Questo protocollo descrive la raccolta sul campo e la regolare manutenzione in laboratorio di substrati seminati con alghe giganti che formano chiome per l’uso in prove di ripristino per affrontare il successo e i limiti della tecnica della “ghiaia verde” in ambienti di campo.
Le alghe che formano la chioma sono specie di base essenziali, che supportano la biodiversità e forniscono servizi ecosistemici per un valore di oltre 500 miliardi di dollari all’anno. Il declino globale delle foreste di alghe giganti a causa di fattori di stress ecologici causati dal clima sottolinea la necessità di strategie di ripristino innovative. Una tecnica di ripristino emergente nota come “ghiaia verde” mira a seminare giovani alghe su vaste aree senza un ampio lavoro subacqueo e rappresenta uno strumento di ripristino promettente grazie all’economicità e alla scalabilità. Questo video illustra un protocollo e gli strumenti per la coltura di alghe giganti, Macrocystis pyrifera. Fornisce inoltre una risorsa per ulteriori studi per affrontare i successi e i limiti di questo metodo in contesti di campo. Descriviamo metodi sul campo e in laboratorio per la raccolta del tessuto riproduttivo, la sporulazione, l’inoculazione, l’allevamento, il mantenimento e il monitoraggio dei substrati seminati con le prime fasi di vita utilizzando la tecnica della “ghiaia verde”. Il protocollo semplifica e centralizza le attuali pratiche di ripristino in questo campo per supportare ricercatori, gestori e parti interessate nel raggiungimento degli obiettivi di conservazione delle alghe.
Le alghe che formano la chioma (macroalghe brune dell’ordine Laminariales) sono specie di base importanti a livello globale, che dominano le scogliere rocciose costiere nei mari temperati e artici1. Queste alghe formano habitat biogenici strutturalmente complessi e altamente produttivi, noti come foreste di alghe, chesupportano comunità marine tassonomicamente diversificate. Le foreste di alghe in tutto il mondo forniscono molti servizi ecosistemici all’uomo, tra cui la produzione di pesca commerciale, il ciclo del carbonio e dei nutrienti e le opportunità ricreative, con un valore totale stimato di 500 miliardi di dollari all’anno3.
Nonostante il loro valore considerevole, le foreste di alghe devono far fronte a crescenti pressioni antropogeniche in molte regioni3. Il cambiamento climatico rappresenta una delle minacce più significative per le alghe a causa del riscaldamento a lungo termine degli oceani combinato con la crescente frequenza delle anomalie di temperatura 3,4,5,6,7. L’aumento delle temperature oceaniche è associato alla limitazione dei nutrienti8, mentre l’esposizione a stress da calore al di sopra delle soglie fisiologiche può provocare mortalità9. In combinazione con fattori di stress locali regionali variabili7, le popolazioni di alghe stanno diminuendo a livello globale di circa il 2% all’anno10 con perdite significative e spostamenti persistenti verso stati comunitari alternativi in alcune regioni 6,11,12,13,14. Il recupero naturale delle popolazioni di alghe da solo potrebbe non essere sufficiente a invertire l’entità delle perdite attuali e previste 15,16,17,18, sottolineando l’importanza di un ripristino attivo.
Gli attuali sforzi di ripristino delle alghe possono utilizzare una combinazione di metodologie per ristabilire queste importanti specie di base sulle scogliere rocciose costiere 3,19. Le metodologie scelte per affrontare i problemi specifici del sito dipendono dal contesto geografico, dagli ostacoli specifici al recupero delle alghe e dal contesto socio-ecologico11. Comprendere le connessioni e l’interdipendenza dei sistemi socio-ecologici è la chiave, e gli interventi che coinvolgono le istituzioni locali e ottengono il sostegno delle comunità locali aumentano la probabilità di successo degli sforzi di ripristino20.
Oltre al cambiamento climatico, la pressione degli erbivori o la competizione interspecifica guidano, diminuiscono o sopprimono la ripresa (ad esempio, da parte dei ricci di mare13, dei pesci erbivori21,22, delle alghe del tappeto erboso 9,23 o delle alghe invasive24). Il ripristino può concentrarsi sulla rimozione di questi fattori di stress biotici25, sebbene questi metodi richiedano risorse sostanziali e una manutenzione continua11. Per catalizzare il recupero delle specie di alghe, sono stati compiuti sforzi verso un approccio di semina diretta, ad esempio pesando sacchi a rete pieni di lame di alghe fertili al benthos che rilasciano zoosporenell’ambiente 26. Questo metodo, tuttavia, richiede molto tempo e richiede l’installazione e la rimozione tecnica subacquea. Altri casi si concentrano sul trapianto di grandi quantità di piante intere adulte donatrici, che possono compromettere popolazioni di donatori strettamente associati e vulnerabili e sono spesso limitati a piccole dimensioni a causa della dipendenza dal trapianto continuo27.
Per le regioni in cui la limitazione delle spore di alghe può ostacolare il recupero delle foreste di alghe a causa della frammentazione dell’habitat, è stato introdotto un approccio relativamente nuovo al ripristino delle alghe chiamato tecnica della “ghiaia verde”. La tecnica è stata sperimentata con successo presso la stazione di ricerca di Flødevigen, nel sud della Norvegia28, e ha rappresentato un’opzione promettente per il restauro grazie all’economicità e alla scalabilità. Il flusso di lavoro di questa tecnica è il seguente: (1) una soluzione di spore viene creata da tessuto fertile raccolto da alghe adulte riproduttive sul campo e quindi seminato su piccoli substrati, come la ghiaia; (2) le alghe allo stadio iniziale sono allevate in condizioni abiotiche controllate in laboratorio su substrati; (3) I substrati con sporofiti visibili sono distribuiti sul campo su barriere coralline specifiche come “ghiaia verde”, dove gli sporofiti continuano a crescere. Si noti che i tipici sforzi di trapianto di individui adulti richiedono un’installazione subacquea laboriosa e inibitoria dal punto di vista dei costi da parte dei subacquei, e la tecnica della “ghiaia verde” utilizza un semplice dispiegamento dalla superficie28.
La tecnica della “ghiaia verde” è attualmente in fase di sperimentazione da parte dei membri di numerosi gruppi di lavoro internazionali29 in diversi ambienti e diverse specie di alghe laminariane. Questo protocollo descrive le strutture, i materiali e i metodi necessari per la raccolta dei tessuti, la sporulazione, la semina, le condizioni di allevamento, la manutenzione regolare e il monitoraggio delle alghe in fase iniziale prima di implementare questa tecnica di ripristino sul campo utilizzando l’alga gigante, Macrocystis pyrifera. Questo protocollo è una risorsa preziosa per ricercatori, manager e parti interessate che cercano di fornire informazioni sui successi e sui limiti di questo metodo con M. pyrifera in diversi contesti di campo.
Il cambiamento climatico antropogenico è una minaccia crescente per la salute degli oceani del mondo 44,45,46,47,48, con conseguenti gravi perturbazioni e perdita di biodiversità 49,50,51,52. Per accelerare il ripristino degli ecosistemi degradati, le Nazioni Unite hanno dichiarato il 2021-2030 il “Decennio delle Nazioni Unite per il ripristino degli ecosistemi”, in coincidenza con il “Decennio delle scienze oceaniche delle Nazioni Unite per lo sviluppo sostenibile”, che mira a invertire il deterioramento della salute degli oceani53. In linea con questo invito globale all’azione, la Kelp Forest Alliance ha lanciato la Kelp Forest Challenge per ripristinare 1 milione di ettari e proteggere 3 milioni di ettari di foresta di alghe entro il 204054. Il ripristino marino è sottovalutato55 e gli ecosistemi di alghe ricevono molta meno attenzione rispetto ad habitat come le barriere coralline, le foreste di mangrovie e le praterie di fanerogame marine56. Il ripristino degli ecosistemi degradati ha dimostrato di essere efficace nella ricostruzione degli ecosistemi marini, ma può costare in media tra gli 80.000 e i 1.600.000 dollari per ettaro, con costi totali mediani che potrebbero essere da due a quattro volte superiori(57). Le perdite attuali e previste richiedono lo sviluppo di metodologie di ripristino delle alghe scalabili, fattibili ed economiche come interventi urgenti di conservazione.
Gli attuali sforzi di ripristino delle alghe utilizzano una combinazione di metodologie per affrontare i fattori specifici della perdita di alghe, tra cui il trapianto di alghe adulte, la semina diretta di zoospore e/o gametofiti, il controllo dei pascolatori e l’installazione di barriere artificiali11. Tuttavia, questi metodi richiedono risorse sostanziali e hanno una scalabilità limitata. Il tipico trapianto di alghe adulte richiede il laborioso dispiegamento di materiali o strutture artificiali sul benthos, da parte dei subacquei. Anche gli interventi dal basso verso l’alto per ristabilire le barriere coralline rocciose costiere, come il controllo dei concorrenti e dei pascolatori, sono limitati dai costi di manodopera in quanto si basano sulla rimozione manuale sott’acqua o sull’esclusione di questi fattori di stress biotici11. La tecnica della “ghiaia verde” supera questi limiti con un semplice dispiegamento dalla superficie, che non richiede installazioni subacquee o conoscenze tecniche e scalabilità a costi relativamente bassi28. Questo approccio innovativo fornisce uno strumento di restauro promettente, sollecitando prove approfondite in luoghi e ambienti diversi per sbloccare il suo pieno potenziale32.
Mentre sono stati documentati sforzi di ripristino di successo con la “ghiaia verde” nei fiordi riparati in Norvegia utilizzando l’alga da zucchero, Saccharina latissima26, questa tecnica è ancora in fase pilota per Macrocystis pyrifera nel Pacifico orientale. Sono necessari ulteriori studi per affrontare la sopravvivenza prevista degli espianti di M. pyrifera all’interno del suo areale. Nelle condizioni di esposizione alle onde, tipiche della crescita di M. pyrifera , la ghiaia più piccola può essere più soggetta a movimenti e abrasioni, portando a esemplari danneggiati. Inoltre, la galleggiabilità positiva fornita dalle pneumatocisti piene di gas di M. pyrifera può portare a espianti di “ghiaia verde” che vengono effettivamente portati via dal sito di ripristino e, quindi, le dimensioni e il peso della ghiaia sono fattori importanti da esplorare per questa specie. In un recente studio pilota (maggio 2022; Ensenada, Baja California, Messico), è stato osservato un successo preliminare sul campo con M. pyrifera , indicato dall’attaccamento degli apteri al substrato circostante e dalla crescita dei giovani che raggiungono 1,2 m di lunghezza dopo due mesi sul campo (Figura 4). Ciò dimostra una chiara opportunità che deve ancora essere esplorata nell’utilizzo della “ghiaia verde” per M. pyrifera nel Pacifico orientale. Questo video mostra la tecnica della “ghiaia verde” con M. pyrifera ed è una risorsa preziosa che semplifica e centralizza le pratiche esistenti nella fase di coltura del restauro per supportare gli studi che affrontano i successi e i limiti in diversi contesti di campo.
Con la tecnica della “ghiaia verde“, molte singole unità di ghiaia più piccole possono essere seminate su una scala che può aumentare la probabilità di successo rispetto agli approcci di trapianto più comuni con piante adulte. Tuttavia, l’aspetto scalabile chiave di questa tecnica è il suo semplice dispiegamento dalla superficie, che può facilitare il ripristino di grandi aree in barca. Per gli ambienti di campo in cui l’impiego di ghiaia di piccole dimensioni non è adatto, questo protocollo può essere adattato per trapiantare M. pyrifera su un’ampia gamma di substrati, tra cui ghiaia più grande o anche piccoli massi, corde che possono essere legate ad ancoraggi subacquei naturali o dispiegati, o piastrelle che possono essere imbullonate o incollate con resina epossidica marina sul fondo del mare in condizioni più esposte. Questi adattamenti non modificheranno le strutture necessarie per la coltura di M. pyrifera , ma aumenteranno successivamente i costi di diffusione.
Le perturbazioni antropiche e i cambiamenti climatici stanno attualmente mettendo a dura prova la capacità di adattamento delle popolazioni naturali. Ciò pone sfide significative agli sforzi di conservazione tradizionali che riportano gli ecosistemi ai loro stati storici 58,59,60,61,62,63. Pertanto, i quadri di conservazione si sono ampliati per includere la gestione anticipatoria che tiene conto della resilienza e della capacità di adattamento64. La gestione preventiva per affrontare i cambiamenti climatici è in corso di attuazione per le specie arboree negli ecosistemi forestali65 ed è stata proposta per ulteriori sforzi di ripristino volti a migliorare il potenziale evolutivo degli espianti 66,67. Sebbene queste strategie siano intrinsecamente più facili da manipolare in ambienti terrestri, diversi studi stanno iniziando a esplorare la loro applicazione in ambienti marini 62,68,69,70. Ad esempio, le barriere coralline sono minacciate da numerosi fattori di stress antropogenici che hanno provocato un declino senza precedenti71,72. In risposta alla perdita di queste importanti specie di base, il ripristino attivo e le tecniche di adattamento assistito sono sempre più raccomandate per conservare le barriere coralline rimanenti e le loro funzioni associate 62,73,74. Una tecnica prevede la traslocazione degli individui all’interno del loro attuale areale di distribuzione delle specie per aumentare la tolleranza allo stress da calore75. Per quanto riguarda il ripristino delle alghe che formano la chioma, la “ghiaia verde” ha un quadro personalizzabile per esplorare tecniche di adattamento assistito come la traslocazione di genotipi resilienti in aree vulnerabili, la manipolazione non genetica come l’ibridazione o l’acclimatazione degli individui allo stress ambientale62 con risultati volti a ottenere ceppi più resistenti per i programmi di ripristino76,77.
Sfruttare il sostegno locale per migliorare gli sforzi di ripristino è fondamentale per sostenere il successo della conservazione dell’ecosistema delle alghe. Il coinvolgimento delle parti interessate locali può aumentare l’adesione locale alle esigenze di ripristino 6,50 e promuovere la gestione delle coste che potrebbe successivamente tradursi in un aumento dei finanziamenti e della longevità della protezione dell’ecosistema delle alghe. Come per tutte le altre metodologie di ripristino delle alghe, quadri decisionali strutturati che integrano diversi obiettivi ecologici, socioeconomici e di conservazione contribuiranno a raggiungere risultati ottimali per gli ecosistemi di alghe e le comunità che sostengono11.
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato finanziato dal California Sea Grant Kelp Recovery Research Program R/HCE-17 a JBL e MESB, un premio di tirocinio di ricerca della National Science Foundation DGE-1735040 a PDD, The Nature Conservancy, Schmidt Marine Technology Partners, Sustainable Ocean Alliance, Tinker Foundation ad AP-L e The Climate Science Alliance Baja Working Group a RBL e JL. Ringraziamo Steven Allison, Cascade Sorte, Samantha Cunningham, Sam Weber e Caitlin Yee dell’Università della California, Irvine; Mark Carr, Peter Raimondi, Sarah Eminhizer, Anne Kapuscinski presso l’Università della California, Santa Cruz; Walter Heady e Norah Eddy presso The Nature Conservancy; Filipe Alberto e Gabriel Montecinos presso l’Università del Wisconsin, Milwaukee; Jose Antonio Zertuche-González, Alejandra Ferreira-Arrieta e Liliana Ferreira-Arrieta presso l’Universidad Autónoma de Baja California; Luis Malpica-Cruz, Alicia Abadía-Cardoso e Daniel Díaz-Guzmán di MexCal; i subacquei MexCalitos Alejandra Reyes, Monica Peralta, Teresa Tavera, Julia Navarrete, Ainoa Vilalta, Jeremie Bauer e Alfonso Ferreira; e Nancy Caruso per la consulenza tecnica. Ringraziamo l’Instituto de Investigaciones Oceanológicas, Universidad Autónoma de Baja California per aver fornito le strutture utilizzate per sviluppare il sistema di bagnomaria. Ringraziamo Ira Spitzer per i contenuti video subacquei e con droni.
0.22 µm filters | Milipore | SCGPS05RE | Natural seawater sterilization |
1 L glass bottles | Amazon | B07J6JP4D1 | Natural seawater sterilization |
1 µm filters (water + air) | Amazon | B01M1VWUWL | Natural seawater sterilization |
1'' PVC 90-Degree Elbow | Home Depot | 203812125 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
10 µm filters | Amazon | B00D04BG56 | Natural seawater sterilization |
20 µm filters | Amazon | B082WS9NPH | Natural seawater sterilization |
3x5mm tubing | Amazon | B0852HXPN6 | Option 1 Small scale – Incubator |
4×4'' Sterile Gauze | Amazon | B07NDK8XM3 | Sporulation |
4x6mm tubing | Amazon | B08BCRV1FY | Option 1 Small scale – Incubator |
5 µm filters | Amazon | B082WS9NPH | Natural seawater sterilization |
50 mL falcon tubing | Amazon | B01M04HGPJ | Sporulation |
8x10mm tubing | Amazon | B01MSM3LLZ | Option 1 Small scale – Incubator |
Air filters | Thermo Fisher | MTGR85010 | Option 1 Small scale – Incubator |
Alcohol lamp | Amazon | B07XWD9WWC | Sporulation |
Ammonium iron(II) sulfate hexahydrate ACS reagent, 99% | Sigma | 215406-100G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Aquarium Grade Gravel | Amazon | B07XRCKFBJ | Option 1 Small scale – Incubator |
Biotin powder, BioReagent, suitable for cell culture, suitable for insect cell culture, suitable for plant cell culture, 99% | Sigma | B4639-100MG | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Boric Acid, 99.8%, 10043-35-3, MFCD00011337, BH3O3, 61.83, 500g | Thermo Fisher | 5090113707 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Calcium D-Pantothenate,ge98.0% (T),C9H17NO5,137-08-6,25g,D-Pantothenic Acid Calcium Salt, P0012-25G 1/EA | Thermo Fisher | P001225G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Check valves | Amazon | B08HRZR4MM | Option 1 Small scale – Incubator |
Clear tubing 3/8'' – 10 ft | Amazon | B07MTYMW13 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
COBALT(II) SULFATE HEPTAH-100G, WARNING – California – Cancer Hazard, 93-2749-100G 1/EA | Thermo Fisher | 5090114752 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Compound microscope with camera | OMAX | M83EZ-C50S | Monitoring |
Culture flask | Thermo Fisher | 07-250-080 | Option 1 Small scale – Incubator |
Culture light | Amazon | B07RRRPJ63 | Option 1 Small scale – Incubator |
Culture stoppers | Amazon | B07DX6J7QD | Option 1 Small scale – Incubator |
Drainage connector | Amazon | B00GUZ6CV0 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
EDTA CAS Number: 6381-92-6 Molecular Formula: C10H14N2O8Na2- 2H2O Molecular Weight: 372.2 | Thermo Fisher | 50213299 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Eisco Safety Pack Graduated Cylinder Sets Class A, ASTM, Capacity: 10 mL, 25 mL, 50 mL, Graduations: 0.2 mL, 0.5 mL, 1.0 mL, Borosilicate 3.3 Glass, Autoclavable: Yes, Class: Class A, Graduated: Yes, Tolerance: 0.10 mL, 0.17 mL, 0.25 mL | Thermo Fisher | S81273 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Eisco Safety Pack Graduated Cylinder Sets Class A, ASTM, Capacity: 50 mL, 100 mL, 250 mL, Graduations: 1.0 mL, 1.0 mL, 2.0 mL, Borosilicate 3.3 Glass, Autoclavable: Yes, Class: Class A, Graduated: Yes, Tolerance: 0.25 mL, 0.50 mL, 1.0 mL | Thermo Fisher | S81275 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Eisco Safety Pack Volumetric Flask Sets – Class A, ASTM, Capacity: 10 mL, 25 mL, 50 mL, Borosilicate 3.3 Glass, Autoclavable: Yes, Class: Class A, Closure Material: Glass, Closure Size: Stopper Number: 9, 9, 13, Closure Type: Penny Stopper, Graduated: Ye | Thermo Fisher | S81271 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Filter holder | Amazon | B07LCKBKCT | Natural seawater sterilization |
Fisherbrand Graduated Cylinders, Capacity: 500 mL, Graduations: 5 mL, Borosilicate Glass, Autoclavable: Yes, Limit of Error: +/-4.0 mL, Recommended Applications: Education, Subdivision: 5 mL, S63460 1/EA | Thermo Fisher | S63460 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
FLEXACAM C1 Camera | Leica | FLEXACAM C1 | Monitoring |
Folic acid, C19H19N7O6, CAS Number59303, vitamin m, pteroylglutamic acid, vitamin b9, folvite, folacin, folacid, pteroyllglutamic acid, pteglu, folic acid, folate, 25g, 100781, CHEBI:27470, Yellow to Orange, 2004190, 441.41, OVBPIULPVIDEAOLBPRGKRZSAN | Thermo Fisher | AAJ6083314 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Free Standing 20 Gallon Utility Sink | Amazon | B094TLH19L | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
GERMANIUM DIOXIDE 99.99 10GR | Thermo Fisher | AC190000100 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Glass Graduated Cylinders, Class A Round Base, Eisco, For Use With: Measuring liquids, Capacity: 1000 mL, Graduations: 10 mL White, CH0344OWT 1/EA | Thermo Fisher | S88442 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Glass slides | Amazon | B00L1S93PS | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Glycerol phosphate disodium salt hydrate isomeric mixture | Sigma | G6501-100G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Growth containers -3.4 Qt- 3.25 Lt transparent containers with transparent lid | Container store | #10014828 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Growth light | Amazon | B086R14MFW | Option 1 Small scale – Incubator |
Hemocytometer | Amazon | B07TJQDKLJ | Sporulation |
HEPES 99.5% (titration) | Sigma | H3375-500G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Hinged plastic jars | SKS Bottle & Packaging | 40280125.01S | Option 1 Small scale – Incubator |
Inositol research grade, USP/NF For bacteriology. Optically inactive. Tested for its suitability in tissue culture. Size – 100G Storage Conditions – +15 C TO +30 C Catalog Number – 26310.01 CAS 87-89-8 | Thermo Fisher | 50247745 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Instant Ocean – 50 G | Amazon | B000255NKA | Option 1 Small scale – Incubator |
Inverted Microscope Leica DMi1 | Leica | DMi1 | Monitoring |
Iron(III) chloride hexahydrate ACS reagent, 97% | Sigma | 236489-100G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Licor Ligth Meter Data Logger | Licor | LI-250A | Monitoring |
Light/temperature HOBO data logger | Amazon | B075X2SWKN | Monitoring |
Lights 150W | Amazon | B0799DQM9V | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Manganese sulfate monohydrate meets USP testing specifications | Sigma | M8179-100G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Medium size rocks 2-3 inch, 20 pounds | Home Depot | 206823930 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Nicotinic Acid, 99%, C6H5NO2, CAS Number59676, daskil, apelagrin, acidum nicotinicum, akotin, 3carboxypyridine, niacin, 3pyridinecarboxylic acid, nicotinic acid, pellagrin, wampocap, 250g, 109591, CHEBI:15940, 1.4, 2004410, 293 deg.C (559 deg.F), 123.11, | Thermo Fisher | AAA1268330 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
p-Aminobenzoic acid 99.82% 4-aminobenzoic acid, C7H7NO2, CAS Number: 150-13-0, 25g, 0210256925 1/EA | Thermo Fisher | ICN10256925 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
PCV cement | Amazon | B001D9WRWG | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Plastic water valve | Amazon | B0006JLVE4 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Plastic water valve | Amazon | B07G5FY7X1 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Precision scale 1mg | Amazon | B08DTH95FN | Materials to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Pump for filtered air | Amazon | B0BG2BT9RX | Option 1 Small scale – Incubator |
PVC tubing 1×24'' | Home Depot | 202300505 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Quantum Light meter | Apogee Instruments | MQ-510 | Monitoring |
Refrigerated Incubator | Thermo Fisher | 15-103-1566 | Option 1 Small scale – Incubator |
Rubber Grommets | Amazon | B07YZD22ZP | Option 1 Small scale – Incubator |
Salinity refractometer | ATC | B018LRO1SU | Monitoring |
Shade mesh 6×50 ft | Home depot | 316308418 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Sodium Nitrate ge 99.0% Nitric Acid, Sodium Salt, NNaO3, CAS Number: 7631-99-4, 500g, 1/EA | Thermo Fisher | BP360500 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Soldering for aeration opening | Amazon | B08R3515SF | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Spray isporopyl alcohol | Amazon | B08LW5P844 | Sporulation |
Stainless steel sissors | Amazon | B07BT4YLHT | Sporulation |
Stainless steel tray | Amazon | B08CV33YXG | Sporulation |
Stainless steel twizzers | Amazon | B01JTZTAJS | Sporulation |
Stir Bars | Amazon | B07C4TNKXB | Materials to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Submersible circulation pump 400 GPH | Amazon | B07RZKRM13 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Submersible Spherical Quantum Sensor | Waltz | US-SQS/L | Monitoring |
Temperature gun | Infrared Thermometer 749 | B07VTPJXH9 | Monitoring |
Thiamine hydrochloride BioReagent, suitable for cell culture, suitable for insect cell culture, suitable for plant cell culture | Sigma | T1270-25G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Thymine 99% 2, 4-Dihydroxy-5-methylpyrimidine, C5H6N2O2, CAS Number: 65-71-4, 25g, 157850250 1/EA | Thermo Fisher | AC157850250 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Transparent Acrylic sheet 24×48 inch | Home Depot | 202038048 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Tubing water circulation 1''x10 ft | Amazon | B07ZC1PSF3 | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
UV light for natural seawater sterilization | Amazon | B018OI7PYS | Natural seawater sterilization |
Vacum pump | Amazon | B087XBTPVW | Natural seawater sterilization |
Vitamin B12 BioReagent, suitable for cell culture, suitable for insect cell culture, suitable for plant cell culture, 98% | Sigma | V6629-100MG | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Volumetric Flasks, Class A Glass, Eisco, with Polypropylene Stopper, Graduated, White printed markings, Capacity: 1000 mL, CH0446IWT 1/EA | Thermo Fisher | S89446 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Volumetric Flasks, Class A Glass, Eisco, with Polypropylene Stopper, Graduated, White printed markings, Capacity: 500 mL, CH0446HWT 1/EA | Thermo Fisher | S89445 | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |
Water Chiller 200-600GPM | Amazon | B07BHHP71C | Option 2 – Medium scale – Water bath systems |
Y-splitters for 4x6mm tubing | Amazon | B08XTJKFCH | Option 1 Small scale – Incubator |
Zinc sulfate heptahydrate BioReagent, suitable for cell culture | Sigma | Z0251-100G | Chemicals to create Provasoli’s Enriched Seawater (PES) and vitamins for media enrichment |