النووي على النسخ المستمر للجين. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي مراقبة نصوص الحمض النووي الريبي المسماة بشكل فردي في خلايا واحدة على فترات زمنية من الثواني على مدى فترة إجمالية قدرها ساعة واحدة أو أكثر. توفر هذه الطريقة نظرة ثاقبة على استجابة تلف الحمض النووي للتحقيق في الحديث المتبادل بين النسخ والعمليات الخلوية ، مثل تكرار الحمض النووي وآفات الحمض النووي.

نصيحتنا هي مراقبة الخلايا باستخدام الدوكسيسيكلين وإجراء قياسات المعايرة لتدريب الكشف عن موقع النسخ وجزيئات الحمض النووي الريبي المسمى. في أنبوب 1.5 ملليلتر من أجهزة الطرد المركزي الدقيق، قم بإعداد الحل A الذي يحتوي على 150 ميكرولتر من الحمض النووي البلازما MEM المخفض في المصل و2.5 ميكروغرام لكل ميكرولتر من الحمض النووي في كاشف مساعد العدوى. وبالتوازي مع ذلك، قم بإعداد المحلول B الذي يحتوي على 150 ميكرولتر من MEM المصلي المخفض و1.5 ميكروغرام لكل ميكرولتر من الحمض النووي في كاشف إصابة قائم على الدهون.

احتضان كلا الحلين في درجة حرارة الغرفة لمدة خمس دقائق، ثم إضافة الحل بلطف A إلى الحل B واحتضان لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. لتضمين الخلايا، أضف 300 ميكرولتر من الحلول المختلطة A وB إلى كل طبق واوزعه برفق. تخزين طبق أسفل الزجاج داخل طبق 100 ملليمتر ثقافة الخلية القياسية واحتضانه في 37 درجة مئوية في جو رطب مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون.

إعداد أنبوب 1.5 ملليلتر من أجهزة الطرد المركزي الدقيق مع 200 ميكرولتر من DMEM مع HEPES دون فينول الأحمر وتكمل مع 10٪ مصل البقر الجنيني جردت الفحم، ثم إضافة TA. ما يقرب من ساعة واحدة قبل بدء المراقبة المجهرية، والحث على نسخ الجينات مراسل عن طريق إضافة doxycycline إلى متوسط النمو ومزيج بلطف عن طريق الأنابيب صعودا وهبوطا مع 200 ميكروليتر micropipette. نقل الخلايا إلى المجهر 30 دقيقة على الأقل قبل بدء الملاحظة ووضع طبق 100 ملليمتر مع الخلايا داخل غرفة حضانة المجهر الكبيرة المسخنة. ضع أنبوب الطرد المركزي الدقيق مع TA المخفف مسبقا داخل غرفة المجهر البيئية الكبيرة لتدفئته إلى 37 درجة مئوية.

استبدل غطاء الطبق السفلي الزجاجي بغطاء يحتوي على ثقب قطره ثلاثة ملليمترات. حدد هدف الغمر 100X النفط في لوحة التحكم المجهر وتطبيق قطرة من زيت الغمر إلى الهدف. ضبط طبق القاع الزجاجي مع الخلايا داخل غرفة حضانة مرحلة المجهر وقفل في مكانه، ثم إغلاق غطاء حاضنة المرحلة وجميع أبواب السكن المجهر.

بدء تشغيل المجهر والتحكم في البرامج، وفتح نافذة التحكم التركيز وانقر على جزء النطاق. في جزء تحديد الانبعاثات، انقر فوق مربع العين بنسبة 100٪ لتعيين مسار شعاع العين لمراقبة العين مباشرة بالعين. في قائمة مجموعة عوامل التصفية، قم بالتبديل إلى مجموعة فلتر العين وانقر فوق برايتفيلد، ثم اضغط على زر برايتفيلد المفتوح.

حرك هدف المجهر نحو طبق القاع الزجاجي حتى يلمس الزيت الزجاج. ننظر من خلال العين والتركيز يدويا على مستوى الخلايا، ثم إيقاف تشغيل زر برايتفيلد مفتوحة. اترك الخلايا لمدة 30 دقيقة قبل بدء عمليات المراقبة التجريبية للسماح لها بالتكيف مع الظروف البيئية ومنع الانجراف البؤري أثناء التصوير بسبب تدرجات درجة الحرارة.

إعداد 200 ميكرولتر micropipette و 200 نصائح مرشح ميكرولتر في درجة حرارة الغرفة. في إطار التحكم البؤري لبرنامج التحكم بالمجهر، قم بتعيين كثافة الليزر إلى 5٪ وأدخل قيمة 50 مللي ثانية لوقت التعرض. افتح نافذة الالتقاط لضبط الإعدادات لتنفيذ عملية اقتناء تلقائي للصورة للوقت ثلاثي الأبعاد.

حدد نوع اكتساب الالتقاط ثلاثي الأبعاد وحدد 12 إلى 16 شريحة بصرية مفصولة ب 0.4 ميكرومتر. حدد خانات الاختيار الخاصة بالنطاق حول التيار وارجع إلى الوضع الحالي بعد الالتقاط. في جزء التقاط الفاصل الزمني، أدخل قيمة 120 لعدد النقاط الزمنية و30 ثانية للفاصل الزمني.

حدد مرشح الكونفوجال المحدد وفقا لتسميات البروتين الفلورية المنقوزة كما هو مذكور في مخطوطة النص وحدد وقت التعرض لكل قناة إلى 50 مللي ثانية. استخدم الإعداد الحالي لطاقة الليزر لاستخدام قيمة 5٪ المحددة في إطار التركيز البؤري. في إطار التحكم في التركيز، انتقل إلى جزء الكاميرا، وحدد عنصر التحكم في عرض صورة المقياس واختر الزر اليدوي لإعداد نطاق ثابت من شدة الصورة ليتم عرضها.

حدد الخلايا للتصوير الفاصل الزمني ثلاثي الأبعاد لمواقع النسخ عند تحريض فاصل حبلا مزدوج الحمض النووي. قم بفحص الخلايا وحدد ثلاثة حقول للعرض وفقا للشروط الموضحة في مناقشة النص. التركيز على كل خلية مختارة موجودة سابقا في وسط مجال الرؤية مع موقع النسخ في المستوى الأوسط من المكدس Z.

وضع علامة على كل موضع XYZ في مستوى XY من إطار التحكم في التركيز بالنقر فوق نقطة تعيين. إضافة 200 ميكرولتر من TA المخففة مسبقا إلى الخلايا وبدء التصوير سلسلة زمنية 3D عن طريق النقر على البدء على نافذة الالتقاط. حفظ بيانات التصوير في تنسيق بيانات برنامج التحكم بالمجهر على القرص الصلب للكمبيوتر التحكم بالمجهر.

إضافة 0.5 ميكروغرام لكل ملليلتر من دوكسيسيكلين إلى متوسط النمو للخلايا ساعة واحدة قبل البدء في اكتساب صورة المجهر. جبل طبق أسفل الزجاج داخل غرفة الحضانة مرحلة المجهر وإعداد الحصول على الصورة كما هو موضح سابقا. استخدم نفس إعدادات كثافة الليزر والتعرض كما كان من قبل.

تعيين إعدادات التقاط سلسلة زمنية 2D وتعيين 120 نقطة زمنية على فترات من 500 مللي ثانية في لوحة التقاط الفاصل الزمني. الحصول على العشرات من سلسلة زمنية المعايرة من مواقع متعددة من أجل توليد مجموعات البيانات لحساب عدة مئات من القياسات TFI نسخة واحدة. باستخدام هذا البروتوكول، يتم الحصول على رسم بياني يعرض عدد النصوص الجينية للمراسل ذات العلامات الفلورية بمرور الوقت بدقة زمنية تبلغ ثوان على مدى فترات تصل إلى ساعات.

يظهر هنا المسار الزمني لقيم TFI لموقع نسخ الجينات لمراسل PROM المسمى بتراكم بروتين معطف MS2 المسمى بجزيئات البروتين الفلوري الأخضر على النصوص الوليدة. إن تحريض DSB واحد في جينات المراسل يجعل من الممكن دراسة تأثيره على النسخ الجيني المستمر للمراسل ورصد أحداث النسخ الناشئة من موقع DSB ، وهي النسخ الناجم عن الكسر. TA إضافة وتعريف DSB يؤدي إلى قمع النسخ الجيني مراسل PROM بعد حوالي 11 دقيقة التي لم يتم استعادتها حتى 60 دقيقة.

يظهر الاسترداد الكامل لإشارة PP7-RFP بدء النسخ الناجم عن الكسر. يظهر جين المراسل المضاد للمنطق EXON 2 إنهاء النسخ المدفوعة بالمروج ، والذي يتم استبداله بعد ذلك بنسخ مستحث من قبل antisense break-induced كما كشف عن تراكم بروتين معطف MS2 المسمى بربط بروتين فلوري أحمر إلى الحمض النووي الريبي المتولد من تسلسل الحلقة الجذعية MS2 المضادة للمنطق. اختيار الخلايا للتصوير، وإعداد التصوير الفاصل الزمني المعالجة ضبط موقف Z من موقع النسخ المسمى على كل موقف XY في وسط المكدس Z ليتم الحصول عليها.

وأخيرا، يجب تنفيذ إضافة TA المخفف في متوسط النمو بعناية فائقة لمنع أي تحولات في المواقف المختارة مسبقا مع الخلايا التي سيتم تصويرها. يمكن تطبيق تصوير نسخ الحمض النووي الريبي المفردة في 3D مع مرور الوقت في الخلايا الحية لدراسة نسخ الحمض النووي الريبي أثناء تكرار الحمض النووي أو تغييرات النسخ أثناء تطور دورة الخلية.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأحياء العدد 175 النسخ تلف الحمض النووي كسر حبلا مزدوج الحمض النووي الحمض النووي الريبي التصوير جزيء واحد المروج exon النسخ الناجم عن كسر

Related Videos

تحليل مزدوج الجديلة إصلاح الحمض النووي (DSB) فاصل في خلايا الثدييات

13:10

تحليل مزدوج الجديلة إصلاح الحمض النووي (DSB) فاصل في خلايا الثدييات

Related Videos

32.7K Views

عامين والتصوير الثلاثي الابعاد لايف خلية من البروتينات DNA الاستجابة الأضرار

10:24

عامين والتصوير الثلاثي الابعاد لايف خلية من البروتينات DNA الاستجابة الأضرار

Related Videos

14.6K Views

الفحص المجهري المناعي الفلوري لتحليل فواصل الحمض النووي المزدوجة

05:23

الفحص المجهري المناعي الفلوري لتحليل فواصل الحمض النووي المزدوجة

Related Videos

1.1K Views

تصور miniSOG معلم البروتينات إصلاح الحمض النووي في الجمع مع الكترون طيفية تصوير (ESI)

13:06

تصور miniSOG معلم البروتينات إصلاح الحمض النووي في الجمع مع الكترون طيفية تصوير (ESI)

Related Videos

10.5K Views

تطبيق الليزر الجزئي-التشعيع لدراسة واحدة ومزدوجة حبلا كسر إصلاح في خلايا الثدييات

08:18

تطبيق الليزر الجزئي-التشعيع لدراسة واحدة ومزدوجة حبلا كسر إصلاح في خلايا الثدييات

Related Videos

10.2K Views

مجهر الفلورة γH2AX و 53BP1 لتحليل تكوين وإصلاح الحمض النووي المزدوج-حبلا فواصل

10:47

مجهر الفلورة γH2AX و 53BP1 لتحليل تكوين وإصلاح الحمض النووي المزدوج-حبلا فواصل

Related Videos

17.2K Views

التحقيق في تجنيد البروتين للحمض النووي آفات استخدام الليزر 405 نانومتر الصغرى-التشعيع

12:29

التحقيق في تجنيد البروتين للحمض النووي آفات استخدام الليزر 405 نانومتر الصغرى-التشعيع

Related Videos

9.9K Views

وصف عمليات إصلاح الحمض النووي في فواصل الحمض النووي عابرة وطويلة الأمد مزدوجة-حبلا مجهر الفلورة

08:31

وصف عمليات إصلاح الحمض النووي في فواصل الحمض النووي عابرة وطويلة الأمد مزدوجة-حبلا مجهر الفلورة

Related Videos

9.6K Views

تصور وقياس الأضرار التي لحقت بالحمض النووي الخاصة بالموقع القائم على الإندونوكليز

10:59

تصور وقياس الأضرار التي لحقت بالحمض النووي الخاصة بالموقع القائم على الإندونوكليز

Related Videos

4.1K Views

تقييم استئصال نهاية الحمض النووي المزدوج العالمي باستخدام وسم الحمض النووي BrdU إلى جانب تصوير تمييز دورة الخلية

06:44

تقييم استئصال نهاية الحمض النووي المزدوج العالمي باستخدام وسم الحمض النووي BrdU إلى جانب تصوير تمييز دورة الخلية

Related Videos

4.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code