August 27th, 2014
我们的实验室已开发的DNA交联聚丙烯酰胺水凝胶,动态水凝胶体系,以更好地了解调节组织硬度对细胞功能的影响。这里,我们提供了示意图,说明和协议来制备这些凝胶。
该程序的总体目标是制备 DNA 交联聚丙烯酰胺水凝胶,在细胞接种到顶部后,通过将单链 DNA 移液到培养基中,可以使其变硬或软化。这是通过首先 Resus 悬浮冻干的 SA one、SA two L two R two 和缓冲液中的单链 DNA,然后将 SA one 和 SA two 溶液单独聚合成聚丙烯酰胺丙烯酰胺骨架来实现的。第二步是将 SA one 和 SA two 聚合溶液与 L 2 溶液混合以形成 DNA 凝胶。
接下来,然后用光学胶将 DNA 凝胶溶液固定在玻璃盖玻片上。最后一步是通过先用 sul sampa 处理凝胶,然后用 PDL 处理凝胶来使凝胶功能化。最终,将细胞接种在 DNA 凝胶上,并通过添加 R 2、L 2 或对照单链 DNA 来调节凝胶弹性,以分别软化、变硬或不改变凝胶弹性。
这些实验的结果表明,底层底物的动态性质直接细胞行为,使用这种技术相对于其他方法(如 CRO、行话、球状水凝胶)的优势在于 DNA 凝胶不需要紫外线等刺激来调节其弹性。相反,DNA 凝胶分别通过 L 2 或 R 2 单链 DNA 通过凝胶的扩散而变硬和软化。首先,将 SA 1 单链 DNA 以 2000 GS 的浓度冻干 15 秒,以确保所有单链 DNA 都位于试管底部。
离心后,向试管中加入 107 微升 1 x tris、EDTA 或 TE 缓冲液,制备 3 毫摩尔的 SA one 溶液在 70 摄氏度下加热 SA 1 NTE 缓冲液 5 分钟或直到单链 DNA 沉淀完全溶解。然后,通过添加 45 微升 40% 丙烯酰胺和 18 微升 10 x tribo、EDTA 或 TBE 缓冲液并离心机来制备 SA one 聚合溶液。这种混合物便于混合。
插入 P 200 吸头,连接到氮气源中,将其连接到溶液中,然后缓慢让氮气通过溶液 2 到 3 分钟。接下来,将样品以 2000 Gs 离心 15 秒以收集溶液 当以 4.5 微升 2% 硫酸铵或 PS 向样品中完成以引发凝胶聚合时,倒置试管数次混合 离心样品以收集溶液进行均匀聚合后,加入 4.5 微升 20% 四乙基亚甲基, 二胺,或向样品中搅拌以催化聚合样品经过后,混合和离心。用氮气对溶液脱气 3 到 5 分钟,以完成聚合并尽量减少未反应的单体。
然后,将溶液在室温下孵育 10 分钟以完成聚合,并为 SA 提供一种聚合溶液。用冻干的 SA 两个单链 DNA 重复前面的步骤,分别加入 45、18、4、0.5 和 4.5 微升丙烯酰胺 T-B-E-A-P-S,并分别加入 108 微升 SA 二溶液中。要制备 L two R two 和对照溶液,请离心、冻干的单链 DNA,并如前所述将以下量的 TE 缓冲液添加到相应的冻干单链 DNA 中,加热溶液直至凝胶溶液溶解。
制剂将 s sa one 和 SA two 聚合溶液在 70 摄氏度下加热约 1 分钟。直到溶液粘度降低。将 10 微升或 10 份 SA one 聚合溶液添加到 10 微升或 10 份 SA two 聚合溶液中。
然后将 SA 1 和 SA 2 聚合溶液混合在一起,在 70 摄氏度下交替加热 15 秒,并用移液器吸头搅拌 15 秒,总共 1 分钟。以 6 μL 或 6 份 100%L 混合后,将两种溶液混合,形成 100% 凝胶。如前所述混合样品后,将 100% 凝胶移液到 60 毫米培养皿中,并在最佳退火温度下加热凝胶 1 小时。
接下来,通过在室温下孵育凝胶 4 小时,让 DNA 交联继续重新杂交。在室温下孵育过夜后,用含钙的 PBS 覆盖凝胶,从培养皿中取出剩余的缓冲液,然后将凝胶放入微量离心管中。此时,将 100% 凝胶在 70 摄氏度下加热约 30 秒或直到凝胶的粘度降低。
移液时,将玻璃盖套在 70 摄氏度的加热块上,加热 1 到 2 分钟。在每个玻璃盖玻片上添加一滴光学胶粘剂。然后将 20 微升 100% 凝胶添加到每个玻璃盖玻片中,让凝胶熔化并铺展在玻璃盖玻片上。
从加热块中取出每个含有凝胶的玻璃杯,并将它们放入 24 孔组织培养皿中。将凝胶暴露在 365 纳米紫外光下 15 分钟。在最佳肛门温度下加热凝胶 1 小时并让 DNA 交联重新杂交 4 小时后,向其中添加 PBS。
然后将凝胶在 4 摄氏度下孵育过夜。孵育后,用移液管从孔中取出缓冲液,小心不要吸出凝胶。然后加入磺胺 sampa 以覆盖每块凝胶。
将凝胶暴露在 365 纳米紫外光下 15 分钟后,去除磺胺 sampa。重复上述步骤后,用 PBS 冲洗凝胶一次以去除多余的磺胺 sampa,将凝胶在大约 300 微升 0.2 毫克/毫升的 poly de lycine 中在 4 摄氏度下孵育过夜完成后,用 PBS 洗涤凝胶两次,每次 5 分钟,以去除多余的聚赖氨酸并添加培养基。凝胶在培养基中孵育 30 分钟后,在接种细胞进行细胞培养和成像之前立即去除培养基。
在硬化凝胶上生长的成纤维细胞,纵横比没有改变,但比在 100% 凝胶上生长的成纤维细胞表现出更大的投影面积。与在 80% 凝胶上生长的成纤维细胞相比,在 100% 凝胶上生长的成纤维细胞具有更小的投影面积和更大的纵横比。这些结果表明,成纤维细胞的行为取决于微环境的动态性质。
在软化凝胶上生长的神经元在初级树突数或轴突长度上没有差异,但表现出比在 50% 凝胶上生长的神经元更短的初级树突。与成纤维细胞研究一样,静态凝胶上的神经表型与动态凝胶上的神经表型不同。与在 100% 凝胶上生长的神经元相比,在 50% 凝胶上生长的神经元具有更少的初级树突和更长的轴突。
虽然尝试此程序对于准确移液粘性凝胶非常重要,但由于浓度对于避免凝胶爆裂很重要,因此准确移液可能需要多次尝试,我们在本协议的讨论部分提供了其他几种选择。
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本文描述了DNA交联聚丙烯酰胺水凝胶的制备,该水凝胶允许调节组织刚度以研究其对细胞功能的影响。为研究人员提供了详细的协议和示意图,以便复制该过程。
Dynamic modulation of extracellular matrix stiffness is a critical variable in early discovery and preclinical research, directly impacting the predictive confidence of cell-based assays. DNA-crosslinked polyacrylamide hydrogels enable reversible, stimulus-free control of substrate elasticity, supporting mechanistic de-risking and target validation in disease-relevant systems. This capability enhances the translational fidelity of in vitro models for portfolio decision-making.
This hydrogel system integrates from early discovery through preclinical validation, bridging static and dynamic mechanobiology studies.