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Developmental Biology
In Vivo Imagerie de la morphogénèse du Muscle-tendon en pupes de drosophile
In Vivo Imagerie de la morphogénèse du Muscle-tendon en pupes de drosophile
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Developmental Biology
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JoVE Journal Developmental Biology
In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

In Vivo Imagerie de la morphogénèse du Muscle-tendon en pupes de drosophile

Full Text
12,088 Views
08:33 min
February 6, 2018

DOI: 10.3791/57312-v

Sandra B. Lemke1, Frank Schnorrer1,2

1Muscle Dynamics Group,Max Planck Institute of Biochemistry, 2Aix Marseille University,CNRS, IBDM

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a versatile method for live imaging of muscle-tendon morphogenesis in living Drosophila pupae. The technique allows researchers to observe developmental processes in real-time.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Developmental Biology
  • Imaging Techniques

Background

  • Muscle-tendon morphogenesis is crucial for understanding muscle development.
  • Live imaging provides insights into cellular interactions during development.
  • Traditional methods may not capture the dynamic processes effectively.
  • This method allows for observation in an intact organism over extended periods.

Purpose of Study

  • To study muscle-tendon interactions in Drosophila pupae.
  • To determine when muscle cells acquire twitching ability.
  • To enhance understanding of muscle development mechanisms.

Methods Used

  • Collection of white pre-pupae using a wet brush.
  • Cleaning pupae under a stereo microscope.
  • Labeling and storing pupae in a controlled environment.
  • Live imaging of developmental processes over several hours.

Main Results

  • Successful observation of muscle-tendon morphogenesis in real-time.
  • Insights into the timing of muscle cell twitching capability.
  • Demonstrated the feasibility of studying intact organisms.
  • Provided a reliable method for future research in muscle development.

Conclusions

  • The method is effective for live imaging of developmental processes.
  • It offers a new approach to studying muscle-tendon interactions.
  • This technique can advance research in muscle development.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this method?
The main advantage is the ability to study muscle-tendon morphogenesis in an intact organism over extended periods.
How are the pupae prepared for imaging?
Pupae are collected, cleaned, and oriented on a glass slide before imaging.
What developmental processes can be studied using this method?
This method allows for the study of muscle-tendon morphogenesis and muscle cell interactions.
What organism is used in this study?
The study uses living Drosophila pupae for imaging.
How long can the imaging process last?
Imaging can be conducted over many hours to capture developmental changes.
What type of microscope is used in the preparation?
A stereo microscope is used to clean and orient the pupae for imaging.

Nous présentons ici une méthode facile à utiliser et polyvalente pour exécuter direct imaging des processus de développement en général et muscle-tendon morphogenèse en particulier la vie pupes de drosophile .

L’objectif global de cette procédure est d’étudier la morphogenèse muscle-tendon chez les pupes de drosophile vivantes. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine du développement musculaire. Par exemple, comment les cellules musculaires interagissent avec leurs cibles tendineuses et quand elles acquièrent la capacité de se contracter. Le principal avantage de cette méthode est que la morphogenèse muscle-tendon peut être étudiée dans l’organisme intact, et pendant de nombreuses heures. Pour commencer le protocole, utilisez une brosse humide pour recueillir des pré-pupes blanches sur les parois des bouteilles de stocks de mouches et transférez-les sur une lame de verre. Ensuite, sous un microscope stéréoscopique, retirez les amas de nourriture pour mouches collés aux pupes avec une brosse humide et orientez la face ventrale des pupes vers la lame de verre. Jetez les pupes qui ont commencé à brunir ou qui bougent encore. Étiquetez la lame de verre avec le génotype, la date et l’heure du prélèvement. Transférez la lame dans une boîte de Pétri et ajoutez un mouchoir humide pour éviter que les pupes ne se dessèchent. Conservez les pupes dans un incubateur à 25

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