Culture des embryons de poulet ex ovo

Chick <em>ex ovo</em> Culture
JoVE Science Education
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
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JoVE Science Education Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
Chick ex ovo Culture

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06:48 min
April 30, 2023

Overview

Une force du poulet (Gallus gallus domesticus) comme organisme modèle pour la biologie du développement est que l’embryon se développe en dehors de la femelle et est facilement accessible pour la manipulation expérimentale. Plusieurs techniques permettent aux scientifiques d’examiner les embryons de poulet à l’intérieur de la coquille d’œuf (in ovo), mais l’accès à l’embryon peut être limité aux stades ultérieurs du développement. Heureusement, les poussins peuvent aussi être cultivés ex ovo, ou en dehors de la coquille d’œuf. L’avantage majeur de la culture ex ovo est un plus grand accès aux tissus qui peuvent autrement être obstrués par la coquille ou par l’orientation du poussin dans l’œuf, particulièrement pour des embryons dans leurs stades tardifs de développement.

Il y a deux stratégies principales à la culture ex ovo : la culture du jaune entier et la culture d’explant. Lors de la culture du jaune entier, la coquille est craquée et le contenu est transféré dans un simple récipient. Par contre, dans les méthodes par culture d’explant, l’embryon est excisé hors du jaune et monté dans le récipient pour maintenir la membrane sous tension, ce qui est important pour un développement normal.

Les protocoles de base pour les techniques du jaune entier et explant sont fournis dans cette vidéo, tout au long avec une discussion sur les avantages et inconvénients de la culture de poussins en dehors de leurs coquilles. Finalement, des utilisations expérimentales de la culture ex ovo sont présentées, montrant comment cette approche est utilisée pour améliorer l’accès à l’embryon pour la microscopie et la manipulation génétique d’embryons à des stades tardifs.

Procedure

Le poussin est un organisme modèle polyvalent adapte a l’étude des etapes du développement car la plupart de son développement a lieu en dehors de la mère. Néanmoins, la coquille de l’œuf empêche l’accès à l’embryon pour certaines formes d’expérimentation. Heureusement, les poussins peuvent être incubés en dehors de la coquille, ou « ex ovo », en utilisant des ustensiles communément disponibles au labo. Dans cette vidéo, vous apprendrez les principes de la culture ex ovo, les procédures pas à pas pour deux méthodes de culture différentes et les utilisations de la technique dans des études du développement.

Avant de parler de la manière d’élever des poussins ex ovo, passons en revue les principes de la technique. A l’intérieur de l’œuf, le poussin se développe en association proche avec la membrane vitelline entourant le jaune. Le volume restant est rempli d’albumine, ou blanc d’œuf, qui protège l’embryon et sert de source de protéine. La culture hors coquille peut être réalisée via la culture du jaune entier, en utilisant tout le contenu de l’œuf dans un simple récipient. D’autre part, les tissus embryonnaires peuvent être excisés et cultivés dans une culture d’explant. Ces deux techniques ont des avantages notables par rapport à l’utilisation de fenêtres dans les œufs.

Tout d’abord, le fenêtrage d’embryons de poulet aux stades tardifs est compliqué, à cause de la présence de nombreux vaisseaux sanguins essentiels qui se développent à l’intérieur des membranes qui entourent le poulet. Cela rend la méthode ex ovo préférable pour le travail avec des poussins aux stades ultérieurs.

Deuxièmement, les installations de la culture ex ovo sont plus disposées à l’imagerie de haute résolution car elles sont plus faciles à installer dans les instruments d’imagerie. De plus, retirer les embryons de leurs coquilles permet d’exposer un plus grand nombre de tissus pour les manipulations expérimentales comme la microchirurgie et la microinjection.

Vu que le poulet compte sur la coquille pour sa protection et les minéraux essentiels, l’embryon survivant sans cette structure demande une attention supplémentaire. Par exemple, le logement doit être conceptualisé pour maintenir un environnement stérile et humide, et les nutriments doivent être fournis sous forme d’albumine ou de milieu de culture. Pour une culture à long-terme, de la coquille écrasée est aussi requise comme source de calcium. En outre, vu que les tensions sur les membranes englobant l’embryon sont importantes pour un développement normal, une culture ex ovo réussie dépend aussi de la capacité du logement à maintenir la morphologie membranaire.

Maintenant que vous connaissez les bases, il est temps de sortir le poussin ! Pour préparer les œufs à une culture ex ovo du jaune entier, commencez par les incuber à 37,5 °C le temps d’atteindre le stade désiré.

Pendant que vous attendez, préparez le logement. Des plaques de Pétri, des coupelles de pesée et des hamacs sont couramment utilisés pour accueillir le contenu des œufs. D’abord, stérilisez tous les éléments par traitement UV ou à l’éthanol. Ensuite, préparez une chambre extérieure remplie avec de l’eau stérile pour maintenir l’humidité pendant l’incubation.

Lorsque les œufs sont prêts, placez les en position horizontale pour quelques minutes afin que l’embryon monte au sommet. Craquez alors le bas de la coquille et transférez précautionneusement le contenu de l’œuf dans son nouveau logement. Enfin, couvrez le réceptacle afin de maintenir l’humidité, et placez l’installation dans un incubateur jusqu’à l’âge désiré pour des procédés en aval.

Une stratégie alternative d’ex ovo, la culture d’explant, requiert quelques étapes additionnelles après l’enlèvement de l’embryon de sa coquille.

Dans cette technique, la membrane vitelline est doucement séparée du jaune, emportant l’embryon en développement avec elle.

Ensuite, la membrane est montée en vue de maintenir la tension, ce qui peut être fait en tendant le tissu autour d’un anneau de verre ou par simple adhérence à du papier filtre. Après le montage, du milieu de culture est ajouté pour couvrir le tissu, et l’embryon est placé dans une chambre humidifiée.

L’embryon explanté peut maintenant être remis dans un incubateur pour une duree allant jusqu’à 24 heures de développement supplémentaire.

Après avoir appris les principes et méthodes de la culture ex ovo, nous sommes prêts pour quelques jeux de volaille.

La culture ex ovo est particulièrement utile lorsque vous avez besoin d’altérer l’expression d’un gène dans des embryons plus âgés. Une des approches est l’électroporation, lors de laquelle un courant électrique est utilisé pour perméabiliser les membranes cellulaires pour la livraison de matériel génétique. Vu que les embryons cultivés ex ovo sont hautement accessible pour l’imagerie, l’assimilation du matériel génétique peut facilement être validée par imagerie de fluorescence des embryons entiers.

L’imagerie en temps réel de la dynamique des cellules est aussi possible en utilisant la culture ex ovo. Les cellules de cancer humain peuvent former des tumeurs en récupérant les vaisseaux sanguins de la membrane chorioallantoique du poussin, ou CAM. Après la formation de tumeur, les particules fluorescentes peuvent être injectées directement dans le flux sanguin et tracées en temps réel. L’accumulation de particules dans les tissus tumoraux peut être utilisée comme indicateur d’angiogenèse, la formation de nouveaux vaisseaux sanguins.

Même si les embryons entiers peuvent être cultivés en utilisant les techniques d’explant, quelques expériences requièrent que les tissus embryonnaires soient disséqués avant la culture. Par exemple, des tissus neuronaux en développement peuvent être excisés et cultivés sur des lamelles en verre. Après une période d’incubation, une population spécifique de cellules connue comme la crête neuronale peut être observée fuyant les tissus. Le traitement avec des agents expérimentaux et l’imagerie à laps de temps peuvent alors être utilisés pour tester les facteurs contrôlant la migration des cellules.

Vous venez de regarder le guide de JoVE sur la culture de poussins ex ovo. Cette vidéo a couvert les principes de la culture ex ovo, les bases des méthodes du jaune entier et d’explant et quelques façons dont ces techniques sont utilisées au labo aujourd’hui. Merci de nous avoir regardés !

Transcript

The chick is a versatile model organism for the study of developmental pathways because most of its development takes place outside of the mother. Nonetheless, the eggshell prevents access to the embryo for some forms of experimentation. Fortunately, chicks can be incubated outside of the shell, or “ex ovo,” using some commonly available lab supplies. In this video, you will learn about the principles of ex ovo culture, step-by-step procedures for two different culture methods, and applications of the technique in developmental studies.

Before talking about how to raise chicks ex ovo, let’s go over some principles of the technique. Within the egg, the chick develops in close association with the vitelline membrane surrounding the yolk. The remaining volume is filled with albumin, or egg white, which protects the embryo and serves as a source of protein.

Culture outside of the shell can be performed via whole yolk culture, using all of the egg contents in a simple container. Alternatively, embryonic tissues can be excised and grown in ex ovo explant culture. Both of these techniques have distinct advantages over the use of windowed eggs.

First, windowing later stage chicken embryos is complicated due the presence of many crucial blood vessels, which develop within the membranes that surround the chick. This makes the ex ovo method preferable for working with chicks at later stages.

Second, because they can fit within imaging rigs, ex ovo culture setups are more amenable to high-resolution imaging.

Furthermore, removing embryos from the shell exposes a greater number of tissues for experimental manipulations like microsurgery and microinjection.

Since the chick relies upon the eggshell for protection and essential minerals, embryo survival without this structure requires some extra care. For instance, housing must be designed to maintain a sterile, humid environment, and nutrients must be provided in the form of albumin or culture medium. For long-term culture, crushed shell is also required as a calcium source. Furthermore, since tension on the membranes supporting the embryo is important for normal development, successful ex ovo culture additionally depends upon housing that maintains normal membrane morphology.

Now that you know the basics, it’s time to chicken out! To prepare eggs for whole yolk ex ovo culture, begin by incubating them at 37.5 °C until just before the desired stage.

While you’re waiting, prepare the housing. Petri dishes, weigh boats, and hammocks are commonly used to hold the egg contents. First, sterilize all components by treatment with UV light or ethanol.

Additionally, prepare an outer chamber filled with sterile water to maintain humidity during incubation.

When the eggs are ready, set them in a horizontal position for a few minutes so the embryo rises to the top. Then crack the bottom of the shell and carefully transfer the egg contents into the housing. Finally, cover the housing vessel to maintain humidity, and place the setup into an incubator until the desired age is reached for downstream processing.

An alternative ex ovo strategy, explant culture, requires a few additional steps after removing the embryo from the shell.

In this technique, the vitelline membrane is gently separated from the yolk, carrying the developing embryo with it.

Then, the membrane is mounted in order to maintain tension, which can be done by pulling the tissue tight around a glass ring or by simple adherence to filter paper.

After mounting, culture medium is added to cover the tissue, and the embryo is placed in a humidified chamber.

The explanted embryos can now be returned to an incubator for up to 24 hours of further development.

After learning the principles and methods of ex ovo culture, we’re ready for some fowl play.

ex ovo culture is particularly useful when you need to alter gene expression in older embryos. One approach to this is electroporation, in which an electric current is used to permeabilize cell membranes for the delivery of genetic material. Since the ex ovo cultured embryos are also highly accessible for imaging, the uptake of genetic material can easily be validated through fluorescent imaging of whole embryos.

Real-time imaging of cell dynamics is also possible using ex ovo culture. Human cancer cells can form tumors by co-opting blood vessels of the chick chorioallantoic membrane, or CAM. After tumor formation, fluorescent particles can be injected directly into to the bloodstream and tracked in real time. Accumulation of particles in tumor tissue can be used as an indicator of angiogenesis, or the formation of new blood vessels.

Although whole embryos can be cultured using explant techniques, some experiments require that embryonic tissues be dissected prior to culture. For example, developing neural tissue can be excised and grown on glass cover slips. After a period of incubation, a specific population of cells known as the neural crest can be observed migrating away from the tissue. Treatment with experimental agents and timelapse imaging can then be used to test factors controlling cell migration.

You’ve just watched JoVE’s guide to chick ex ovo culture. This video covered the principles of ex ovo culture, the basics of whole-yolk and explant methods, and some of the ways these techniques are used in labs today. Thanks for watching!