Name: Generación de microesferas de alginato para aplicaciones biomédicas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 33 s
Description: Aprende a fabricar microesferas de alginato multicapa para encapsulación celular y de proteínas con aplicaciones en ingeniería biomédica y tratamiento de diabetes tipo 1.

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Este estudio fue apoyado por los EE.UU. Departamento de Asuntos de Veteranos (Washington DC), las subvenciones 0852048 y 0731201, y 0854430 de la National Science Foundation (Arlington, VA), y, subvención RO1 DK080897 de los Institutos Nacionales de Salud (Bethesda, MD) . El Sr. Khanna recibido el apoyo de una generosa donación por el Sr. Eduardo Ross y la Dra. Mónica Moya de la Fundación Bill y Melinda Gates (Seattle, WA).

El protocolo aquí se describe un procedimiento en tres fases para la generación de microperlas multicapa de alginato (Figura 1). En primer lugar, microperlas de alginato se forman (Figura 2A). Este procedimiento se describe en la sección 1 de abajo. Las células o proteínas se pueden añadir a las microperlas en este paso con el fin de actuar como un sistema de suministro. El siguiente paso implica la formación de una capa de permeabilidad selectiva sobre las microperlas y se describe en la sección 2. El paso final implica la formación de una capa adicional de alginato y se describe en la sección 3. Esto forma una capa en el exterior de la superficie de las perlas (Figura 2B) se puede utilizar para encapsular y entregar las moléculas terapéuticas (Figura 2C) para dirigir la respuesta celular al trasplante de los siguientes sistemas. 1. Preparación microesferas de alginato <ol><li> Preparar una solución al 1,5% (w / v) de LVM alginato disolviendo 15 gramos de alginato MVI en 1 ml decapa interior solución de alginato (25 mM de tampón HEPES, 118 mM de NaCl, 5,6 mM de KCl, y 2,5 mM de MgCl 2 en agua DI, se ajustó a pH 7,4). Mezclar en un vórtice hasta que el poder de alginato ha disuelto completamente para formar una solución transparente y viscoso. Nota: Este protocolo describe las condiciones óptimas para la encapsulación de islotes dentro de microcápsulas de alginato 1 La concentración y la composición del alginato microesferas pueden ser alterados para ajustar las propiedades para otras aplicaciones (por ejemplo, la entrega de drogas, la ingeniería de tejidos, etc). Nota: Para encapsulación islote los islotes se puede añadir a la solución de alginato en este paso previo a la carga en el microencapsulator. </li><li> Preparar la solución de reticulación (22 mM de CaCl 2 en agua DI) por disolución de 100 mM de CaCl 2 y 10 mM de tampón HEPES en agua desionizada y ajustar a pH 7,4. Nota: otros cationes divalentes tales como Br 2 +, Sr 2, etc + puede utilizarse en lugar de Ca 2 +, dependiendo de la naturaleza de la gelificación de alginato deseado. </li><li> Establecer los dos canales de aire chaqueta microencapsulator alginato mediante la adición de una aguja de calibre 25 a una jeringa, y ajustar las válvulas en cada lado para asegurarse de que la aguja está en el centro de la chaqueta de aire. Diferentes agujas de calibre puede ser utilizado para este paso, dependiendo del tamaño de microperlas de alginato dirigidos. Este paso puede realizarse también con una jeringa, no debe ser un microencapsulator disponible. Añadir la solución de alginato a la jeringa, y seleccionar una aguja de calibre en función del tamaño de microperlas deseados. </li><li> Colocar un matraz que contenía 10 ml de solución de reticulación directamente debajo de la aguja. Coloque una barra de agitación en la solución. </li><li> Inyectar gotitas directamente en la solución de CaCl 2 a fin de reticular el alginato para formar microperlas. Incubar las perlas en la solución de reticulación para curar por lo menos quince minutos, con agitación continua. </li><li> Transferir las perlas a un tubo de centrífuga de 15 ml. Retire la solución residual,y llevar a cabo tres lavados con un 0,2% de CaCl 2 en solución salina normal durante dos minutos cada uno. </li></ol> 2. Recubrimiento las microperlas con poli-L-ornitina <ol><li> Preparar 3 ml de una solución al 0,1% (w / v) de poli-L-ornitina (OLP) en solución salina normal. Colocar la solución en un vórtice, hasta que se disuelva completamente, formando una solución clara. Poli-L-lisina (PLL) se puede utilizar en lugar de OLP para este paso, que se traduce en niveles similares de permeselectividad. </li><li> Transferencia de las microesferas de alginato en la solución de la OLP. Colocar en un vórtice durante 30 minutos para permitir que el tiempo OLP suficiente para interactuar con el alginato, formando un complejo policatión-polianión. Al final de 30 minutos, debe haber una capa de pintura blanca claramente visible alrededor de las microperlas de alginato. </li><li> Eliminar la solución OLP, y realizar tres lavados con 0,2% de CaCl 2 en solución salina normal durante dos minutos cada uno. </li></ol> 3. Crear el alginato exterior Layer <ol><li> Preparar una solución de alginato de concentración deseada que va a ser utilizado para crear la capa exterior. La solución se prepara como se describe en (1,1) por encima. El tamaño de la capa exterior está influenciada por la composición y concentración de alginato utilizado (Figura 3). </li><li> Transferir las microperlas de alginato a una celda-tamiz. Utilizar un Kimwipe para absorber el exceso de solución con el fin de secar las microperlas tanto como sea posible. </li><li> Transferir las microperlas a una superficie Parafilm. Otras superficies lisas tales como vidrio o incluso una placa Petri de plástico puede ser sustituido por Parafilm, si se desea. </li><li> Transferir la solución de alginato preparado en (3,1) en las microperlas de alginato. El volumen de solución de alginato se debe cubrir completamente las microperlas de alginato. Que las microperlas permanecer en la solución de alginato durante 45 minutos. </li><li> Utilizar una pipeta para retirar el exceso de solución de alginato no unido a las microperlas. </li><li> Transferencia de las microesferas en ela una solución de 22 mm de CaCl 2. Este reticula la solución de alginato alrededor de las microperlas, resultando en la formación de la capa de alginato exterior distinta. </li><li> Realizar tres lavados con 22 mM CaCl 2 en solución salina normal durante dos minutos cada uno. Visualización de las microperlas con un microscopio debe permitir una capa de alginato distinto exterior para ser visto formado alrededor de la microperla núcleo. </li></ol> 4. Los resultados representativos <img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Un esquema del procedimiento para la creación de microperlas multicapa de alginato. Reproducido con permiso de Khanna et al. J Biomed Mater Res A. noviembre; 95 (2), 632-40 (2010). <img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. (A) y (B) son imágenes de contraste de fase de microperlas de alginato. (A) muestra una microperladespués de la síntesis paso (1,7), mientras que (B) muestra una capa distinta alginato exterior presente después de la finalización de la etapa (3,7). (C) es una imagen con FITC de proteína marcada con fluorescencia de BSA encapsulado en la capa exterior. Reproducido con permiso de Khanna et al. J Biomed Mater Res A. noviembre; 95 (2), 632-40 (2010). <img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. El tamaño de la capa exterior de alginato puede ser variado basado en la composición y concentración de alginato utilizado. Nuestros resultados muestran que, tanto para LVM y alginato de LVG, los aumentos de la capa exterior de tamaño con cada vez mayor concentración de alginato, y que el alginato LVG produce gruesas capas exteriores de alginato de LVM en concentraciones iguales. Reproducido con permiso de Khanna et al. J Biomed Mater Res A. noviembre; 95 (2), 632-40 (2010). <img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Publicación de FGF-1, una proteína del factor de crecimiento angiogénico, desde la capa exterior de alginato variado basado en la concentración de LVM y alginato LVG utilizado. (A) y (B) muestran liberación por ciento, y (C) y (D) denotan la liberación masa correspondiente de FGF-1 frente al tiempo para diferentes formulaciones capa exterior. Hay un comunicado de explosión en todas las condiciones expuestas en la inicial de 5 h (A y C) y bajas dosis de liberación continua durante un máximo de 30 días (B y D). Reproducido con permiso de Khanna et al. J Biomed Mater Res A. noviembre;. 95 (2), 632-40 (2010) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3388/3388fig4large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver más grande la figura</a> .

<ol><li>Darrabie, M. D., Kendall, W. F., Opara, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+Poly-L-+Ornithine-coated+alginate+microcapsules%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Characteristics of Poly-L- Ornithine-coated alginate microcapsules.</a> Biomaterials. 26, 6846-6852 (2005).</li>
<li>Yamagiwa, K., Kozawa, T., Ohkawa, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+alginate+composition+and+gelling+conditions+on+diffusional+and+mechanical+properties+of+calcium-alginate+gel+beads%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Eng.+Jpn%22%5BJournal%5D)">Effects of alginate composition and gelling conditions on diffusional and mechanical properties of calcium-alginate gel beads.</a> J. Chem. Eng. Jpn. 28, 462-467 (1995).</li>
<li>Amsden, B., Turner, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diffusion+characteristics+of+calcium+alginate+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Diffusion characteristics of calcium alginate gels.</a> Biotechnol. Bioeng. 65, 605-610 (1999).</li>
<li>Uriel, S., Brey, E. M., Greisler, H. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+low+levels+of+fibroblast+growth+factor-1+promote+persistent+microvascular+network+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Sustained low levels of fibroblast growth factor-1 promote persistent microvascular network formation.</a> Am. J. Surg. 192, 604-609 (2006).</li>
<li>Moya, M. L., Lucas, S., Francis-Sedlak, M., Liu, X., Garfinkel, M. R., Huang, J. J., Cheng, M. H., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+delivery+of+FGF-1+increases+vascular+density+in+comparison+to+bolus+administration%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Sustained delivery of FGF-1 increases vascular density in comparison to bolus administration.</a> Microvasc. Res. 78, 142-147 (2009).</li>
<li>Moya, M. L., Cheng, M. H., Huang, J. J., Francis-Sedlak, M. E., Kao, S. W., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+FGF-1+loaded+alginate+microbeads+on+neovascularization+and+adipogenesis+in+a+vascular+pedicle+model+of+adipose+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The effect of FGF-1 loaded alginate microbeads on neovascularization and adipogenesis in a vascular pedicle model of adipose tissue engineering.</a> Biomaterials. 31, 2816-2826 (2010).</li>
<li>Khanna, O., Moya, M. L., Greisler, H. P., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilayered+Microcapsules+for+the+Sustained-Release+of+Angiogenic+Proteins+From+Encapsulated+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Multilayered Microcapsules for the Sustained-Release of Angiogenic Proteins From Encapsulated Cells.</a> Am. J. Surg. 200, 655-658 (2010).</li>
<li>Khanna, O., Moya, M. L., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+multilayered+alginate+microcapsules+for+the+sustained-release+of+fibroblast+growth+factor-1%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A%22%5BJournal%5D)">Synthesis of multilayered alginate microcapsules for the sustained-release of fibroblast growth factor-1.</a> J. Biomed. Mater. Res. A. 95, 632-640 (2010).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

El alginato es un polisacárido natural, ácido extraído de las algas y se compone de unidades de 1,4 &#39;-β-D-manurónico ácido (M) y α-L-gulurónico ácido (G) 2,3. Gelificación simple se produce cuando los cationes divalentes, como el Ca 2 +, Sr 2 +, o Ba 2 + interactuar con G-monómeros que forman puentes iónicos entre las cadenas de alginato adyacentes. Microesferas de alginato se han utilizado para ofrecer una variedad de proteínas, incluyendo el crecimiento de fibroblastos f...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios (opcional) </td></tr><tr><td> Pronova ultrapura LVG alginato </td><td> Nova-Matrix </td><td> 4200006 </td><td> Una variedad de formulaciones de alginato están disponibles. La elección de alginato influye en las propiedades finales de las microesferas, incluyendo el tamaño, las propiedades mecánicas y de transporte. La composición utilizada debe ser optimizada para una aplicación dada. </td></tr><tr><td> Pronova ultrapura LVM alginato </td><td> Nova-Matrix </td><td> 4200206 </td><td> Una variedad de formulaciones de alginato están disponibles. La elección de alginato influye en las propiedades finales de las microesferas, incluyendo el tamaño, las propiedades mecánicas y de transporte. La composición utilizada debe ser optimizada para una aplicación dada. </td></tr><tr><td> Poli-L-ornitina clorhidrato </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P2533 </td><td></td></tr></tbody></table>

generación de microesferas de alginato para aplicaciones biomédicas

Generation of Alginate Microspheres for Biomedical Applications

A base de alginato-materiales han recibido una atención considerable para aplicaciones biomédicas debido a su naturaleza hidrofílica, biocompatibilidad, y la arquitectura física. Las aplicaciones incluyen la encapsulación de células, la administración de fármacos, la cultura de células madre, y los andamios de ingeniería de tejidos. De hecho, los ensayos clínicos se están realizando actualmente en el que los islotes son encapsulados en microesferas de alginato de la OLP, recubiertos en el tratamiento de la diabetes tipo. Sin embargo, un gran número de islotes son necesarios para la eficacia debido a la pobre trasplante siguiente supervivencia. La capacidad de estimular la formación a nivel local red microvascular alrededor de las células encapsuladas pueden aumentar su viabilidad a través de la mejora del transporte de oxígeno, glucosa y otros nutrientes vitales. De crecimiento de fibroblastos factor-1 (FGF-1) es un factor de crecimiento natural que es capaz de estimular la formación de vasos sanguíneos y mejorar los niveles de oxígeno en los tejidos isquémicos. La eficacia de la FGF-1 se incrementa cuando se entrega en una sustla moda ained en lugar de una sola gran bolo de la administración. El local a largo plazo la liberación de factores de crecimiento de los sistemas de encapsulación de los islotes podría estimular el crecimiento de los vasos sanguíneos directamente a las células trasplantadas, lo que podría mejorar los resultados funcionales del injerto. En este artículo, se describen procedimientos para la preparación de microesferas de alginato para su uso en aplicaciones biomédicas. Además, se describe un método que hemos desarrollado para la generación de microperlas multicapa de alginato. Las células pueden ser encapsulados en el núcleo de alginato interior, y las proteínas angiogénicas en la capa de alginato exterior. La liberación de proteínas a partir de esta capa exterior que estimula la formación de redes locales de microvasculares directamente hacia los islotes trasplantados.

En las secciones siguientes, se describen procedimientos para la preparación de microesferas de alginato para su uso en aplicaciones biomédicas. En especial, ilustran una técnica para la creación de múltiples capas de alginato microesferas para el doble propósito de la celda y la encapsulación de proteínas como un posible tratamiento para la diabetes tipo 1.

Generación de microesferas de alginato para aplicaciones biomédicas

Los materiales basados en alginato han recibido una atención considerable para aplicaciones biomédicas debido a su naturaleza hidrofílica, biocompatibilidad y...

Mi nombre es Goldie Ana, y soy una estudiante universitaria que trabaja en el laboratorio del Dr. Eric Bras en el Instituto de Tecnología de Illinois. En esta presentación en video, describiré técnicas para el uso de microgránulos de alginato en ingeniería biomédica, específicamente en el campo de la ingeniería celular y de tejidos. Todo el trabajo descrito aquí se ha realizado en colaboración con el laboratorio del Dr. Emmanuel OPA en el Instituto de Medicina Regenerativa de Wake Forest.Presentaré técnicas para fabricar microesferas de gelatina para su uso tanto en la administración de fármacos como en la encapsulación de células. Finalmente, voy a demostrar un procedimiento novedoso que hemos desarrollado en nuestro laboratorio para generar microcápsulas multicapa de alginato que pueden utilizarse con el doble propósito de encapsular células y proteínas. El alginato está compuesto por residuos de ácido beta D-mánico y ácido alfa-L-gulurónico en secuencias variables.La solución de alginatos se entrecruza para formar un gel en presencia de un catión multivalente, como el calcio dos más, que es el más comúnmente utilizado. Los investigadores han estudiado el uso de microperlas de algen para la encapsulación de células y proteínas. Las propiedades de los hidrogeles de algen pueden variarse según las condiciones de síntesis, con propiedades inherentemente diferentes, que, por ejemplo, pueden emplearse para ajustar la cinética de liberación.Las microesferas de alginato se han utilizado en muchas aplicaciones diversas, incluyendo la encapsulación de proteínas, la administración de fármacos, la encapsulación celular y como ingrediente en ciencia de los alimentos, como en la gastronomía molecular. Comenzamos preparando una solución de alginato de capa interna. Añada 25 milimolares de hepes, 118 milimolares de cloruro de sodio, 5,6 milimolares de cloruro de potasio y 2,5 milimolares de cloruro de magnesio al agua desionizada y agite bien para asegurarse de que todos los reactivos se hayan disuelto.Ajuste el pH a 7,4, lo cual es consistente con las condiciones fisiológicas. Mida todas las polvos para obtener la concentración deseada y transfiera al Solución interalérgeno preparada. Coloque la Solución en una máquina vortex hasta que todo el polvo se haya disuelto, obteniendo una solución viscosa clara.Prepare la solución de entrecruzamiento añadiendo 10 milimolar de tampón heis y 100 milimolar de cloruro de calcio en agua desionizada. Agite bien la solución y ajuste su pH a 7,4. Añada 10 mililitros de la solución de entrecruzamiento a un vaso de precipitados.Transfiera el alginato a una jeringa equipada con una aguja del calibre deseado. Coloque la aguja perpendicularmente respecto a la solución de reticulación y expulse lentamente gotas en la solución de reticulación, permitiendo la formación de perlas esféricas para fabricar un gran volumen de microperlas consistentes en tamaño. Puede utilizarse una microencapsulación por error de dos canales.Cargue la solución de alginato en la jeringa y encienda la válvula del manguito de aire, seguida de la válvula del manguito de alginato, permitiendo que se expulsen gotas dentro de un matraz que contiene la solución de reticulación. Deje que las perlas incuben en la solución durante 15 minutos. Las microperlas deben lavarse tres veces con una solución de 22 milimolar.El cloruro de calcio y las microcápsulas de suero salino normal se han investigado ampliamente para la encapsulación de células. Por ejemplo, uno de los métodos propuestos para tratar la diabetes tipo uno implica trasplantar párpados donantes en un paciente con el fin de prevenir el rechazo de las células autólogas. Sin embargo, los pacientes deben tomar medicamentos inmunosupresores que comprometen su sistema inmunitario.Encapsular islotes dentro de un recipiente. Un material como el alginato podría eliminar la necesidad de fármacos inmunosupresores. Se añade un recubrimiento de poliol ornitina o PLO alrededor del microbio de alginato, que serviría como una membrana semipermeable.Se añade una fina monocapa de alginato alrededor del recubrimiento de PLO que ayuda a limitar la respuesta inflamatoria. El PLOI con carga positiva interactúa irónicamente con el alginato, dando lugar a un recubrimiento alrededor de la perla que sirve como membrana permselectiva. A continuación, se crea una monocapa de alginato alrededor del recubrimiento de PLO con el fin de enmascarar su carga positiva y limitar la respuesta inflamatoria.Después del trasplante, prepare una solución al 0,1 % de poli-L-ornitina disolviendo PLO en solución salina normal. Añada la solución de PLO a las microesferas de alginato y coloque la mezcla en vórtex durante 30 minutos para permitir que las microesferas de alginato tengan suficiente tiempo para interactuar con la solución de PLO. Elimine el líquido circundante y realice tres lavados de dos minutos cada uno con solución de cloruro de calcio 22 milimolar en solución salina normal.Agregue una solución de alginato a las microesferas recubiertas con PLO y colóquelas en un vórtex durante cinco minutos. Realice tres lavados de dos minutos cada uno, utilizando una solución salina normal 0,9 para eliminar cualquier ácido algínico no unido. Después de completar los lavados, puede almacenar las esferas colocándolas en una solución de cloruro de calcio.Una de las limitaciones de las células es que muchas mueren debido a la falta de un suministro sanguíneo permeable que entregue oxígeno, glucosa y otros nutrientes vitales a las células tras el trasplante. La angiogénesis, el crecimiento de vasos sanguíneos a partir de vasos sanguíneos preexistentes, puede estimularse mediante la administración de proteínas angiogénicas terapéuticas como el factor de crecimiento de fibroblastos uno o FGF uno, o el factor de crecimiento endotelial vascular o VEGF. Nuestro laboratorio ha demostrado previamente que una liberación constante y de bajo nivel de FGF uno promueve una vascularización estable en comparación con una dosis elevada en bolo. Hemos desarrollado un procedimiento novedoso para crear microesferas de alginato multicapa, con una capa externa de alginato de tamaño considerable en lugar de simplemente una fina monocapa que es la tradicionalmente utilizada.Nuestro sistema de administración de fármacos cumple la doble función de encapsulación de células y proteínas, en el que, por ejemplo, las células pueden encapsularse en el núcleo interno y proteínas angiogénicas como el FGF-1 en la región externa de alginato. La liberación de proteínas terapéuticas favorecería la formación de nuevos vasos sanguíneos hacia los sitios de trasplante, aumentando así la viabilidad de las células de los islotes. Las microesferas multicapa de alginato cumplen la doble función de encapsulación de células y proteínas.Se crea una región alergénica externa considerable, en lugar de una monocapa convencionalmente utilizada, alrededor del recubrimiento de PLO y puede emplearse como zona para la encapsulación de proteínas. La liberación de proteínas terapéuticas desde la región alginática externa serviría para inducir la formación de nuevos vasos hacia el sitio del trasplante. Esto, en teoría, proporcionaría un suministro sanguíneo permeable que distribuye nutrientes esenciales a las células encapsuladas, aumentando así la viabilidad celular.El procedimiento para elaborar microesferas de alginato de múltiples capas es similar al descrito anteriormente. Se sintetizan microesferas de alginato que contienen células, seguido de la formación de un recubrimiento de PLO. Sin embargo, en la etapa final, la capa externa se crea mediante la reticulación del alginato en una solución de cloruro de calcio en lugar de con solución salina.Para crear microperlas de ginnet multilaminares, comience por transferir las microperlas recubiertas con PLO contenidas en solución a un filtro celular para eliminar el exceso de líquido; luego, transfiera las perlas a una superficie plana como una placa perfil o una placa de Petri. A continuación, agregue la solución de alérgeno externo sobre las microperlas y deje que incube durante 45 minutos. Después, retire el exceso de solución de alérgeno externo utilizando una pipeta y transfiera las microperlas a una solución de cloruro de calcio, lo que provoca el entrecruzamiento del alginato para formar la capa externa. Realice tres lavados de dos minutos cada uno.Utilizando un panel de solución salina con cloruro de calcio dos milimolar. A muestra la superficie de una microesfera de ginnet, que se contrasta con el panel B, donde puede observarse una capa externa considerable de alérgeno. El panel C muestra una imagen de una microesfera multilaminar de algenato con proteína marcada con fluorescencia encapsulada en la capa externa.El tamaño de la capa externa de alginato puede variarse según la composición y concentración de alginato utilizada, y afecta el perfil de liberación del FGF uno a partir del alginato multicapa. Los microgránulos pueden modificarse según las condiciones utilizadas para sintetizar la capa externa. Todas las condiciones producen una liberación rápida durante las primeras cuatro horas, pero continúan liberando FGF uno hasta 30 días.La liberación a largo plazo de FGF uno exhibida tiene un potencial para estimular una vascularización persistente que serviría para aumentar la viabilidad de las células encapsuladas. Eso nos lleva al final de nuestra presentación. Esperamos que les resulte informativa.

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