Name: Depletion der ribosomalen RNA für Mosquito Gut metagenomische RNA-seq (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 21 s
Description: Erfahren Sie eine Methode zur Depletion ribosomaler RNA aus Mückendarmproben, um mRNA für Metagenomik-RNA-seq anzureichern. Dieses Protokoll erreicht eine Entfernungsrate von 90-99% und verbessert die Analyse mikrobieller Gemeinschaften.

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Diese Arbeit wurde vom NIH 1SC2GM092789-01A1 unterstützt und MS war ein Forschungsaufenthalt von NMSU Howard Hughes Medical Institution Undergraduate Research Programs. Das Video wurde inszeniert und von Amy Lanasa produziert und koordiniert von Dr. Philip Lewis mit der Creative Media Institut NMSU.

Verfahren Ein. Mosquito Aufzucht <ol><li> Rear Mücke Anopheles gambiae G3 Stamm in Insektarium bei 27,5 ° C mit 80% Luftfeuchtigkeit und 00.12 hr Zyklus von hell / dunkel. </li><li> Führen Larven mit Boden Katzenfutter mit Bierhefe bei 1:1. </li><li> Führen erwachsenen Mücken an Mäusen Blut am Tag 3 nach dem Auflaufen für die Eiererzeugung. </li></ol> 2. Mosquito Gut Dissection <ol><li> Autoclave Dissektion Werkzeuge (Dias und Pinzette). </li><li> Sammle 50 Mücken mit einem Aspirator und legen Sie sie auf CO 2-Fluss Bett (Ultimate Flypad). Spülen eine Mücke Probe nacheinander in drei Petrischalen mit 70% Ethanol, um die Mücke Körperoberfläche reinigen. </li><li> Legen Sie die Probe auf einen Objektträger aus Glas unter einem Stereomikroskopie. Entfernen Sie den Darm. </li><li> Sammle 50 guts pro Bedingung für Metagenom DNA-Isolierung. Sammle 50 guts pro Bedingung für metagenomische RNA-Isolierung. </li></ol&gt; 3. Metagenom DNA Isolation Hinweis: Metagenom DNA wird unter Verwendung des Meta-G-Nome DNA Isolation Kit (Epicentre Biotechnologies) mit der nachstehend beschriebenen Änderungen. <ol><li> Zeigen 50 Moskito-guts in 300 ul TE. Homogenisieren sie für 1 min mit Bio-Gen PRO200 Homogenisator (PRO Scientific Inc, USA) bei Drehzahl 2.000 min auf Eis. </li><li> Fügen Sie 2 ul Ready-Lyse Lysozym-Lösung und 1 ul RNase A zur Zellsuspension. Mix durch Vortexen und bei 37 ° C für 30 min. </li><li> Fügen Sie 300 ul Meta-Lysis Solution (2X) und 1 ul Proteinase K auf das Rohr. Mix durch Vortexen. Kurz-Impuls zentrifugieren das Rohr zu gewährleisten, dass alle von der Lösung in dem Boden des Rohres ist, und Inkubieren bei 65 ° C für 15 min, auf Raumtemperatur abkühlen lassen, dann auf Eis für 3-5 min. </li><li> Fügen Sie 350 ul MPC Protein Precipitation Reagent auf das Rohr und mischen durch Vortexen kräftig für 10 Sekunden. </li><li> Pellet ter Debris durch Zentrifugation für 10 min bei 12.000 × g bei 4 ° C. </li><li> Den Überstand in ein sauberes 2-ml-Tube, und entsorgen Sie die Pellets. </li><li> Fügen Sie 570 ul Isopropanol zum Überstand. Mix durch Invertieren des Röhrchens mehrmals. </li><li> Pellet die DNA durch Zentrifugation für 10 min bei 12.000 × g bei 4 ° C. Entfernen Sie die Isopropanol ohne Lösen des DNA-Pellet. </li><li> Add 500 ul 75% Ethanol, um das Pellet zu waschen. Zentrifuge 5 min bei 12.000 × g bei 4 ° C. Entfernen Sie die Ethanol, ohne die DNA-Pellet. Luft trocknen das Pellet bei Raumtemperatur für 2 min. Hinweis: Nicht zu trocken das DNA-Pellet. </li><li> Resuspendieren des DNA-Pellet in 50 ul TE-Puffer. </li><li> Überprüfen der Größe der isolierten DNA durch Vergleich mit der Kontroll-DNA Fosmid (40 kb; 100 ng / ul) in dem Kit vorgesehen, über Gelelektrophorese auf einem 1% Agarosegel. </li></ol> 4. Gesamt-RNA Isolierung Hinweis: Reinigen Sie den Arbeitsbereichmit RNaseZap RNase Kontamination zu minimieren. Metagenomische RNA wurde aus Moskito Darm Proben unter Verwendung des Tripure Isolation Reagent (Roche) mit einer geringfügigen Modifikation isoliert. <ol><li> Legen Sie 50 mosquito Mut in einer 2-ml-Tube mit 500 ul Tripure Isolation Reagent. Homogenisieren für 1 min bei Drehzahl 2.000 min auf Eis mit einem Homogenisator. Lassen Sie sitzen bei RT für 5 min zur Dissoziation des Nucleoproteinkomplexe ermöglichen. </li><li> Fügen Sie 100 ul Chloroform und Vortex für 12 sec, und lassen Sie sich bei RT für 2 min. </li><li> Zentrifugieren bei 10.000 × g für 10 min. Entfernen Sie vorsichtig das Rohr ohne störende getrennten Phasen. </li><li> Übertragen wässrige Phase in ein neues Röhrchen, fügen Sie 250 ul Isopropanol, gut mischen, und legte bei -20 ° C für 20 min. </li><li> Zentrifugieren bei 12.000 × g für 10 min bei 4 ° C zur Ausfällung von RNA. </li><li> Überstand verwerfen, ohne Verdrängen Pellet. Waschen des Pellets mit 750 ul 75% Ethanol. </li><li> Abpipettieren den Überstand ohne das Pellet. Air trocknen das Rohr für 2 min. </li><li> Die RNA mit 30 ul Nuklease freiem Wasser. </li><li> Behandlung der Gesamt-RNA mit DNase bei 37 ° C für 20 min, anschließend die DNase zu inaktivieren durch Inkubation bei 75 ° C für 15 min. Niederschlag RNA mit Ethanol und resuspendieren RNA in 30 ul Nuklease freiem Wasser. </li><li> Bestimmen Sie die Menge der Gesamt-RNA mit einem NanoDrop. </li></ol> 5. Ribosomalen RNA Depletion Hinweis: Das Protokoll wurde auf der Grundlage zuvor beschriebenen Methoden 12,13,15 entwickelt. <ol><li> PCR-Amplifikation der ribosomalen RNA-Genfragmente Dieser Schritt erstellt Probe-spezifische rRNA-Pools, die als Vorlagen für die in vitro Transkription verwendet werden, um Anti-Sense-ribosomalen RNA (arRNA) Sonden, die komplementär zu der RNA-Probe rRNA produzieren wird. <ol><li> Entwerfen und zu synthetisieren Primer-Sets für rRNA-Fragment PCR (Tabelle 1). </li><li> Führen PCR in 50ul Reaktion unter Verwendung von Taq DNA-Polymerase (Qiagen) mit 50 ng DNA-Template, 1 x PCR-Puffer, 1,5 mM Mg 2 Cl, 0,2 pM Primer mit 35 Zyklen von Denaturierung bei 94 ° C für 10 sec, Annealing 15 sec bei 40 ° C für bakteriellen 23S Amplikon und 50 ° C für die anderen Amplikons, und sich bei 72 ° C für 1 min (Endverlängerung bei 72 ° C für 5 min). </li><li> Erfahren PCR-Produkte auf 1% Agarosegel. </li><li> Läutern PCR-Produkte mit dem QIAquick-PCR mit Elution in 50 ul Elutionspuffer. Quantifizierung der Konzentration mit NanoDrop. </li></ol></li><li> In vitro-Transkription von Biotin-markierten Antisense-rRNA-Sonden (arRNA). Anmerkung: In diesem Schritt Probe spezifischen Sonden rRNA aus verschiedenen Amplifikate werden synthetisiert unter Verwendung des T7 MEGAscript Kit. <ol><li> Einrichten einer 20 ul Reaktionsgemisch für jede Probe spezifischen rRNA Amplicon durch Vermischen der nachstehenden Bestandteile (Tabelle 2). Inkubieren über Nacht bei 37 ° C. <strong&gt; Anmerkung: in der Regel die Ausbeuten&gt; 50 ug RNA. </li><li> Fügen Sie 1 ul DNase I (im Kit enthalten), um die Reaktion und bei 37 ° C für 20 min, um die DNA-Template zu entfernen. </li><li> Je 100 ul 100% Ethanol zum Reaktionsgemisch, Zentrifuge bei 12.000 g für 10 min bei 4 ° C zur Ausfällung synthetisiert arRNA. Überstand verwerfen und waschen das Pellet mit 750 ul 75% Ethanol. Resuspendieren RNA-Sonden in 50 ul Nuklease freiem Wasser. </li><li> Quantifizierung RNA-Konzentration mit einem NanoDrop. Shop-Sonden bei -80 ° C. </li></ol></li><li> rRNA Subtraktion mit biotinylierten arRNA. Anmerkung: Dieser Schritt setzt das biotinylierte arRNA zu hybridisieren in der RNA-Probe rRNA. Die rRNA-arRNA Hybride werden durch Streptavidin-beschichteten magnetischen Kügelchen eingefangen. Das Verfahren basiert auf dem Protokoll in Referenz 13 beschrieben mit geringen Modifikationen basiert. <ol><li> Reagenzien <ol><li> Bereiten 0,1 N NaOH, 20X Natrium-Chloride-Citrat (SSC) und 1 X SSC mit 20% Formamid. </li></ol></li><li> Hybridisation <ol><li> Mix 1 ug Gesamt-RNA mit bakteriellen 16S-und 23S-Sonden (0,75 pg pro Stück), Moskito-18S und 28S-Sonden (0,75 pg jedes), 1 ul RNase-Inhibitor, 2,5 ul 20X SSC-Puffer, 10 ul 100% Formamid in einem 200 ul PCR-Röhrchen , Add Nuklease-freiem Wasser auf 50 ul. </li><li> Legen Sie das Reaktionsrohr in einem Thermocycler und inkubieren bei 70 ° C für 5 Minuten zur sekundären Struktur zu öffnen und Rampe auf 25 ° C mit 5 ° C-Schritten für je 1 min ° C, um die Hybridisierung von rRNA und arRNA Sonden ermöglichen. </li></ol></li><li> Entfernung von rRNA <ol><li> Übertragen 300 ul Streptavidin beschichtete Kügelchen in ein 1,7-ml-Tube. Legen Sie das Rohr auf einer magnetischen Trennung Rack, um die Perlen zu immobilisieren. Überstand entfernen. Resuspendieren der Beads in 300 ul 0,1 N NaOH und mix gut. Platzieren Sie den Schlauch wieder auf die magnetische Rack und abpipettieren den Überstand. Resuspendieren der Beads in 300 ul 1X SSC, gut mischen, immobilisieren die Perlen und abpipettieren den Überstand. Wiederholen Sie die Wäsche mit 300 ul 1X SSC noch einmal. </li><li> Machen Sie 3 Aliquots von Perlen, 100 ul jeweils in 1,7 ml Röhrchen. Legen Sie das Rohr auf der magnetischen Rack, und entfernen Sie den Überstand mit einer Pipette. Hinweis: Die Aliquots Perlen sind für 3 Runden zu erfassen biotinylierten rRNA-arRNA Hybriden verwendet. </li><li> Fügen Sie 50 ul 1X SSC mit 20% Formamid in den 50 ul Hybridisierungsreaktion. Übertragen Sie die Reaktion in der ersten Raupe Aliquotierröhrchen und gut mischen. Inkubieren bei Raumtemperatur für 10 min, damit die biotinylierte Sonde rRNA-Hybriden durch Streptavidinbeads eingefangen werden. Flick das Rohr alle 2 Minuten während der Inkubationszeit zu mischen. </li><li> Legen Sie das Rohr auf der magnetischen Rack, um die Perlen zu fixieren, den Überstand der zweiten Aliquot von Perlen, gut mischen und inkubieren wie oben. Durchführung der dritten Aufnahme durch Übertragung Überstand in den dritten Schlauch von Kügelchen. Mischen und inkubieren. </li><li> Übertragen non-rRNA Überstand in ein neues Röhrchen und Durchführung Reinigung mittels RNeasy MinElute Kit Formamid nach der Anleitung des Herstellers zu entfernen. </li><li> Überprüfen Sie die rRNA Erschöpfung Effizienz durch die Verwendung eines Agilent RNA 6000 Pico-Chip-Kit auf einem Bioanalyzer (Abbildung 4). </li></ol></li></ol></li></ol> Hinweis: Die rRNA abgereichertem RNA-Proben unterliegen Verstärkung mRNA ggf. 8.

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Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen haben.

Eine komplexe mikrobielle Gemeinschaft befindet sich in Darm der Mücke Ökosystems 14,16,17. Metatranscriptomic Sequenzierung (RNA-seq) können kontextabhängig funktionelle Informationen durch Abfragen des gesamten mikrobiellen Transkriptom 4,18 offenbaren. Technisch ist Oligo-d (T) vermittelten Anreicherung prokaryontischer mRNA nicht anwendbar auf das Fehlen von stabilen Poly (A) Schwanz der Boten. Alternativ wurde für mRNA-rRNA-Depletion Anreicherung verwendet worden. Hier haben wir eine Subtrakti...

Next-Generation-Sequencing-Technologie hat Metagenomik Studie, indem sie die taxonomische Zusammensetzung und die genetische Funktionalität eines mikrobiellen Assemblage beurteilen fortgeschritten. RNA-Sequenzierung (RNA-Seq) 1 umgehen kann Kultur-basierten Methoden, um mikrobielle metatranscriptomes in verschiedenen Kontexten 2-5 untersuchen. Ein Haupthindernis für mikrobielle RNA-seq ist die Schwierigkeit bei der Anreicherung mRNA, da die mRNA-Spezies prokaryotischen nicht stabil polyadenyliert sind. Daher ist Oligo-d (T)-vermittelten messenger Bereicherung nicht anwendbar. Entfernung von reichlich rRNA ist ein alternativer Ansatz zur mRNA bereichern. Kommerzielle rRNA Depletion-Kits, wie Microexpress bakterielle mRNA Enrichment Kit (Ambion), RiboMinus Transkriptom Isolation Kit (Bakterien) (Life Technologies), und mRNA-ONLY Prokaryotische mRNA Isolation Kit (Epicentre), die bevorzugt abgebaut rRNA mit einer Exonuklease, sind verwendet worden, zum Entfernen rRNA 6-8. Jedoch sind die Fangsonden im Microexpressoder RiboMinus sind gut zum Entfernen von bekannten rRNA von typischen Gram-positive und Gram-negative Bakterien (siehe Herstellerangaben), aber weniger kompatibel mit rRNA von unbekannten Mikroben. Folglich kann die Entfernung weniger effizient für metagenomische Proben 8-10. Außerdem war die mRNA Wiedergabetreue bedenklich, wenn die Exonucleasebehandlung 11 aufgebracht wurde. Insgesamt war Subtraktion-basierte rRNA Verarmung weniger voreingenommen und effektiver mRNA Anreicherung in metagenomische Einstellungen 10-13. Darm der Mücke nimmt eine dynamische mikrobiellen Gemeinschaft 14. Wir sind daran interessiert in der Charakterisierung der Funktion von Darm der Mücke microbiome durch RNA-Seq. In einer RNA-Probe aus den Moskito-guts isoliert sind beide Mücke und mikrobieller RNA vorhanden. Hier beschreiben wir eine modifizierte Protokoll Gemeinschaft spezifische rRNA-Sonden zur effizienten Abbau Mücke und mikrobielle rRNA durch subtraktive Hybridisierung. Die resultierende mRNAangereicherte Proben sind für RNA-Seq. Der gesamte Workflow ist in Abbildung 1 dargestellt.

<table><tr><tbody><td colspan="4">Reagenz/Material </td></tr><tr><td>Meta-G-Nome DNA-Isolationskit</td><td>Epizentrum</td> MGN0910 <td>Metagenomische DNA-Isolierung</td><td></td></tr><tr><td>TriPure </td><td>Roche</td><td>11667165001</td><td>Mdetagenomische RNA-Isolierung</td></tr><tr><td>MEGAscript T7 Kit</td><td>Ambion</td><td>AM1334</td><td>In-vitro-Synthese von RNA-Sonden</td></tr><tr><td>RNaseZap</td><td>Ambion</td><td>AM9780</td><td>RNase freier Arbeitsbereich </td></tr><tr><td>Biotin-16-UTP</td><td>Roche</td><td>11388908910</td><td>In-vitro-Synthese von RNA</td></tr><tr><td>Biotin-11-CTP</td><td>Roche</td><td>4739205001</td><td>In-vitro-Synthese von RNA</td></tr><tr><td>Streptavidin magnetische Beads</td><td>NEB</td><td>S1420S</td><td>Einfang von rRNA-Hybriden</td></tr><tr><td>Magnetisches Trenngestell</td><td>NEB</td><td>S1506S</td><td>Einfang von rRNA-Hybriden</td></tr><tr><td>RNeasy Mini-Kit</td><td>QIAGEN</td><td>74104</td><td>Aufreinigung von subtrahierter RNA</td></tr><tr><td>RNase-freies DNase-Set</td><td>QIAGEN</td><td>79254</td><td>Entfernung DNA-Kontamination </td></tr><tr><td>Agilent RNA 6000 Pico Kit</td><td>Agilent Technologies Inc.</td><td>5067-1513</td><td>Elektropherogramm von RNA</td></tr><tr><td colspan="4">Equipment </td></tr><tr><td>Bio-Gen PRO200 Homogenisator</td><td>PRO Scientific</td><td>01-01200</td><td>Homogenisierung von Mückendarmgewebe</td></tr><tr><td>NanoDrop 1000 Spektralphotometer</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td>DNA & RNA-Quantifizierung</td></tr><tr><td>2100 Bioanalysator</td><td>Agilent Technologies Inc.</td><td>G2940CA</td><td>Elektropherogramm der RNA</td></tr></tbody></table>

depletion der ribosomalen rna für mosquito gut metagenomische rna-seq

Depletion of Ribosomal RNA for Mosquito Gut Metagenomic RNA-seq

Darm der Mücke nimmt dynamischen mikrobiellen Gemeinschaften in den verschiedenen Phasen des Insekts Lebenszyklus. Charakterisierung des genetischen Kapazität und Funktionalität des Darms Gemeinschaft wird einen Einblick in die Auswirkungen der Darmflora sorgen für mosquito life Züge. Metagenomische RNA-Seq ist ein wichtiges Werkzeug, um Transkriptomen aus verschiedenen Mikroben in einer mikrobiellen Gemeinschaft zu analysieren. Messenger RNA umfasst in der Regel nur 1-3% der Gesamt-RNA, während rRNA stellt ca. 90%. Es ist eine Herausforderung, Boten-RNA aus einer metagenomische mikrobiellen RNA-Probe zu bereichern, weil die meisten prokaryotischen mRNA-Spezies stabilen Poly (A) Schwanz fehlt. Dadurch wird verhindert, Oligo-d (T) vermittelten mRNA Isolation. Hier beschreiben wir ein Protokoll, das Probe abgeleitet rRNA Fängersonden an rRNA von einem metagenomische RNA-Probe zu entfernen beschäftigt. Um zu beginnen, sind beide Mücke und mikrobielle kleinen und großen Untereinheit rRNA-Fragmente aus einem metagenomische Community DNA-Probe verstärkt. Dann wird die Kommunischaft spezifischen biotinylierten Antisense ribosomalen RNA-Sonden werden in vitro mit T7-RNA-Polymerase synthetisiert. Die biotinylierten rRNA-Sonden an der Gesamt-RNA hybridisiert. Die Hybride werden durch Streptavidin-beschichteten Kügelchen eingefangen und entfernt aus der Gesamt-RNA. Diese Subtraktion-basiertes Protokoll effizient entfernt sowohl Mücke und mikrobielle rRNA aus der Gesamt-RNA Probe. Die mRNA angereicherte Probe ist ferner für die RNA-Amplifikation und RNA-Seq verarbeitet.

Das Protokoll umfasst drei Abschnitte: (1) Herstellung von DNA-templates für metagenomische rRNA PCR, (2) Schaffung Probe spezifischen Capture-rRNA-Sonden, (3) Abreicherung von rRNA aus Gesamt-RNA durch subtraktive Hybridisierung. Isolation von hoher Qualität Metagenom DNA und RNA ist wichtig für den gesamten Prozess. Das modifizierte Meta-G-DNA-Isolierung Nome Protokoll ergibt hochwertige metagenomische DNA aus Moskito Eingeweide, wie in Abbildung 2 dargestellt. Es kann schwierig sein, qualitativ hochw...

A ribosomalen RNA (rRNA) Depletion-Protokoll wurde entwickelt, um Boten-RNA (mRNA) für die RNA-seq der Darm der Mücke metatranscriptome bereichern. Probe spezifischen rRNA-Sonden, die verwendet werden, um über rRNA Subtraktion zu entfernen waren, wurden aus der Mücke und dessen Darm Mikroben erstellt. Leistung des Protokoll kann bei der Entfernung von etwa 90-99% von rRNA führen.

Depletion der ribosomalen RNA für Mosquito Gut metagenomische RNA-seq

The mosquito gut accommodates dynamic microbial communities across different stages of the insect's life cycle. Characterization of the genetic capacity ...

Hallo an alle. Das ist Fana Kla aus dem Labor von Dr. Xenon Zu, Abteilung für Biologie an der New Mexico State University. Wir arbeiten an der Metagenomik des Ökosystems des Mückendarms.Heute werden wir Ihr A-Verfahren zur Depletion ribosomaler RNA aus den gesamten RNA-Proben demonstrieren, um Boten-RNA für RNA-Seq anzureichern. RNA-Seq ist eine weit verbreitete Technik, um die Funktionen der mikrobiellen Gemeinschaft zu untersuchen. Zunächst werde ich Ihnen zeigen, wie Sie die Gesamt-RNA und die metagenomische DNA aus dem Muskeldarm isolieren können.Analys Gambia Mücken werden auf einem insektory gehalten. Mücken werden zuerst mit Zuckermehl gefüttert, bevor sie gefüttert werden, und danach werden weibliche Mücken mit Mäusen gefüttert, um die ACHE-Produktion zu fördern. Diese Mücken werden mit Zucker gefüttert und diese werden mit Mäuseblut gefüttert.Vor dem Eingriff wurden alle Präparierwerkzeuge und Objektträger sterilisiert. Die Mücken werden dreimal in einer Petrischale mit 70%igem Ethanol oberflächengereinigt und zum Trocknen des Ethanols wieder auf einen Glasobjektträger gelegt, die Mücken auf einen anderen Glasobjektträger gelegt und einen Tropfen sterile XPBS-Lösung gegeben. Ziehen Sie dann vorsichtig den Darm heraus.Die Mückendärme werden verwendet, um metagenomische DNA bzw. Gesamt-RNA zu erhalten. Bevor wir mit der RNA-Arbeit beginnen, ist es wichtig, Standardvorsichtsmaßnahmen zu treffen, um einen RNA-Abbau zu vermeiden, indem wir eine ribonukleasefreie Umgebung aufrechterhalten, während wir Handschuhe tragen, die Pipetten des Arbeitsbereichs und alle erforderlichen Geräte mit Saft reinigen. Sammeln Sie vor dem Eingriff 50 Eingeweide und geben Sie sie in ein 1,5-Milliliter-Einorröhrchen mit PU-Reagenzien.Für die genomische Gesamt-RNA-Isolierung wird die DNA aus einer weiteren Charge von 50 Eingeweiden mit einem metagenomischen Isolationskit isoliert. Die Konzentration von RNA oder DNA wird mit NanoDrop gemessen. Wir nutzten unsere RNA-Subtraktion, um ribosomale RNA aus der gesamten RNA-Probe zu entfernen.Zunächst werden die probenspezifischen RRNA-Fragmente PCR-amplifiziert aus der genomischen DNA, die wir aus den Darmproben entnommen haben. Die PCR-Produkte werden mit einem Qiagen PCR-Aufreinigungskit aufgereinigt. In diesem Schritt wird die T-sieben-RNA-Polymerase zur Synthese von Antisense-RRNA-Sonden verwendet.Richten Sie eine Reaktion mit dem PCR-Produkt aus Schritt eins und biotinyliertem CTP und UTP ein. Dann inkubieren Sie die Reaktion über Nacht bei 37 Grad Celsius. Jetzt sind die Antisense-RRNA-Sonden für die RRNA-Depletion einsatzbereit.In diesem Schritt werden BIOTINYLIERTE RRNA-Sonden verwendet, um Ziel-RRNA in der Gesamt-RNA-Probe, der Ziel-RRNA und der RRNA-Sonde zu erfassen. Hybride werden dann von Streptokokken geteilten, beschichteten magnetischen Kügelchen eingefangen. Richten Sie die Hybridisierungsreaktion in einem PCR-Röhrchen ein und inkubieren Sie sie fünf Minuten lang bei 70 Grad Celsius in einem Thermocycler.Dann die Temperatur auf 25 Grad Celsius herunterfahren. Um die RRNA-Hybridisierung während der laufenden Reaktion zu ermöglichen, bereiten Sie die Kügelchen vor. Machen Sie zunächst drei Aliquots.Mit 100 Mikrolitern Kügelchen pro Röhrchen. Waschen Sie die Kügelchen dreimal mit einer XSSC-Lösung. Lassen Sie die Röhren dann auf Eis.Sobald die Reaktion abgeschlossen ist, verdünnen Sie sie durch Zugabe von 100 Mikrolitern einen XSSC mit 20%igem Formamid. Übertragen Sie die Reaktionslösung in das Röhrchen mit den Kügelchen. Gut mischen und dann 10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren.Schnippen Sie gelegentlich an der Röhre, drehen Sie die Röhre kurz und legen Sie sie auf das Magnetgestell. Füllen Sie das Super Natin in ein Auffangröhrchen. Waschen Sie die Kügelchen noch zwei weitere Male mit je 100 Mikroliter.Eine XSSC-Pufferlösung hinzugefügt. Gut mischen und dann die Kügelchen auf dem Magnetgestell wieder einfangen. Übertragen Sie die Überstände in das Auffangröhrchen.Jetzt haben wir eine RRNA-depletierte RNA-Probe im Röhrchen. Führen Sie die Reinigung mit dem RN easy Minikit von Qiagen durch. Den Anweisungen folgend, überprüfen wir nun die Wirksamkeit der Erschöpfung.Die RNA-Proben werden auf einen Agilent RNA 6.000 PICO-Chip geladen und durchlaufen den Bioanalysator 2100. Vor der Subtraktion. Es gab zwei ribosomale RNA-Peaks von 16 s bzw. 23 s.Nach der Subtraktion wurden die RRNA-Peaks effektiv entfernt. Die verbleibende RNA liegt im Größenbereich von 200 Basenpaaren bis vier Kilobasen. Jetzt ist die RNA-Probe bereit, um eine CD-NA-Bibliothek für die Transkriptomsequenzierung zu erstellen.Wir führen Sie nur durch das Verfahren zur Anreicherung des Botenstoffs, RNA für RNA. Suchen. Vielen Dank, dass Sie uns zugesehen haben.

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Research

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JoVE Journal

Biology

Biologie

Quelle: Liu, X. et al. Ein bakterielles orales Fütterungsverfahren mit antibiotikabehandelten Mücken. J. Vis. Exp. (2020)Dieses Video zeigt die Erschöpfung der natürlichen Darmmikrobiota bei Mücken mit einer antibiotikahaltigen Saccharoselösung. Darauf folgt eine kontrollierte Rekolonisierung mit einer bakteriellen Suspension, die über ein Membranfütterungssystem geliefert wird, um eine definierte Bakterienpopulation im Mückendarm zu etablieren.

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Mit der Mukoviszidose Atemwege als Beispiel präsentiert das Manuskript eine umfassende Workflow mit einer Kombination aus Metagenom und metatranscriptomic Ansätze, um die mikrobiellen und viralen Gemeinden in Tierassoziierte Proben zu charakterisieren.

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Ein Protokoll zur Quantifizierung von bakteriellen 16S rRNA-Genen und Transkripten aus Küstensedimenten mittels Echtzeit-PCR wird bereitgestellt. Die Methodik umfasst die Co-Extraktion von DNA und RNA; Herstellung von DNA-freier RNA; und Quantifizierung von 16S rRNA-Genen und -Transkripten mittels RT-q-PCR, einschließlich Standardkurvenkonstruktion.

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Translational Regelung spielt eine wichtige Rolle bei der Kontrolle von Protein Fülle. Hier beschreiben wir eine Hochdurchsatz-Methode zur quantitativen Analyse der Übersetzung in der angehenden Hefe Saccharomyces Cerevisiae.

Genomweite Quantifizierung der Übersetzung in der angehenden Hefe durch Ribosom Profilierung

Hier präsentieren wir ein Next Generation Sequencing-Protokoll für die 16 s rRNA-Sequenzierung die Identifizierung und Charakterisierung mikrobieller Gemeinschaften in Vektoren ermöglicht. Bei dieser Methode wird die DNA-Extraktion, Amplifikation und Barcoding der Proben durch PCR, Sequenzierung auf eine-Durchflusszelle und Bioinformatik Sequenzdaten phylogenetische Informationen übereinstimmen.

Tick Microbiome Charakterisierung von Next-Generation-16 s rRNA Amplikons Sequenzierung

Dieser Artikel stellt ein Protokoll vor, um die Wirkung einzelner Mückendarmbakterien zu untersuchen, einschließlich Isolierung und Identifizierung von Mücken-Mittelgut-anbaufähigen Mikroben, Antibiotika-Erschöpfung von Mückendarmbakterien und Wiedereinführung einer bestimmten Bakterienart.

Ein bakterieller oraler Fütterungstest mit antibiotikabehandelten Moskitos

Dieses Protokoll isoliert hochwertige Gesamt-RNA aus Kotproben von Tieren und Menschen. Ein kommerzielles miRNA-Isolierkit wird mit signifikanter Adaption verwendet, um reine RNA mit optimierter Quantität und Qualität zu isolieren. Die RNA-Isolate eignen sich für die meisten nachgeschalteten RNA-Assays wie Sequenzierung, Micro-Array und RT-PCR.

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Hier beschreiben wir die Phasen der Probenentnahme und Vorbereitung für RIBO-seq in Bakterien. Die Sequenzierung der nach diesen Richtlinien erstellten Bibliotheken liefert ausreichende Daten für eine umfassende bioinformatische Analyse. Das Protokoll, das wir präsentieren, ist einfach, verwendet Standard-Laborgeräte und dauert sieben Tage von der Lyse bis zur Beschaffung von Bibliotheken.

RIBO-seq in Bakterien: ein Probensammlungs- und Bibliotheksvorbereitungsprotokoll für die NGS-Sequenzierung

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Präparierung von Mücken-Eierstöcken, Mitteldarm- und Speicheldrüsen für Mikrobiomanalysen auf Organebene

Erfahren Sie eine Methode zur Depletion ribosomaler RNA aus Mückendarmproben, um mRNA für Metagenomik-RNA-seq anzureichern. Dieses Protokoll erreicht eine Entfernungsrate von 90-99% und verbessert die Analyse mikrobieller Gemeinschaften.

Depletion der ribosomalen RNA für Mosquito Gut metagenomische RNA-seq

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