-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

ES

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

Spanish

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Cultivo primario de neuronas aisladas del cerebelo del ratón embrionario
Cultivo primario de neuronas aisladas del cerebelo del ratón embrionario
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Primary Culture of Neurons Isolated from Embryonic Mouse Cerebellum

Cultivo primario de neuronas aisladas del cerebelo del ratón embrionario

Full Text
20,876 Views
08:09 min
October 26, 2019

DOI: 10.3791/60168-v

Shahin Shabanipour1,2, Azadeh Dalvand1,2, Xiaodan Jiao1,2, Maryam Rahimi Balaei1,2, Seung H. Chung3, Jiming Kong1, Marc. R. Del Bigio2,4, Hassan Marzban1,2

1Department of Human Anatomy and Cell Science, Max Rady College of Medicine, Rady Faculty of Health Sciences,University of Manitoba, 2The Children's Hospital Research Institute of Manitoba (CHRIM), Max Rady College of Medicine, Rady Faculty of Health Sciences,University of Manitoba, 3Department of Oral Biology,University of Illinois at Chicago, 4Department of Pathology, Max Rady College of Medicine, Rady Faculty of Health Sciences,University of Manitoba

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Realizar experimentos in vitro para reflejar las condiciones in vivo lo más adecuadamente posible no es una tarea fácil. El uso de cultivos celulares primarios es un paso importante hacia la comprensión de la biología celular en todo un organismo. El protocolo proporcionado describe cómo crecer y cultivar con éxito las neuronas cerebelosas de ratón embrionarios.

Transcript

El cultivo celular neuronal primario es un sistema modelo ideal para estudiar las neuronas disociadas en cultivo in vitro. La ventaja de usar este método es ser capaz de mantener las características celulares de las células disociadas, tales como mecanismos, funciones y condiciones in vitro de morfología durante unas semanas lo más cerca posible de la condición in vivo. Coloque los resbalones de la cubierta redonda en una placa de 24 pozos debajo del gabinete de bioseguridad.

Agregue 90 microlitros de poli-L-ornitina en cada resbalón de cubierta. Cierre la tapa y coloque suavemente la placa en la incubadora de 37 grados durante dos días. Preparar el medio de cultivo y el medio de siembra y mantenerlos a cuatro grados centígrados.

Prepare la solución de trippsina de trabajo en DMEM/F12 y manténgala en cuatro grados. Coloque el medio de cultivo y el medio de siembra en la incubadora a 37 grados. Saque la placa de 24 pozos de la incubadora.

Lave los resbalones de la cubierta tres veces con agua doble destilada. Deje los resbalones de la cubierta durante al menos dos horas para secar por completo. Prepare tres platos Petri llenos de PBS frío, tres platos Petri llenos de HBSS frío y cinco platos Petri llenos de medio de disección fría sobre hielo.

Exélute los cuernos uterinos y lávelos en PBS frío tres veces sobre hielo. A partir de aquí todos los pasos deben llevarse a cabo sobre hielo para minimizar el daño tisular. Después del último paso de lavado, separe a los cachorros del útero en HBSS y transfieralos al medio de disección en frío.

En el medio de disección, decapitar a los cachorros con tijeras. Abra el calvario desde el foramen magnum hasta el borde inferior de la cavidad orbital. Usando un par de fórceps finos, retire la base del cráneo y pele el cráneo del cerebro.

Retirar cuidadosamente las meninges del cerebelo a partir de la superficie lateral del pedúnculo y pons cerebeloso medio. Corta ambos pedúnculos cerebelosos y separa el cerebelo del resto del cerebro. Coloque inmediatamente la cerebella recogida en un tubo cónico estéril de 15 ml lleno de DMEM/F12 sobre hielo.

Centrifugar el tubo a 1.000 g a cuatro grados durante un minuto en DMEM/F12. Repita esto tres veces, retirando cada vez suavemente el sobrenadante con una pipeta y re-suspendiendo el pellet en DMEM/F12 fresco. Agregue dos mililitros de trippsina precaleada y pipetee suavemente para mezclarlos.

Coloque el tubo en un baño de agua de 37 grados durante 12 minutos. Después de la incubación, lleve el tubo al armario de seguridad y agregue 10 ml de DMEM/F12 para inactivar la tripina. Centrifugar la mezcla a 1.200 g durante cinco minutos.

Desechar el sobrenadante y resuspend en medio fresco seguido de centrifugación tres veces. Pre-mojar una pipeta de plástico estéril con DMEM/F2. Añadir 3,5 mililitros de solución de trabajo DNAse al mismo tubo.

Triturar el tejido con una pipeta varias veces hasta que el líquido alcance un color lechoso homogéneo. Añadir 10 ml de DMEM/F12 frío a la mezcla y proceder a la centrífuga. Centrifugar la muestra a 1.200 g a cuatro grados durante cinco minutos.

Retire con cuidado el sobrenadante sin alterar el pellet. Retire el medio de siembra de la incubadora. Agregue 500 microlitros de medio de siembra precalentado y mezcle bien con la pipeta.

Cuente las células usando un hemocicómetro. Diluir la suspensión celular con un medio de siembra a una densidad de 500.000 células por mililitro. Añadir 90 microlitros de la mezcla a cada pozo en el centro del cubreobjetos.

Coloque la placa en la incubadora a 37 grados durante tres a cuatro horas. Después de la incubación, añadir 500 microlitros de medio de cultivo precalentado en cada pocód en cada pocód en. Sustituya la placa en la incubadora a 37 grados.

Después de siete días, sustituya el antiguo medio por medio de cultivo fresco II.Prepare una placa separada de 24 pozos con la organización numérica correspondiente y agregue 100 microlitros de PFA 4% a cada pozo. Después de los días deseados en el cultivo, retire suavemente los resbalones de la cubierta de los pozos de la placa de cultivo original y colóquelos en los pozos correspondientes de la placa PFA descrita en el paso anterior. Añadir PFA a los pozos para sumergir completamente los resbalones de la cubierta.

Mantenga la placa PFA a cuatro grados durante 30 a 120 minutos. Después de la incubación, restaure la placa a temperatura ambiente. Lave suavemente los resbalones de la cubierta con PBS durante cinco minutos tres veces.

La figura dos del texto muestra el cultivo de células cerebelosas a partir de E18. La inmunofluorescencia para la calbinadina muestra las neuronas de Purkinje con extensiones axonales por tres días in vitro. Por siete a 10 días in vitro, los procesos dendríticos son evidentes.

A los 21 días, las ramas dendríticas complejas están presentes. La figura tres del texto muestra cultivos celulares cerebelosos a partir de varios días embrionarios. la detección de inmunofluorescencia de la calbinada muestra las neuronas purkinje con axones tempranos sólo después de 18 días in vitro.

Los cultivos de neurona purkinje comenzaron en E14 y E15 desarrollarán dendritas, pero nunca tan complejas como las que se desarrollan cuando E18 es el punto de partida. La figura cuatro del texto muestra que diferentes tipos de células se desarrollan a partir de cultivos E18 después de 21 días in vitro. La inmunofluorescencia verde de Calbindin muestra las neuronas Purkinje.

La inmunofluorescencia roja para la parvalbumina en B y C muestra interneurones inhibitorios. La inmunofluorescencia roja para el canal cerrado por voltaje de sodio en E y F muestra las neuronas de gránulos. El presente protocolo es rentable y fácil de llevar a cabo.

Al final de este video, usted será capaz de recoger y cultivar neuronas cerebelosas y arreglarlos en los DIVs deseados.

Explore More Videos

Neurociencia Número 152 embrión cerebelo neurona célula Purkinje cultivo primario ratón

Related Videos

Aislamiento y cultivo de Post-Natal células de ratón cerebelosa gránulo Progenitor neuronas y las neuronas

16:04

Aislamiento y cultivo de Post-Natal células de ratón cerebelosa gránulo Progenitor neuronas y las neuronas

Related Videos

29K Views

Aislamiento y cultivo de neuronas del hipocampo de ratones prenatales

10:27

Aislamiento y cultivo de neuronas del hipocampo de ratones prenatales

Related Videos

71.4K Views

Cultivo primario de ratón neuronas dopaminérgicas

11:58

Cultivo primario de ratón neuronas dopaminérgicas

Related Videos

38.6K Views

Aislamiento y Cultura de Neuronas de la Médula Espinal de Ratones Neonatales

07:49

Aislamiento y Cultura de Neuronas de la Médula Espinal de Ratones Neonatales

Related Videos

19.7K Views

Modelado de la muerte Neuronal y la degeneración en las neuronas del gránulo cerebeloso primario de ratón

10:36

Modelado de la muerte Neuronal y la degeneración en las neuronas del gránulo cerebeloso primario de ratón

Related Videos

8.3K Views

Establecimiento de cultivos mixtos de células neuronales y gliales a partir de cerebros embrionarios de ratones para estudiar la infección y la inmunidad innata

07:41

Establecimiento de cultivos mixtos de células neuronales y gliales a partir de cerebros embrionarios de ratones para estudiar la infección y la inmunidad innata

Related Videos

3.3K Views

Generación y cocultivo de microglía primaria murina y neuronas corticales

08:47

Generación y cocultivo de microglía primaria murina y neuronas corticales

Related Videos

2.8K Views

Modelado de la lesión neuronal en neuronas cerebelosas primarias de ratón

01:59

Modelado de la lesión neuronal en neuronas cerebelosas primarias de ratón

Related Videos

310 Views

Aislamiento y cultivo de progenitores granulares de neuronas cerebelosas murinas

04:34

Aislamiento y cultivo de progenitores granulares de neuronas cerebelosas murinas

Related Videos

326 Views

Cultivo primario de neuronas aisladas del cerebelo del ratón embrionario

08:09

Cultivo primario de neuronas aisladas del cerebelo del ratón embrionario

Related Videos

20 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code