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DOI: 10.3791/58704-v
Maria M. Steele1, Madeline J. Churchill2, Alec P. Breazeale1, Ryan S. Lane1, Nicholas A. Nelson1, Amanda W. Lund1,2,3,4
1Department of Cell, Developmental, & Cancer Biology,Oregon Health and Science University, 2Department of Molecular Microbiology & Immunology,Oregon Health and Science University, 3Department of Dermatology,Oregon Health and Science University, 4Knight Cancer Institute,Oregon Health and Science University
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study investigates the in vivo quantification of leukocyte egress from various skin conditions, including naive, inflamed, and malignant murine skin. The authors compare two photoconversion techniques to track leukocyte movement and examine their utility in understanding immune dynamics in cutaneous tumors.
Aquí, demostramos los métodos de cuantificación en vivo de la salida de leucocitos de ingenuo, inflamado y mala piel murina. Realizamos una comparación directa de dos modelos: photoconversion de aplicación y en situ FITC transdérmica. Además, demostramos la utilidad de photoconversion para el seguimiento de salida de leucocitos de tumores cutáneos.
La fotoconversión proporciona un método in vivo rastreable para el análisis cuantitativo de la salida de leucocitos para una visión mecanicista de la residencia de leucocitos y la dinámica de salida de múltiples sitios de tejido en estados enfermos. Bueno, aquí demostramos la utilidad del seguimiento de leucocitos de tumores cutáneos. La aplicación de este ensayo a otros tejidos y enfermedades está limitada sólo por la capacidad de administrar la luz.
La principal ventaja de esta técnica es que permite la cuantificación de poblaciones endógenas, en lugar de células inmunitarias transferidas como una salida de tejidos inflamados in vivo. Para inducir la inflamación, después de confirmar la falta de respuesta al pellizco del dedo del otro, utilice una micropipeta para administrar 20 microlitros de ftalato de dibutilo o DBP, en el lado ventral del pinna del oído de un ratón transgénico Kaede anestesiado. Después de permitir que el DBP se seque, tire de la oreja a través de una hendidura en un pedazo de papel de aluminio y utilice cinta adhesiva de doble cara para fijar la oreja planamente a la lámina con el lado dorsal hacia arriba.
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