October 22nd, 2010
我们提出了一个协议,以产生抗原特异性的小鼠的T细胞,用逆转录病毒转导
该程序的目的是在小鼠 T 细胞上表达功能性抗原特异性 T 细胞受体。首先,用含有目标 TCR 基因的质粒转染产生逆转录病毒的细胞系,以包装表达 TCR 的逆转录病毒。接下来,从小鼠脾脏中分离和纯化 T 细胞,用第一步产生的逆转录病毒感染这些纯化的 T 细胞。
最后,扩增转导的 T 细胞以表达并获得可观水平的受体。最终,可以通过流式细胞术获得显示功能性抗原特异性 TCR 在小鼠 T 细胞上的表达的结果。嗨,我叫 Michelle Crow Guard。
我在纽约大学医学院的纽约大学癌症研究所。今天,我们将向您展示如何转导原代 T 细胞,将向您展示如何做到这一点的人将是实验室的博士后 shiong、实验室的研究生 Kaleena Melek 和实验室的博士后 Arian Perez Garcia。与现有方法(如转基因小鼠)相比,该技术的主要优点是花费的时间要少得多。
这种方法可以帮助回答关键的免疫学问题,例如哪种 TCR 可以对抗原产生更好的反应。该技术可应用于过继性 T 细胞转移疗法,该疗法已被证明有前途用于治疗癌症患者,包括人类 T 细胞的体外修饰,以确保 T 细胞受体 α 链和 β 链的相等表达。在相同启动子的控制下,将目标基因亚克隆到相同的逆转录病毒载体中。
使用 Kyogen Maxi 制备试剂盒制备高质量的血浆 DNA,并制备每微升 1 微克的储备液。从带有铂 E 逆转录病毒包装细胞的板中取出培养基,并用一个 XPBS 洗涤板一次。通过添加胰蛋白酶 EDTA 去除细胞,并在 37 摄氏度下孵育几分钟。
用 DMEM 培养基中和脱落的细胞并转移到 falcon 管中。接下来,将细胞以 1000 倍 G 离心 5 分钟。吸出旋曲并将细胞沉淀重悬于 DMEM 培养基中。
测定细胞数量,并以 0.6 乘以 10 倍稀释细胞至每毫升板 6 个。将 10 毫升细胞悬液放入 10 毫米聚赖氨酸包被的组织培养板中,并在 37 摄氏度的细胞培养箱中用 5% 二氧化碳生长过夜。第二天早上,在光学显微镜下检查细胞以验证大约 80% 的 co fluency。
轻轻地从板中取出培养基。用一个 XPBS 洗涤细胞一次,并加入 10 毫升预热的新鲜 DMEM 培养基,不含青霉素或链霉素。对于 lip mean 转染复合物,制备两种混合物,并在室温下分别平衡 DNA 的 opti ME M1 和另一种脂质体切除术试剂 5 分钟。
然后轻轻混合并孵育 20 分钟。在室温下,将混合物缓慢滴入铂 E 电池中。轻轻地来回摇动板,使转染混合物均匀分布。
然后在细胞培养箱中在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育细胞。6 到 8 小时后,用 10 mL 新鲜 DMEM 培养基替换培养基以产生病毒。收获小鼠脾脏并转移到 RPMI 培养基中。
将脾脏放入细胞过滤器中。用注射器柱塞将脾脏捣碎到 5 厘米的组织培养板中。用无菌 PBS 冲洗细胞过滤器上的细胞,以便收获细胞,以 1000 倍 G 离心 5 分钟。
丢弃 sup natant。继续 Resus 将细胞沉淀悬浮在 CK 裂解缓冲液中。每个脾脏加入 2 毫升,孵育 2 分钟。
在室温下。加入 RPMI 培养基至 20 mL,并以 1000 倍 G 离心 5 分钟。最后,将细胞沉淀重悬于无菌 PBS 中。
测定细胞数量,并在 4 摄氏度下以 1000 倍 G 离心 5 分钟。为了在病毒转导之前激活小鼠 T 细胞,用激活抗体包被板,即抗 CD 3 ε 和抗 CD 28。在无菌 PBS 中制备每毫升 1 微克抗 CD、三个 ε 和 2 微克抗 CD 28 抗体混合物,将 250 微升抗体混合物分配到 24 孔组织培养板的每个孔中,并在 37 摄氏度下孵育 2 小时。
根据产品手册磁性标记脾细胞。将 LS 柱置于磁场中。将标记的细胞悬液涂在色谱柱上。
收集富集小鼠 CD 8 加 T 细胞的流出。用 3 mL 缓冲液洗涤色谱柱 3 次,并与之前的吹穿混合。用抗 CD 3 epsilon 和抗 CD 8 α 抗体对细胞进行染色,并分析流式细胞术。
接下来,将细胞以 1000 倍 G 离心 5 分钟,然后在含有重组人 IL two 的 RPMI 培养基中将细胞 pelle 重悬至每毫升 100 万个细胞。从活化板中取出抗体溶液。用无菌 PBS 冲洗每个孔。
向每个孔中加入 1 毫升细胞悬液,并将板置于 37 摄氏度。细胞培养箱中 5% 二氧化碳。病毒生产两天后,铂 ESE 细胞板中的培养基应变为黄色。
将病毒旋腹转移到 15 毫升锥形管中以去除细胞碎片。将病毒 S 上清液以 1000 倍 G 离心 5 分钟。小心地将病毒旋后转移到新试管中。
在试管底部留下一些液体,不要干扰细胞碎片。将活化的 T 细胞从板中收集到 50 毫米锥形管中。确定细胞编号。
将一些细胞保存在单独的试管中,用作阴性对照离心机,以 1000 倍 G 离心 5 分钟,然后弃去仰卧纳脱。然后将细胞沉淀重悬于病毒仰卧位中。以 10 至 6 个细胞/毫升与 20 ng/mL 的重组人、白细胞介素 2 和 10 μg/mL 的硫酸蛋白
进行分离。向对照管的 24 孔板的每个孔中加入 1 毫升细胞悬液。复苏。将细胞悬浮在相同细胞密度的 RPMI 培养基中,加入相同量的重组人、白细胞介素 2 和硫酸蛋白。将细胞添加到同一板中。
用塑料薄膜包裹板,在 32 摄氏度下以 2000 倍 G 离心 90 分钟,不要破裂。离心后,去除塑料薄膜。加入 1 毫升新鲜 RPMI 培养基和每毫升 20 ng 重组人白细胞介素 2,将板放回培养箱中。
每天检查转导的 T 细胞很重要。必要时以 1 比 3 的比例分流细胞。不要让细胞过度生长或让培养基在第 6 天或第 7 天变黄。
用 TCR 特异性抗体和 MHC 四聚体对细胞进行染色,以评估 TCR 在 T 细胞表面的表达。使用 UNSD T 细胞作为对照。这些转导的 T 细胞现在可用于进一步的下游应用。
病毒转导前。使用市售磁珠获得高纯度 T 细胞亚群以评估 T 细胞上 TCR 的表达水平是有利的。可以使用对 TCR α 或 β 链具有特异性的抗体。
通常,30% 至 80% 的细胞可以表达转导的 TCR,具体取决于 TCR 基因和病毒滴度。TCR 特异性的 MHC 四聚体也可用于进一步验证 TCR 的功能表达。一旦掌握,如果执行得当,这项技术可以在一周内完成。
在尝试此程序时,重要的是要记住按照此程序保持细胞处于健康状态。可以进行其他方法,如细胞毒性、酸或细胞因子释放测定,以回答其他问题,如转导的特异性和敏感性。TCR.
看完这个视频后,您应该是将您最喜欢的 TCR 转导到原代 T 细胞的专家。所以,实验室见。
本文介绍了一种通过逆转录病毒转导生产特异抗原小鼠T细胞的协议。该方法旨在在小鼠T细胞上表达功能性T细胞受体,促进免疫学研究和潜在的治疗应用。
Retroviral transduction of TCRs into mouse T-cells enables rapid generation of antigen-specific T-cell models for immunotherapy research. This approach reduces timelines from weeks to days, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in immuno-oncology pipelines. The method provides a scalable, reproducible system for evaluating TCR specificity and function prior to human T-cell engineering.
The method fits within the discovery-to-preclinical continuum, enabling rapid TCR evaluation after target identification and before lead optimization in immunotherapy programs.