La reacción en cadena de polimerasa, o PCR, es una técnica utilizada para amplificar DNA a través de termociclaje rápido – cyles de cambios de temperatura en intervalos de tiempo fijo. Usando una polimerasa termoestable de la DNA, PCR puede crear numerosas copias de ADN de bloques de ADN llamado Dinucleósido trifosfatos o dNTPs. Hay tres pasos en PCR: desnaturalización, recocido y elongación. Desnaturalización es el primer paso en el ciclo y hace que el ADN derretir interrumpiendo enlaces del hidrógeno entre las bases en el ADN. Recocido disminuye la temperatura suficiente para permitir a la Unión de las cartillas del oligonucleótido a la plantilla de la DNA. Durante la elongación paso polimerasa de la DNA sintetiza nuevo ADN de doble hebra.
Este video proporciona una introducción al procedimiento de PCR. Se describen los principios básicos de la PCR así como un procedimiento paso a paso para configurar una generalizada reacción de PCR. El video muestra los componentes necesarios para una reacción de PCR, incluye la instrucción para el diseño de la cartilla y proporciona consejos útiles para garantizar el éxito reacciones de PCR.
La reacción en cadena polimerasa o PCR es un método ampliamente usado para amplificar fragmentos de ADN. PCR utiliza termociclaje rápido, que es el repetido calentamiento y enfriamiento de la reacción a través de tres temperaturas distintas, llamada desnaturalización, recocido y extensión o alargamiento.
La reacción de termociclaje rápido comienza una vez que los reactivos de PCR se ponen en un termociclador una máquina, que está programada para precisamente calentar y enfriar la reacción.
El ciclo PCR comienza con la desnaturalización, que se produce de 20 a 30 segundos a 95° C, muy por encima de la temperatura de fusión del ADN. La temperatura de fusión es un estado donde la mitad del ADN es una doble hélice trenzada y el otro es una solo trenzada bobina al azar. La temperatura de desnaturalización es muy por encima de la temperatura de fusión, con el fin de asegurar que todos los enlaces de hidrógeno entre pares de bases complementarios se rompen produciendo sólo solo DNAs trenzados. Solos filamentos apareados se llaman las hebras sentido y antisentido. La secuencia del sentido, codificación o filamento, es idéntica a la secuencia de ARNm, que en última instancia será código para la proteína. Por lo tanto, tiene sentido. Cuando se lee de izquierda a derecha se comienza con el fosfato 5′ y termina con el hidroxilo 3′. La hebra antisentida es también llamada el filamento complementario y comienza con 3′ hidroxilo y termina con el 5′ fosfato cuando se lee de izquierda a derecha.
En el segundo paso, recocido, corta trozos de ADN llamados iniciadores, que son específicos de las cadenas de sentido o antisentido se unen mediante enlaces de hidrógeno. La cartilla que se une a la hebra antisentida y tiene la misma secuencia como la cadena con sentido es el primer avance o sentido. La cartilla que se une a la cadena con sentido y tiene una secuencia inversa y complementaria a la hebra de sentido es su primer revés o antisentido. Dependiendo de la longitud de los primers utilizados, la temperatura de recocido para este paso es generalmente 3 a 5 ° C por debajo de la temperatura de fusión más bajada de sus dos iniciadores. Recocido tiende a ocurrir entre 50 y 65 ° C y tiene una duración de 20 a 40 segundos.
Una vez que los cebadores se unen a ADN que ceba la reacción mediante la creación de un extremo 3′ hidroxilo grupo al que se unirá una polimerasa, una enzima que replica el ADN.
El siguiente paso se llama alargamiento o extensión ocurre a 72° C, óptima para la actividad de la polimerasa. Una vez enlazado la polimerasa comienza a añadir trifosfatos de nucleótidos libres, o dNTPs, a los extremos del primer en un momento en el 5′ a 3′ dirección para hacer doble trenzado DNA.
Una vez completa la elongación comienza el próximo ciclo. En el siguiente ciclo de cartillas se unirán al único trenzado DNA formado a través de la extensión anterior. El fragmento corto que intenta amplificar, el amplicon, formarán en última instancia, cuando la polimerasa se extiende desde el primer delantero en un filamento que se generó por la amplificación de la cartilla inversa o viceversa. Una vez generados, la cantidad de amplicón aumentará exponencialmente en ciclos posteriores. Dependiendo de la meta de su reacción, se necesitarán 20 a 40 ciclos.
Para amplicones de largo, un paso de elongación final normalmente se ejecutan a 72° C durante 5 a 15 minutos para asegurar que todo ADN es doble trenzado. Generalmente, un paso final mantener a 4° C se programa en el termociclador como medida cautelar para asegurar que el ADN permanece estable hasta que sacan el termociclador.
La reacción de PCR requiere varios reactivos claves. En primer lugar es la plantilla de ADN, que es la muestra de ADN que se amplificarán su fragmento. Entonces son sus iniciadores, que son los pedazos cortos de ADN o de oligonucleótidos que ceba la reacción de la polimerasa.
Hay varias consideraciones importantes que deben tomarse a la hora de elegir sus cartillas. En primer lugar, deben ser complementarios a las regiones 5′ y 3′ de la plantilla de ADN que flanquean la secuencia que se desea amplificar. En segundo lugar, que deben estar entre 15 y 30 pares de bases largo y conformadas por cerca de 50% los guanines y cytosines. En tercer lugar, la temperatura de fusión de ambos iniciadores debe estar por encima de 50° C y dentro de uno o dos grados de cada uno eficientemente puede enlazar a la misma temperatura de recocido. En cuarto lugar, que no pueden ser complementarios entre sí y forman dímeros de primer. Y en quinto lugar, no deben contener estructura secundaria, que es la forma de uno mismo-recocido dentro de uno de los iniciadores.
Además de las cartillas y plantilla de la DNA, la polimerasa de la DNA es esencial para la reacción de PCR. La enzima más utilizada en PCR es la Taq polimerasa, que es una enzima termoestable aislada de la bacteria Thermus aquaticus que hace su casa en manantiales de agua caliente. Taq polimerasa puede soportar temperaturas superiores a 90° C.
Trifosfatos de Dinucleósido o dNTPs, que estará integrado por los pares de bases en los filamentos cada vez mayores, también se debe añadir a la reacción. Un tampón de reacción, que mantiene el pH y contiene importantes iones como manganeso, magnesio y potasio, también es un componente necesario de la reacción que estabiliza la reacción y brinda importantes cofactores de la enzima polimerasa. Como todas las reacciones, PCR necesita un disolvente y así agua grado PCR, que es libre de iones que pueden inhibir la reacción, se utiliza.
Antes de comenzar la PCR Asegúrese de que el ambiente de trabajo esté limpio para evitar la contaminación. Siempre deben llevarse guantes.
Para ayudar a realizar un seguimiento de los distintos componentes de la reacción que usted necesita. Hacer una tabla de volúmenes de reactivo y concentración para cada una de sus muestras incluyendo los controles. En términos de volúmenes, una reacción típica debe contener 5μL de 10 X buffer de reacción, 4μL de 25 mM MgCl2, 1μL de dNTPs en 10 mM, 2μL de cartillas de avance y retroceso a 50 ng/μL y 0.3μL de la Taq polimerasa a 5 U/μL. Desea agregar suficiente plantilla para que 100 ng está presente en la reacción. Finalmente, la mayoría de las reacciones de PCR se realizaron en un volumen total de 50μL. Así que debe usarse un volumen de agua de grado de polimerización en cadena para asegurar que el volumen total es de hecho, 50μL.
Una vez que su reacción está previsto sobre el papel montar sus reactivos en el hielo.
A continuación añadir el reactivo al tubo de PCR. Primero agrega el agua, entonces su plantilla, sus cartillas, buffer, cloruro de magnesio y dNTPs, agregar último Taq polimerasa y mezclar bien.
Después de que su reacción es lugar de instalación la muestra en un termociclador y comenzar su programa PCR. Brevemente, partes de la máquina consiste en un termobloque, donde se inserta el tubo PCR o la placa y sujeto a cambios de temperatura. Una tapa caliente, que evita que la condensación por lo que ninguna muestra es perdida y una interfaz con una pantalla para la programación de las temperaturas de polimerización en cadena y las duraciones de ciclo. El programa de instalación siempre antes de montar la reacción.
Una vez que el termociclador ha hecho su trabajo. Saque su reacción y verificar el producto PCR con electroforesis en gel. Si la PCR se realiza correctamente, debería ver el amplicon en el tamaño correcto par de base.
Y ahora algunos consejos útiles al trabajar con PCR. Cuando intenta amplificar el mismo producto de la polimerización en cadena de un número de plantillas diferentes y por lo tanto, tiene un montón de diferentes reacciones al programa de instalación. Es útil para intensificar la reacción para crear una mezcla maestra. La mezcla PCR master es una mezcla de gran volumen de todos los reactivos compartida entre sus muestras, que posteriormente se distribuye en múltiples tubos de reacción.
Mayoría de las reacciones de PCR comienza con un paso de desnaturalización inicial, que ocurre a 95° C para 1 a 9 minutos. Este paso asegura que la plantilla es solo trenzado para el primer ciclo de amplificación.
A menudo es deseable utilizar un armario PCR cuando es alto el riesgo de contaminar su muestra. Para detectar cualquier contaminación en su reacción es beneficioso para configurar un control negativo, que no tiene ninguna plantilla de la DNA y no debe producir un producto en tu gel de DNA.
A menudo PCR debe ser optimizada por ajustar temperaturas, concentración de cloruro de magnesio, o tratar de nuevo cartillas. Una vez que tengas tu trabajo de PCR. Es una buena idea hacer siempre una plantilla de control positivo, que sabes que va a producir un producto.
Muchas variaciones y aplicaciones de la PCR existen para una variedad de propósitos.
Una variante de PCR, hot start PCR, consiste en retener la polimerasa de la reacción hasta que después del primer paso de desnaturalización, que impide la amplificación inespecífica que puede ocurrir antes de ciclismo.
Polimerización en cadena puede modificarse también para amplificar simultáneamente múltiples secuencias de ADN mediante el empleo de bases múltiples en una sola reacción de PCR, llamada PCR múltiplex.
En combinación con sondas de oligonucleótidos fluorescentes, PCR puede convertirse realmente en una técnica que permite medir niveles relativos o absolutos de la expresión génica o cuánto ARNm se produce para un determinado gen o grupo de genes. Este método se conoce como qPCR.
PCR también puede utilizarse para determinar la presencia de una secuencia particular de ADN en un organismo. Este procedimiento se conoce como genotipificación. Por ejemplo, genotipado puede utilizarse para determinar la autenticidad de las muestras de pescado por averiguar si una secuencia específica de la especie está presente en la muestra. Genotipificación se usa también en análisis forense para determinar si el ADN encontrado en la escena de un crimen coincide con un sospechoso.
Sólo ha visto la introducción de Zeus a la PCR. En este video repasamos lo que PCR es y cómo funciona, los muchos componentes de la reacción de polimerización en cadena, el mecanismo por el cual PCR puede amplificar ADN y muchas variaciones y aplicaciones de esta técnica de gran utilidad. ¡Gracias por ver!
The polymerase chain reaction or PCR is a widely used method for amplifying DNA fragments. PCR uses thermocycling, which is the repeated heating and cooling of the reaction via three distinct temperatures called denaturation, annealing and extension or elongation.
The thermocycling reaction begins once the PCR reagents are put into a thermocycler a machine, which is programmed to precisely heat and cool the reaction.
The PCR cycle begins with denaturation, which occurs for 20 to 30 seconds at 95 °C, well above the melting temperature of DNA. The melting temperature is a state where half of the DNA is a double stranded helix and the other is a single stranded random coil. The denaturation temperature is well above the melting temperature, in order to ensure that all the hydrogen bonds between complementary base pairs are broken yielding only single stranded DNAs. Paired single strands are termed the sense and antisense strands. The sequence of the sense, or coding strand, is identical to the sequence of mRNA, which will ultimately code for protein. Therefore, it makes sense. When read from left to right it begins with the 5’ phosphate and ends with the 3’ hydroxyl. The antisense strand is also called the complementary strand and begins with 3’ hydroxyl and ends with the 5’ phosphate when read from left to right.
In the second step, annealing, short pieces of DNA called primers, which are specific to the sense or antisense strands bind via hydrogen bonds. The primer that binds to the antisense strand and has the same sequence as the sense strand is the forward or sense primer. The primer that binds to the sense strand and has a sequence that is reverse and complementary to the sense strand is your reverse or antisense primer. Depending on the length of primers used the annealing temperature for this step is usually 3 to 5 °C below the lower melting temperature of your two primers. Annealing tends to occur between 50 and 65 °C and lasts for 20 to 40 seconds.
Once the primers bind to DNA they prime the reaction by creating a 3’ hydroxyl group end to which a polymerase, an enzyme that replicates DNA, will bind.
The next step called elongation or extension occurs at 72 °C, which is optimal for polymerase activity. Once bound the polymerase begins to add free nucleotide triphosphates, or dNTPs, to the ends of the primer one at a time in the 5’ to 3’ direction to make double stranded DNA.
Once elongation completes the next cycle begins. In the next cycle primers will bind to single stranded DNA formed via previous extension. The short fragment you are trying to amplify, the amplicon, will ultimately form when the polymerase extends from the forward primer on a strand that was generated by amplification from the reverse primer or vice versa. Once generated, the amount of amplicon will increase exponentially in subsequent cycles. Depending on the goal of your reaction, 20 to 40 cycles will be needed.
For long amplicons, a final elongation step is typically run at 72 °C for 5 to 15 minutes in order to ensure all DNA is double stranded. Usually, a final hold step at 4 °C is programmed into the thermocycler as a precautionary step to ensure that the DNA remains stable until taken out of the thermocycler.
The PCR reaction requires several key reagents. First is the DNA template, which is the DNA sample from which your fragment will be amplified. Then there are your primers, which are the short pieces of DNA or oligonucleotides that prime the polymerase reaction.
There are several important considerations that need to be taken when choosing your primers. First, they must be complementary to the 5’ and 3’ regions of your DNA template that flank the sequence you want to amplify. Second, they should be between 15 and 30 base pairs long and be comprised of about 50% guanines and cytosines. Third, the melting temperatures of both primers should be above 50 °C and within one to two degrees of each other so they can efficiently bind at the same annealing temperature. Fourth, they can’t be complementary to each other and form primer dimers. And fifth, they should not contain secondary structure, which is form by self-annealing within one of the primers.
In addition to the primers and DNA template, DNA polymerase is essential for the PCR reaction. The enzyme most commonly used in PCR is Taq polymerase, which is a thermostable enzyme isolated from the bacterium Thermus aquaticus that makes its home in hot springs. Taq polymerase can withstand temperatures greater than 90 °C.
dNTPs, which will comprise the base pairs in the growing strands, must also be added to the reaction. A reaction buffer, which maintains pH and contains important ions like manganese, magnesium and potassium, is also a necessary reaction component that stabilizes the reaction and provides important cofactors to the polymerase enzyme. Like all reactions, PCR needs a solvent, and so PCR grade water, which is free of ions that can inhibit the reaction, is used.
Before beginning the PCR make sure the working environment is clean to avoid contamination. Gloves must always be worn.
To help with keeping track of the various reaction components that you will need. Make a table of reagent volumes and concentrations for each of your samples including controls. In terms of volumes a typical reaction should contain 5μL of 10X reaction buffer, 4μL of 25 mM MgCl2, 1μL of dNTPs at 10 mM, 2μL of forward and reverse primers at 50 ng/μL, and 0.3μL of Taq polymerase at 5 U/μL. You want to add enough template so that 100 ng is present in the reaction. Finally, most PCR reactions are conducted in a total volume of 50μL. So a volume of PCR grade water must be used to ensure the total volume is indeed, 50μL.
Once your reaction is planned on paper assemble your reagents on ice.
Next, add your reagents to the PCR tube. First add water, then your template, your primers, buffer, magnesium chloride, and dNTPs, add Taq polymerase last and mix thoroughly.
After your reaction is setup place your sample in a thermocycler and start your PCR program. Briefly, parts of the machine consist of a thermoblock, where the PCR tube or plate is inserted and subject to precise temperature changes. A heated lid, which prevents condensation so no sample is lost and an interface with a display for programming PCR temperatures and cycle durations. Always setup your program before assembling the reaction.
Once the thermocycler has done its job. Take out your reaction and verify the PCR product with gel electrophoresis. If the PCR is successful, you should see the amplicon at the correct base pair size.
And now for some helpful hints when working with PCR. When you are trying to amplify the same PCR product from a number of different templates and therefore have a lot of different reactions to setup. It is useful to scale up the reaction to create a master mix. The PCR master mix is a large volume mixture of all the reagents shared among your samples, which is later distributed into multiple reaction tubes.
Most PCR reactions begin with an initial denaturation step, which occurs at 95°C for 1 to 9 minutes. This step ensures that all of the template is single stranded for the first amplification cycle.
Often it is desirable to use a PCR cabinet when the risk of contaminating your sample is high. To check for any contamination in your reaction it is beneficial to setup a negative control, which has no DNA template and shouldn’t produce a product in your DNA gel.
Often PCR must be optimized by adjusting temperatures, magnesium chloride concentration, or trying new primers. Once you have your PCR working. It’s a good idea to always run a positive control template, which you know will produce a product.
Many variations and applications of PCR exist for a variety of purposes.
One variation of PCR, hot start PCR, involves withholding the polymerase from the reaction until after the first denaturation step, which prevents nonspecific amplification that might occur before cycling.
PCR can also be modified to simultaneously amplify multiple DNA sequences by employing multiple primers in a single PCR reaction called multiplex PCR.
In combination with fluorescent oligonucleotide probes, PCR can actually become a technique that can measure relative or absolute levels of gene expression or how much mRNA is produced for a given gene or group of genes. This method is referred to as qPCR.
PCR can also be used to determine the presence of a particular DNA sequence in an organism. This procedure is referred to as genotyping. For example, genotyping can be used to determine the authenticity of fish samples by figuring out if a species specific sequence is present in the sample. Genotyping is also used in forensic analysis to determine if DNA found at the scene of a crime matches a suspect.
You’ve just watched JoVE’s introduction to PCR. In this video we reviewed what PCR is and how it works, the many components of the PCR reaction, the mechanism by which PCR can amplify DNA and the many variations and applications of this highly useful technique. Thanks for watching!
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