本方案描述了一组利用离体脑片中的光遗传学刺激,鉴定来自远端脑区的长程输入的细胞类型特异性功能连接的方法。
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本方案描述了一组利用离体脑片中的光遗传学刺激,鉴定来自远端脑区的长程输入的细胞类型特异性功能连接的方法。
了解特定细胞类型的突触连接性是理解全脑神经元回路的关键前提。要对长距离连接进行功能研究,需要对单个神经元进行靶向记录,同时特异性地刺激已知的远端输入。使用传统的化学或电刺激技术通常难以实现这一目标,因为来自上游多个脑区的轴突可能在目标区域相互混杂。通过立体定位技术靶向特定脑区,利用病毒介导的方式在该区域表达光敏感离子通道,即可通过光照选择性地激活起源于该区域的轴突。脑内立体定位注射不仅可用于结构界限清晰的脑区(如丘脑前核),也可应用于全脑其他皮层下或皮层区域。
本文介绍了一套在小鼠脑内精确进行立体定位注射表达光敏通道蛋白的病毒载体的技术,随后在脑片标本中对轴突末梢进行光刺激。这些实验方案简单且具有广泛适用性。结合对突触后连接神经元的全细胞膜片钳记录,光刺激轴突可实现对功能性突触连接的检测、药理学表征及其连接强度的评估。此外,还可利用生物胞素对记录的神经元进行填充,以在事后对突触后神经元进行形态学鉴定。
确定脑区之间的连接性对于理解神经回路至关重要。经典的解剖示踪方法可用于建立脑区间连接,而损毁研究有助于理解信息传递的层级结构。例如,空间定向和头方向信号的脑回路涉及信息从丘脑向压后皮层的定向传递。这一结论已通过前背侧丘脑核团(ADN)的损毁研究得到证实:损毁ADN会导致下游的背侧压后皮层中的头方向信号以及旁海马区网格细胞信号减弱1,2。
在细胞和亚细胞水平上确定脑区之间的功能连接更为困难。在海马中,由于其高度有序的解剖结构,可通过脑片制备中的电刺激来研究特定通路的突触连接。将刺激电极放置在CA1区的辐射层(stratum radiatum)可特异性地刺激来自CA3的Schaffer侧支输入3。将刺激电极放置在CA1区的 lacunosum moleculare 层则可激活投射至CA1的穿通通路输入4,5。电刺激可引发轴突末梢的神经递质释放;然而,它同时也会激活刺激位点附近的胞体以及途经的轴突。因此,当不同起源脑区的纤维在靶区结构中相互混杂时(如新皮层中通常所见),电刺激在研究特定脑区传入纤维方面具有局限性。
神经元也可以通过光进行刺激。光学方....
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所有操作均按照欧洲共同体理事会指令(2010/63/EU)进行,并已获得巴黎笛卡尔大学伦理委员会的批准。实验人员必须获得相应许可,以符合当地法规要求。
1. 实验设计
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本实验采用顺行性腺相关病毒,通过立体定位注射在丘脑前背核(ADN)中表达一种对蓝光敏感的通道视紫红质(Chronos)与GFP的融合蛋白。立体定位坐标根据小鼠脑图谱确定,并通过注射200 nL荧光示踪剂Fluoro-Ruby进行验证。注射后10分钟处死动物,取出脑组织并固定过夜。制备冠状脑切片以检查注射位点,结果显示注射位置准确且局限于ADN内(图1A,B)。
为了在ADN神经元中表达Chronos-GFP,我们注射了300 nL的AAV5.Syn.Chronos-GFP.WPRE.bGH。注射后三周,制备急性水平脑切片。图1C显示了包含右侧半球丘脑注射位点的脑切片,其中GFP表达呈绿色。使用配备4倍物镜的落射荧光显微镜观察时,在前下托区域可见GFP标记的丘脑轴突(图1C,D)。值得注意的是,丘脑轴突密集.......
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在活体动物中通过病毒注射在特定脑区表达光敏感视蛋白,是研究长距离功能连接性的常用光遗传学方法10,11,17,18。立体定位注射可实现对脑内特定区域的精确定位。将视蛋白与荧光报告基因共表达,可方便地评估表达是否成功,并确认注射位点的准确性。使用AAV血清型2/5通常可将表达限制在目标脑区内。通过该方法,可使特定神经元群体被转染,使其胞体和轴突末梢表达光敏感离子通道。在后续的离体脑片实验中,可在其投射靶区直接用光脉冲刺激这些轴突末梢,同时通过膜片钳记录突触后连接神经元的电活动,以检测突触传递是否成功。上述方案稳定且便捷,以下补充说明有助于实验的顺利实施。
可使用不同类型的麻醉方法。本文描述的是腹腔注射氯胺酮-赛拉嗪混合物,这是一种易于使用、持续时间较短且具有便捷镇痛效果的麻醉方式19.......
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作者声明不存在竞争性财务利益。
感谢 Bertrand Mathon、Mérie Nassar、Li-Wen Huang 和 Jean Simonnet 在先前版本立体定位注射方案开发过程中提供的帮助,感谢 Marin Manuel 和 Patrice Jegouzo 提供的技术支持。本研究得到了法国教育与研究部(L. R.,L. S.)、法国国家空间研究中心(M. B.)以及法国国家科研署基金项目 ANR-18-CE92-0051-01 (D. F.)的资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 0.5 mm 钻头 | Harvard Apparatus | 724962 | |
| 10 µL Hamilton 注射器 | Hamilton | 1701 RN - 7653-01 | |
| 10X PBS 溶液 | Thermofisher Scientific | AM9624 | 文本 |
| 36% PFA | Sigma-Aldrich | F8775 | |
| 470 nm LED | Cairn Research | P1105/470/LED DC/59022m | 需配合匹配的激发滤光片 470/40x 和 GFP 发射滤光片 使用 |
| AAV5.Syn.Chronos-GFP.WPRE.bGH | Penn Vector Core | AV-5-PV3446 | 批次 V6026R,qTiter GC/ml 4.912e12,ddTiter GC/ml 2.456e13 |
| 所有化学品 | Sigma | ||
| 浴槽温度控制器 | Luigs & Neumann | SM7 | 设定为 34°C |
| 斜面金属针头 | Hamilton | 7803-05 | 33 号规格,13 mm,尖端类型 4-20° |
| 大剪刀 | Dahle Allround | 50038 | |
| 生物素 | Sigma | B4261 | 终浓度 1–3 mg/ml |
| 硼硅酸盐毛细管 | Harvard Apparatus | GC150-10 | 外径 1.5 mm,内径 0.86 mm |
| Brown-Flaming 电极拉制仪 | Sutter Instruments | P-87 | |
| BupH 磷酸盐缓冲液粉剂 | Thermofisher Scientific | 28372 | |
| 灌注用蝶形针 | Braun | Venofix A | 24G |
| CCD 相机 | Andor | DL-604M | |
| 共聚焦显微镜 | Zeiss | LSM710 | 20X |
| 弯镊 | FST | 11011-17 | |
| CY5 配置(共聚焦) | 氦氖 633 nm(5.0 mW)激光器;镜片:MBS 488/561/633 | ||
| CY5 配置(落射荧光) | Nikon/Chroma | 荧光光源(Intensilight);激发滤光片:BP645/30;二向色镜:89100 BS;发射滤光片:BP705/72 | |
| DAPI | Sigma | D9542 | |
| DAPI 配置(落射荧光) | Nikon/Chroma | 荧光光源(Intensilight);滤光立方体:Semrock Set DAPI-5060C-000-ZERO(激发:BP 377/50;镜片:BS 409;发射:BP 447/60) | |
| Digidata 1440A | Axon Instruments | ||
| 数字手持式光度计 | ThorLabs | PM100D | 设定于 475 nm |
| 双刃不锈钢剃刀刀片 | Electron Microscopy Sciences | 72000 | 在切片机中使用刀片的一半 |
| 双荧光蛋白手电筒 | Nightsea | DFP-1 | 激发波长 440–460 nm;眼镜上的发射滤光片为 500 nm 长通滤光片 |
| EGTA | Sigma | E4368 | 终浓度 0.2 mM |
| 落射荧光显微镜 | Nikon | Eclipse TE-2000E | 10 或 20X |
| 滤纸 | Whatman | ||
| Fluoro-Ruby 10% | Millipore | AG335 | 将 10 mg 溶于 100 µL 蒸馏水中;注射 150 至 300 nl |
| GFP 配置(落射荧光) | Nikon/Chroma | 荧光光源(Intensilight);滤光立方体:Nikon B-2E/C FITC 滤光片组(激发:BP 465–495;镜片:BS 505;发射:BP 515–555) | |
| 加热板 | Physitemp | HP4M | |
| 肝素 Choay 5000 U.I./ml | Sanofi | 5 ml 小瓶 | |
| HEPES | Sigma | H3375 | 终浓度 10 mM |
| 高速旋转微型电机套件 | Foredom | K.1070 | 最大钻速 38,000 rpm |
| 细胞内液成分: | |||
| 隔离式脉冲刺激器 | A-M Systems | 2100 | |
| KCl | Sigma | P4504 | 终浓度 1.2 mM |
| 氯胺酮 1000 | Virbac | ||
| 凯托芬 10% | Merial | 100 mg/ml:将 1 µL 稀释至总体积 1 ml(0.1%) | |
| 利多卡因(Lidocaine) | MSD | 16.22 mg/ml:将 1 ml 稀释至总体积 4 ml(约 4%) | |
| 手术用高功率 LED 聚光灯 | Photonic(通过 Phymep) | 10044 | |
| LED 电源 | Cairn Research | OptoLED Light Source | |
| 显微操作器 | Luigs & Neumann | SM-7 | |
| Mg-ATP 2H2O | Sigma | A9187 | 终浓度 4 mM |
| MgCl2 | Sigma | 63069 | 终浓度 2 mM |
| 微型温度控制器 | Physitemp | MTC-1 | |
| 奶粉 | Carnation | ||
| MultiClamp 700B | Axon Instruments | ||
| 磷酸肌酸钠 | Sigma | P7936 | 终浓度 10 mM |
| Na3-GTP 2H2O | Sigma | G9002 | 终浓度 0.4 mM |
| 持针器/止血钳 | FST | 13005-14 | |
| pClamp 数据采集软件 | Axon Instruments | ||
| 蠕动泵 | Gilson | Minipuls 3 | 显示屏设置为 14–16,对应流速 2–3 ml/min |
| 葡萄糖酸钾(K-葡萄糖酸盐) | Sigma | G4500 | 终浓度 135 mM |
| ProLong Gold 抗荧光淬灭封片剂 | Thermofisher Scientific | P36390 | |
| 隆朋 2%(赛拉嗪) | Bayer | ||
| 小剪刀 | FST | 14060-09 | |
| 0.9% 氯化钠溶液 | Virbac | 将 8.5 mL 稀释至总体积 10 ml | |
| VISISCOPE SZT 体视显微镜 | VWR | 630-1584 | |
| 带数字显示的立体定位仪 | Kopf | Model 940 | 小型动物立体定位装置 |
| 链霉亲和素-Cy3 偶联物 | Life technologies | 434315 | |
| 链霉亲和素-Cy5 偶联物 | Thermofisher Scientific | S32357 | |
| Loctite 超级胶水3 | Dutscher | 999227 | 1 g 管装 |
| 缝合线 Ethilon II 4-0 聚酰胺 | Ethicon | F3210 | |
| 注射泵 | kdScientific | Legato 130 - 788130 | 使用“推注”和“回吸”模式 |
| 组织切片机 | Leica | VT1200S | 速度 0.07,振幅 1。 |
| 管路 | Gilson | F117942, F117946 | 黄/黑,紫/黑 |
| 直立显微镜 | Olympus | BX51W1 | |
| Versi-dry 实验台吸水纸 | Nalgene |
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