24 décembre 2015
Les propriétés immunomodulatrices des cellules souches mésenchymateuses humaines (MSC) apparaissent de plus en plus pertinentes pour l'application clinique. L'utilisation d'un système de co-culture de cellules souches mésenchymateuses et leucocytes du sang périphérique pré-colorées avec le succinimidyl ester de carboxyfluorescéine fluorescent du colorant (CFSE), nous décrivons l'évaluation de l'immunomodulation MSC in vitro sur la prolifération des leucocytes et effectrice des sous-populatio
L'objectif général de cette expérience est d'évaluer les propriétés immunomodulatrices des cellules souches mésenchymateuses humaines ou msc. Cette méthode peut aider à élucider les mécanismes impliqués dans l'immunomodulation par les cellules souches mésenchymateuses humaines, un processus qui pourrait présenter un intérêt thérapeutique. Le principal avantage de cette technique est que la prolifération des effecteurs, des leucocytes, ainsi que le nombre de divisions cellulaires peuvent être évalués, démontrant que la procédure sera effectuée par chaussure.
Un technicien de mon laboratoire pour isoler les PBMC commence par diluer 25 millilitres d'un échantillon de sang total hépariné avec 25 millilitres de PBS dans un tube conique de 50 millilitres. Ensuite, ajouter 15 millilitres de Ph i, call pack, un gradient de densité, dans un nouveau tube de 50 millilitres. Puis, en tenant le tube incliné, superposer lentement la suspension cellulaire diluée sur le gradient de densité.
En prenant soin de cela, il n'y a pas de mélange entre les couches. L'une des étapes les plus critiques de cette expérience consiste à déposer le sang en couches sans perturber le gradient de densité. Cela permet de garantir une haute pureté et une faible contamination par les globules rouges des pbmc isolés.
Maintenant, séparez les cellules par centrifugation. Trois couches distinctes devraient être visibles : la couche plasmatique supérieure, la couche inférieure de gradient de densité du milieu Ficoll et une fine couche intermédiaire de PBMC.
À l’aide d’une pipette PE, retirez la couche supérieure en prenant soin de ne pas aspirer la couche d’interphase. Ensuite, utilisez une pipette de 10 millilitres pour transférer soigneusement les pbmc dans un tube conique de 50 millilitres. Mélangez les cellules avec 20 millilitres de PBS, puis centrifugez-les pour éliminer toute trace de gradient de densité.
Ensuite, lavez le culot dans 20 millilitres supplémentaires de PBS pour éliminer les plaquettes. Resuspendez le second culot dans un milieu complet pour leucocytes à une concentration de un fois 10 puissance sept cellules par millilitre. Pour préparer une co-culture de leucocytes et de CSM, préchauffez le milieu complet pour CSM à 37 degrés Celsius pendant pas plus de 30 minutes.
Ensuite, ensemencer cinq fois 10 à la puissance 4 MSC par millilitre de milieu complet pour MSC par puits dans des plaques de 24 puits pour une adhésion nocturne à 37 degrés Celsius, en laissant les cellules atteindre une confluence de 80 %. Le lendemain matin, aspirer le milieu et ajouter le nombre approprié de PBMC marqués au CFSE aux MSC dans un millilitre de milieu complet pour leucocytes. À un rapport de un MSC pour 10 PBMC, activer les cellules avec 10 microgrammes de PHA par millilitre de milieu complet pour leucocytes.
Ensuite, aux jours trois et cinq de la co-culture, transférez le nombre approprié de cellules de la co-culture dans des tubes coniques et évaluez la prolifération des leucocytes marqués au CFSE par analyse cytométrique en flux afin de réaliser un test de suppression des effecteurs. Commencez par mettre en place une co-culture M-S-C-P-B-M-C comme vient d'être démontré, avec 2,5 × 10⁶ pBMCs mis en co-culture avec 250 000 MSCs. Cela permet de s'assurer qu'il y a suffisamment de pBMCs en co-culture avec les MSCs pour la sélection des sous-populations.
Après 48 à 72 heures à 37 degrés Celsius, sélectionner les leucocytes immunomodulateurs induits par les CSM d'intérêt à l'aide des billes magnétiques appropriées. Ensuite, ajouter les lymphocytes T allogéniques marqués au CFSE et positifs pour le CD quatre dans un millilitre de milieu complet pour leucocytes par puits, selon différents rapports expérimentaux. Puis, ajouter les microbilles conjuguées anti-CD 3 28 à un rapport bille sur cellule de un pour un afin de stimuler les lymphocytes T positifs pour le CD quatre.
Le troisième jour de la co-culture, évaluer la prolifération des lymphocytes T CD4 positifs marqués au CFSE par cytométrie en flux. Les CSM sont des cellules adhérentes présentant une morphologie fibroblastique en fuseau, tandis que les PBMC et les leucocytes sont de petites cellules rondes non adhérentes, ce qui permet de distinguer clairement ces deux populations cellulaires. En co-culture, en l'absence de prolifération, les cellules marquées au CFSE apparaissent sous forme d'un seul pic fortement positif et nettement fluorescent lorsque les cellules ont été activées.
La prolifération se manifeste par plusieurs pics plus petits accompagnés d'une perte et d'un décalage vers la gauche de l'intensité de fluorescence lorsque la suppression de la prolifération a eu lieu. Par exemple, dans une co-culture de CSM, le nombre de pics plus petits diminue simultanément avec une augmentation de l'intensité de fluorescence, comme en témoigne le déplacement des pics vers la droite et l'augmentation de la netteté du pic le plus à droite, qui représente les cellules non divisées dans un test de suppression effectrice. L'effet suppresseur des CSM sur la prolifération des lymphocytes T CD4 positifs peut être évalué davantage de manière dépendante de la dose.
Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment évaluer l'immunomodulation par les cellules souches mésenchymateuses humaines. N’oubliez pas que le travail avec des cellules humaines peut présenter des risques et que des précautions doivent toujours être prises.
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Cette étude examine les propriétés immunomodulatrices des cellules souches mésenchymateuses humaines (CSM) à l'aide d'un système de co-culture avec des leucocytes sanguins périphériques. L'évaluation porte sur la prolifération des leucocytes effecteurs et des sous-populations spécifiques, mettant en évidence la pertinence thérapeutique potentielle des CSM.
L'évaluation de la fonction immunomodulatrice des CSM par des dosages de prolifération des leucocytes basés sur le CFSE fournit une méthode quantitative et reproductible pour apprécier le potentiel thérapeutique dans les maladies immuno-médiées. Cette approche soutient la validation des cibles en permettant une détection mécanistique des risques liés à l'immunosuppression induite par les CSM avant tout investissement préclinique. L'adaptabilité du dosage à des sous-populations spécifiques de leucocytes renforce la confiance prédictive dans le choix des candidats prioritaires pour les pipelines immunomodulateurs.
Le test de prolifération des leucocytes basé sur le CFSE s'intègre aux flux de travail de découverte précoce en tant qu'outil de criblage immunomodulateur fonctionnel, assurant la transition entre la validation de la cible et l'optimisation des candidats pour les thérapeutiques à base de CSM.