Name: Iniezione di cellule singenici del topo melanoma per determinare il loro potenziale metastatico nei polmoni (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 31 s
Description: Impara a creare un modello di melanoma metastatico nei topi C57BL/6 mediante iniezione di cellule B16-BL6 nella vena della coda. Questo metodo consente di valutare agenti terapeutici contro la metastasi e studiare la risposta immunitaria nei polmoni.

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Etica Dichiarazione: L&#39;uso di topi nella ricerca è accettabile solo nei casi in cui si potrebbe avanzare la comprensione umana della biologia fondamentale o verso l&#39;eventuale trattamento della malattia. 1. Ordine <ol><li> Acquisto femminile C57BL / 6 topi (all&#39;età di 6 - 8 settimane), 5 topi per gruppo. Consentire diversi giorni per i topi per regolare. </li></ol> 2. Preparazione di cellule B16-BL6 <ol><li> Rimuovere piastre di coltura di cellule da incubatore a 37 gradi e posto in una cappa sterile. Le piastre devono essere circa il 70% confluenti con cellule di melanoma murino B16-BL6. Una maggiore confluenza può alterare le cellule potenziale metastatico. </li><li> Aggiungere 1 ml di 0,05% tripsina-EDTA per piastra, lasciate riposare per 1 minuto, e poi aspirare la soluzione di tripsina-media. </li><li> Aggiungere 1 ml di tripsina per piastra e tornare piastre incubatrice per 10 min. </li><li> Dopo aver spostato le piastre dal termostato alla cappa sterile, aggiungere 4 ml di privo di siero Rosewell Park Memorial Institute Medium (RPMI) per ogni piatto. </li><li> Raccogliere le cellule con una sterile, pipetta motorizzato. Estrarre cellule contro il fondo della piastra, con la punta pressata a una leggera angolazione, per rompere le cellule. Ripetere più volte al fine di garantire un&#39;adeguata separazione dei grumi di cellule, che altrimenti potrebbero intasare l&#39;ago espulsione. Ricordare e trasferire in una provetta conica da 50 ml. </li><li> Utilizzare un emocitometro per determinare la densità cellulare. Mantenere il numero totale di cellule B16-BL6 costante, determinare il volume di RPMI senza siero necessario per raggiungere concentrazioni finali di 0, 0,065, 0,015, 0,25 e 0,5 milioni di cellule / ml. </li><li> Altrettanto un&#39;aliquota media del tubo da 50 ml a 15 ml provette coniche. Centrifugare le provette coniche a 2.250 xg per 5 min. Decantare il supporto. Aggiungere un volume adeguato di RPMI senza siero e confermare la densità cellulare desiderato tramite emocitometro. Regolare densities- con l&#39;aggiunta di ulteriore RPMI o filatura e risospensione in un volume- più piccolo di conseguenza. </li><li> Aliquota 500 microlitridi ciascuna sospensione cellulare in etichettato 1,8 ml provette su ghiaccio. </li></ol> 3. Tail Vein Injection <ol><li> Prendere un topo, che si tiene per la coda, e guidarla posteriore prima nel dispositivo di immobilizzazione del mouse. Con il torso nella camera principale del dispositivo di immobilizzazione, con la coda fuori, tirare il mouse verso la fine del dispositivo di immobilizzazione. Inserire il dispositivo di immobilizzazione-stantuffo, continuando a spingere fino a quando il mouse è sicuro. </li><li> Ruotare il mouse 90 gradi in modo che una delle vene coda laterale rivolta in alto. Usando un tampone di alcool, vigorosamente pulire il lato di coda del topo, in particolare quando la vena della coda è più visibile. Nota: Una buona illuminazione è essenziale per la coda efficace visualizzazione vena sul B57BL 6J /. lampade di calore o pastiglie chirurgia riscaldata, mentre non necessario, aiuterà anche aumentando il volume della vena della coda. </li><li> In una cappa sterile cultura, raccogliere 300 ml di terreni di coltura delle cellule dal / tubo di 2 milioni di cellule ml. Invertire l&#39;ago, sfogliando le side e spingendo lo stantuffo, per espellere le bolle dalla siringa. Estrarre coltura RPMI-tradursi in un volume finale di 250 microlitri. </li><li> Estendere il mouse-coda con la mano non dominante. Tenere la coda con l&#39;estremità prossimale della coda elevata con l&#39;indice della mano non dominante, e la porzione distale della coda premuto con il pollice. Nota: In questo modo, la vena della coda viene tenuto in posizione laterale, parallelo alla superficie restrainer, con una voce congruente possibile nella parte più distale della coda. </li><li> Inserire l&#39;ago nella vena della coda, verso l&#39;estremità distale, ad un angolo verso il basso minuti per cominciare, e quindi regolare l&#39;ago per abbinare l&#39;angolo della vena caudale dopo ulteriore inserimento (abbassamento fine stantuffo della siringa rispetto all&#39;ago) . </li><li> Inserire l&#39;ago di circa 1 cm nel vena della coda. Dopo l&#39;inserimento, iniziano a spingere lo stantuffo, tenendo l&#39;ago costante. Nota: Se l&#39;ago è in vena della coda e l&#39;estremità dell&#39;ago è not ostruito i media dovrebbero fluire senza ostacoli nella vena. iniezione efficace è caratterizzata da depurazione del sangue dalla vena. Se c&#39;è resistenza, o una bolla inizia a formarsi il sito in iniezione, rimuovere l&#39;ago e riprovare in una posizione più prossimale lungo la vena della coda. </li><li> Rimuovere l&#39;ago dalla vena e disfarsene. Tenere garza contro il sito di entrata per fermare le emorragie. </li><li> Rimuovere lo stantuffo dalla restrainer e posizionare il mouse nella gabbia destinatario. </li><li> Ripetere l&#39;operazione per tutte le altre concentrazioni. Nota:. Lung stabilimento foci richiede circa 2 - 3 settimane, con variabilità a seconda della linea cellulare e la dimensione desiderata dei fuochi 9 Nel frattempo, i topi devono essere monitorati per sintomi che potrebbero giustificare l&#39;eutanasia presto, come ansimante eccessivo. </li></ol> 4. Contare il polmone Foci <ol><li> Euthanize il mouse posizionando in una camera di CO 2 ed esponendo al 100% CO 2 </sub&gt; introdotto al 10-30% del volume della camera per minuto per 5 min. Seguire con una dislocazione cervicale. </li><li> Splay il mouse sul polistirolo. Utilizzando forbici chirurgiche, creare una incisione chirurgica lungo lo sterno. </li><li> Fare due incisioni aggiuntivi, sia dalla parte superiore dell&#39;incisione sterno e ramificazione verso le spalle del mouse, esponendo la gabbia toracica. </li><li> Fare due tagli, ciascuno lungo i lati laterali dello sterno, per rimuovere la gabbia toracica dal tronco, esponendo i polmoni e il cuore. </li><li> Tenendo cuore con le pinzette chirurgiche, tagliare l&#39;esofago e la trachea, liberando il cuore ei polmoni dal mouse. Mettere sotto un microscopio da dissezione, a 10X di ingrandimento, per una migliore visualizzazione. </li><li> Sezionare cuore dai polmoni e rimuovere il timo, lasciando solo i due polmoni. </li><li> Con i polmoni sotto un ambito dissezione, cominciare a contare i fuochi polmone. Ogni foci dovrebbe apparire come circolare, obtrusion marrone sulla superficie dei polmoni. <ol><li> Percoerenza tra topi, contare il numero di focolai sulla superficie di un lobo, e poi invertire tale lobo. Facendo ciascuno dei quattro lobi permette singolarmente per il conteggio più facile. </li></ol></li><li> Salvare e fissare i polmoni se l&#39;esecuzione di IHC, in caso contrario, eliminare i resti. </li></ol>

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</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Circolanti cellule tumorali da una iniezione coda vena rappresentare le metastasi che eludono i siti di crescita primaria e migrare attraverso percorsi come il sangue o il sistema linfatico, di tanto in tanto si stabilisce nei letti capillari di luoghi distanti. 14 Il protocollo sopra descritto serve da modello per la secondaria metastasi. Con un numero ottimale di cellule B16-BL6 iniettato, sperimentatori in grado di determinare l&#39;effetto relativo di un farmaco somministrato o di una popolazione di cellule immunitarie, post-neutralizzazione, sulle metastasi delle cellule tumorali. Questo protocollo ha limitazioni. Le cellule tumorali circolanti sono state selezionate per la loro capacità di metastatizzare e sono quindi non immunogenica, con livelli inferiori di maggiore di istocompatibilità di classe complessa 1 molecole. 12 Inoltre, l&#39;introduzione improvvisa e cluster di gran numero di metastasi è diverso scenario tipico in pazienti dove un piccolo numero di cellule tumorali metastatichedissipare per un periodo prolungato di tempo dalla localizzazione del tumore primario. Inoltre, le cellule tumorali per via endovenosa introdotte sono da coltura tissutale e non di origine tumore primario. Pertanto, queste cellule sono a differenza delle metastasi secondarie che derivano da alterazioni nella adesione cellulare, la migrazione, il riconoscimento immunitario e stabilimento organo ricevente. 15,16 Un protocollo alternativo sarebbe l&#39;iniezione sottocutanea di B16 / BL6 per la generazione di tumori primari e l&#39;analisi delle risultanti metastasi polmonari &quot;spontanee&quot;. Queste metastasi &quot;spontanee&quot; sono stati trovati per contenere più l&#39;eterogeneità delle loro controparti &quot;sperimentali&quot;, più strettamente corrispondono a quelli dei pazienti umani. Il protocollo è limitante nella sua capacità di determinare l&#39;influenza di un composto sperimentale di metastasi. Con una laterale iniezione vena della coda, il numero di cellule di melanoma iniettato nel sangue può essere approssimata tramite hemocytometer. Con metastasi &quot;spontanee&quot;, tuttavia, vi è una maggiore eterogeneità tra tumori, aggiungendo un&#39;ulteriore variabile per il numero di foci risultante polmonare. 16 In conclusione, la B16-BL6 modello di melanoma murino vena della coda rappresenta un modello semplice per determinare l&#39;influenza di un trattamento o immunoterapia in metastasi. In via endovenosa iniezione di cellule tumorali circolanti, i ricercatori possono replicare, in una certa misura, i pazienti post-metastasi. Considerando gli effetti distruttivi delle cellule tumorali metastatiche nei pazienti affetti da cancro, questo modello è un potente strumento per la comprensione del processo multistep di metastasi.

Metastasi è una delle principali cause di morte tra i pazienti con neoplasie. Il processo di diffusione metastatica delle cellule tumorali è poco conosciuta, ma sembra coinvolgere diversi passaggi, tra cui invasione dei tessuti adiacenti, intravasation nei vasi linfatici e vasi, la sopravvivenza e la traslocazione all&#39;interno del sistema circolatorio, stravaso dal sistema vascolare presso il sito di metastasi, l&#39;adattamento al nuovo microambiente del nuovo sito, e la colonizzazione al nuovo sito proliferazione e formazione di tumori secondari. 1 Ciascuno di questi eventi biologici coinvolgono la trasformazione, la diffusione e la sopravvivenza delle cellule tumorali metastatiche. Per esempio, la trasformazione del fenotipo epiteliale della cellula tumorale in un fenotipo mesenchimale, accoppiato con l&#39;interazione positiva con la matrice extracellulare, consentire loro di invadere i tessuti adiacenti e metastasi in altre parti del corpo. 2,3 Inoltre, questi metastatico celluledeve sopravvivere all&#39;interno del flusso sanguigno circolante e evadere la sorveglianza immunitaria dall&#39;host. 4,5 Infine, quando impiantato in un sito lontano all&#39;interno del corpo, le cellule tumorali devono adattarsi al loro microambiente per proliferare e formare tumori secondari. 6,7 Pertanto , anche se le metastasi è un fenomeno comune tra i pazienti affetti da cancro, le cellule tumorali metastatiche hanno molteplici aree di vulnerabilità che sono suscettibili di intervento terapeutico. Data la natura immunogenica del melanoma, e il recente interesse per le immunoterapie, modelli per il melanoma sono sempre più utile. 8 Nei soli Stati Uniti, il melanoma è la causa di una stima di 9.000 morti l&#39;anno. 9 sedi comuni di metastasi del melanoma sono ossa, cervello , fegato e polmoni. La maggior parte delle metastasi a siti distanti avviene attraverso il flusso sanguigno. Circolanti cellule tumorali nel sangue deve eludere spazio immunitario, raggiungere un letto capillare di un organo distale einvadono attraverso le cellule endoteliali dei vasi sanguigni per stabilire correttamente se stessi. 4-7,10, 11 Per simulare i fenomeni comuni e virulenti di metastasi, è stato creato la linea cellulare B16-BL6 murino. Un defunto della parentali C57BL / 6 linea di cellule di melanoma B16-F0, B16-BL6 è il prodotto finale di 10 selezioni successive per metastasi polmonari da iniezione endovenosa (con conseguente B16-F10), seguita da 6 selezioni successive per la penetrazione della membrana della vescica. 12 come tale, è una linea cellulare di melanoma affidabile per la creazione di foci metastatici nel topo, in particolare quando iniettato per via endovenosa. 13 Dopo l&#39;iniezione di una quantità sufficiente di B16-BL6 cellule nella vena della coda di un B57BL / 6 del mouse, seguito da due o più settimane per permettere impianto e la crescita delle cellule B16 / BL6, foci metastatici formerà nei polmoni. Al momento l&#39;eutanasia e l&#39;ispezione al microscopio dissezione, il numero difoci presente individuo può essere quantificato. Questo, a sua volta, può essere utilizzato per stabilire un effetto dose-metastasi, come il numero di cellule B16-BL6 iniettati è correlato al numero di foci formata sulla superficie dei polmoni. Questo modello è conosciuto come &quot;metastasi sperimentale&quot;, in cui le cellule conosciute metastatico vengono introdotti direttamente nel flusso sanguigno, favorendo una diffusione rapida e prevedibile e stabilimento nel polmoni, fegato, o di altro organo di indagine. Questo è in contrasto con &quot;metastasi spontanee&quot;, in cui le cellule tumorali vengono impiantati, spesso per via sottocutanea, e metastasi provengono da organicamente capannone cellule tumorali. 14,15 E &#39;importante per iniettare una quantità appropriata di cellule B16 / BL6 nelle vene coda dei topi. Troppi, ei polmoni saranno coperti con metastasi e la vicina focolai saranno indistinguibili gli uni dagli altri. Troppo pochi, e l&#39;influenza di un agente terapeutico sarà indistinguibile causa intrinseca varizioni tra le iniezioni. Per ottenere un numero ottimale di foci sui polmoni dei C57BL 6 topi /, è necessario correlare il numero di cellule iniettate con la quantità di foci metastatici stabilito sulla superficie dei polmoni tenendo conto la distinguibilità dei singoli foci. Questo protocollo dimostrerà un modello murino di melanoma metastatico in topi C57BL / 6.

<table><tbody><tr><td>Trypsin</td><td>Corning</td><td>MT25052CV</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 Medium</td><td>Corning</td><td>MT15040CM</td><td></td></tr><tr><td>Phase Contraast Hemacytometer</td><td>Hausser</td><td>02-671-54</td><td></td></tr><tr><td>Siringhe per insulina micro-fine IV BD</td><td></td><td>14-829-1D</td><td></td></tr><tr><td>Tamponi sterili per la preparazione dell'alcol</td><td>Fisherbrand</td><td>22-363-750</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Resrain</td><td>Braintree Scientific</td><td>NC9999969</td><td>La scelta del sistema di ritenuta dipende dall'età/dimensione dei topi</td></tr><tr><td>Pad riscaldante</td><td>Harry Schein</td><td>NC0012697</td><td>Opzionale</td></tr></tbody></table>

iniezione di cellule singenici del topo melanoma per determinare il loro potenziale metastatico nei polmoni

Injection of Syngeneic Murine Melanoma Cells to Determine Their Metastatic Potential in the Lungs

Circa il 90% dei decessi per cancro umano sono legati alle metastasi. Nonostante la prevalenza e il danno relativo delle metastasi, mancano terapie per il trattamento o la prevenzione. Riportiamo un metodo per l'instaurazione di metastasi polmonari nei topi, utile per lo studio di questo fenomeno. L'iniezione della vena caudale di topi B57BL/6J con B16-BL6 è tra i modelli più utilizzati per le metastasi del melanoma. Alcune delle cellule tumorali circolanti si stabiliscono nei polmoni del topo, creando focolai metastatici "sperimentali". Con questo modello è possibile misurare gli effetti relativi degli agenti terapeutici sullo sviluppo delle metastasi tumorali. La differenza nei focolai polmonari enumerati tra topi trattati e non trattati indica l'efficacia della neutralizzazione delle metastasi. Tuttavia, prima dell'indagine su un agente terapeutico, è necessario determinare un numero ottimale di cellule B16-BL6 iniettate per l'analisi quantitativa dei focolai metastatici. L'iniezione di troppe cellule può comportare una sovrabbondanza di focolai metastatici, compromettendo la corretta quantificazione e sovraccaricando gli effetti delle terapie antitumorali, mentre l'iniezione di un numero insufficiente di cellule ostacolerà il confronto tra trattati e controlli.

Su ispezione visiva, la variazione foci superficie è evidente. Contando il numero di tumori sotto un microscopio da dissezione dovrebbe produrre una relazione lineare tra il numero di cellule tumorali iniettate e il numero di foci risultante e numerabile. Utilizzando un numero ottimale di cellule iniettabili, l&#39;obiettivo è quello in cui i polmoni non sono completamente coperti, in quanto sono a 500.000 cellule / ml in figura 1A, e non troppo scarsamente coperte, come sono a 62.500 cellule / ml e 125.000 cellule / ml. Questo è anche quantificabile dalla correlazione lineare (Figura 1B). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54039/54039fig1.jpg" /> Figura 1. Lung Foci risultante dalla vena della coda hanno iniettato cellule B16 / BL6. (A) foci polmone può essere visualizzata sulla superficie dei polmoni da C57BL / 6 topi come masse circolari marrone (foci rappresentante alle frecce). Come le tanelità della coltura cellulare iniettato (sopra ogni immagine) aumenta, così fa il corrispondente numero di focolai risultante polmone (sotto ogni immagine). I polmoni del mouse con la più alta densità di cellule iniettate ha la maggiore copertura visiva di foci del polmone. Barre di scala rappresentano 20 mm. (B) enumerazione dei fuochi polmone rispetto alla densità di coltura cellulare. Esiste una relazione approssimativamente lineare sopra 125.000 cellule / ml, come determinato da emocitometro. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54039/54039fig1large.jpg" target="_blank">Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a>

Le metastasi svolgono un ruolo profondo nella virulenza del cancro, rappresentando circa il 90% dei decessi. Riportiamo un protocollo per un modello di melanoma metastatico nel topo che è utile per determinare l'efficacia degli agenti terapeutici contro questo fenomeno clinico.

Iniezione di cellule singenici del topo melanoma per determinare il loro potenziale metastatico nei polmoni

Approximately 90% of human cancer deaths are linked to metastasis.  Despite the prevalence and relative harm of metastasis, therapeutics for treatment or ...

L'obiettivo generale di questa procedura è dimostrare un metodo per la produzione di tumori metastatici nei topi black six. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande fondamentali nel campo dell'immunoterapia, come ad esempio in che modo gli agenti sperimentali influenzano la risposta immunitaria nei polmoni. Il vantaggio principale di questa tecnica è che riproduce metastasi sperimentali.Pertanto, i risultati sono affidabili e relativamente consistenti. Per iniziare, posizionare colture di cellule di melanoma B16-BL6, che dovrebbero essere a circa il 70% di confluenza, in una cappa sterile. Successivamente, aggiungere un millilitro di tripsina EDTA 0,5% in ogni piastra e lasciare le cellule per un minuto.Dopo aver aspirato questa soluzione, procedere aggiungendo un millilitro di tripsina in ogni piastra, quindi reinserire le cellule nell'incubatore. Dopo 10 minuti, trasferire le cellule in una cappa sterile e aggiungere quattro millilitri di mezzo RPMI privo di siero in ogni piastra. Successivamente, raccogliere le cellule utilizzando una pipetta motorizzata sterile.Per rompere gli aggregati che potrebbero ostruire l'ago di espulsione, premere la punta della pipetta contro il fondo della piastra ed espellere le cellule. Dopo aver ripetuto questo procedimento diverse volte, raccogliere nuovamente le cellule e trasferirle in un tubo conico da 15 millilitri. Prelevare quindi un campione della sospensione cellulare, introdurlo in un emocitometro e determinare la densità cellulare.Aliquota equamente la sospensione cellulare in quattro provette da 15 millilitri. Quindi centrifugare le provette e successivamente decantare il soprannatante. Procedere etichettando ciascuna provetta con una diversa densità cellulare: 0, 0,063, 0,125, 0,25 o 0,5 milioni di cellule per millilitro.Quindi aggiungere un volume appropriato di RPMI senza siero a ciascun tubo conico per ottenere queste concentrazioni finali. Verificare le densità cellulari desiderate utilizzando un emocitometro. Successivamente, distribuire 500 microlitri di ciascuna sospensione in tubi da 1,8 millilitro etichettati, posti sul ghiaccio.Dopo aver preparato tutte le sospensioni cellulari B16-BL6, selezionare un topo. Tenendolo per la coda, guidare l'animale all'indietro in un dispositivo di contenimento. Quando il tronco del topo si trova nella camera principale e la coda è all'esterno dell'apparecchio, procedere tirando l'animale verso l'estremità del contenitore.Successivamente, inserire lo stantuffo di bloccaggio e continuare a spingere fino a quando il topo non è ben fermo. Una volta posizionato l'animale, ruotare il topo di 90 gradi in modo che una delle vene laterali della coda sia rivolta verso l'alto. Quindi utilizzare un batuffolo di alcol per pulire energicamente il lato della coda del topo dove la vena è più visibile.Per preparare l'iniezione, raccogliere prima 300 microlitri della sospensione contenente 0,5 milioni di cellule per millilitro in una siringa. Successivamente, eliminare le bolle d'aria dalla siringa capovolgendola, picchiettando lateralmente e spingendo lo stantuffo. Una volta rimosse le bolle, espellere parte della coltura cellulare in modo da ottenere un volume finale di 250 microlitri nella siringa.Procedere all'estensione della coda del mouse con la mano non dominante. Tenerla in modo che l'indice sollevi l'estremità prossimale della coda e il pollice prema sulla porzione distale. Con la mano dominante, inserire l'ago nella vena dirigendolo verso l'estremità distale della coda con un lieve angolo verso il basso.Quindi inserire ulteriormente l'ago, regolandolo in modo che corrisponda all'angolazione della vena della coda. Dopo aver inserito l'ago di circa un centimetro nella vena della coda, iniziare a spingere lo stantuffo mantenendo ferma la siringa. Arrestare qualsiasi sanguinamento premendo una garza sul sito di inserzione.Dopo aver espulso la sospensione cellulare, rimuovere l'ago dalla vena e smaltirlo. Successivamente, rimuovere lo stantuffo dal contenitore di contenimento e posizionare il topo in una gabbia ricevente. Questo protocollo aveva lo scopo di identificare il numero ottimale di cellule B16-BL6 da iniettare per creare un modello utile di melanoma metastatico.Qui sono mostrati i focolai sperimentali indicati dalle frecce, formatisi nei polmoni due o tre settimane dopo l'iniezione di cinque diverse densità cellulari. Quando sono state iniettate 500.000 cellule per millilitro, i focolai hanno completamente ricoperto i polmoni. Nell'esempio qui mostrato, sono stati contati 102 focolai.Al contrario, i polmoni erano coperti solo raramente da focolai quando venivano iniettati 62.500 cellule per millilitro o 125.000 cellule per millilitro. Rispettivamente, queste densità hanno prodotto conteggi di focolai polmonari pari a uno e 17. Mediante questo metodo, si è determinato che la concentrazione ottimale di cellule da iniettare era di 250.000 cellule per millilitro.Questa densità ha prodotto polmoni con circa 65 focolai, un numero tale per cui gli organi non erano né completamente coperti né troppo scarsamente coperti da focolai. Un'ulteriore enumerazione di questi dati, riportata in grafico, dimostra una relazione approssimativamente lineare tra il numero di focolai polmonari e la densità della coltura cellulare superiore a 125.000 cellule per millilitro, come mostrato qui. Una volta acquisita, questa tecnica può essere eseguita in meno di un'ora, a seconda del numero di topi, se eseguita correttamente.Nel tentativo di eseguire la procedura, è importante ricordare di cercare di iniettare un numero equivalente di cellule per topo. Dopo questa procedura, possono essere eseguiti altri metodi, come la somministrazione di farmaci, per rispondere a domande su come potenziali terapie influenzino il numero di focolai risultanti. Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo del cancro per esplorare i costituenti del cancro metastatico nel melanoma nei topi black six.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come raccogliere e preparare cellule B16-BL6, immobilizzare i topi, preparare gli aghi e iniettare un numero equivalente di cellule in ogni vena della coda. Non dimenticare che lavorare con colture di mammiferi e aghi può essere estremamente pericoloso, e che è sempre necessario adottare precauzioni, come evitare punture da ago e indossare dispositivi di protezione individuale.

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