Name: Doppia scansione Raster Photoacoustic Small-Animal Imager per la visualizzazione vascolare (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-07-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 14 s
Description: Scopri l'imaging fotoacustico a doppia scansione raster per la visualizzazione vascolare in vivo nei piccoli animali. Questo metodo combina imaging a campo largo e in tempo reale per la ricerca biomedica.

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Gli autori vorrebbero riconoscere il sostegno finanziario della National Natural Science Foundation of China (61822505; 11774101; 61627827; 81630046), The Science and Technology Planning Project of Guangdong Province, China (2015B020233016) e The Science and Technology Program of Guangzhou (n. 2019020001).

Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti nel rispetto delle linee guida fornite dal comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali della South China Normal University, Guangzhou, Cina.
1. Configurazione del sistema
<ol><li>Percorso ottico (Figura 1)<ol>
<li>Utilizzare un laser a impulsi da 532 nm come sorgente laser di sistema. Impostare la velocità di ripetizione del laser su 10 kHz, l'energia di uscita al 100% e l'impostazione del trigger sul trigger esterno utilizzando un programma definito dall'utente.</li>
		<li>Accoppiare il raggio laser alla fibra monomodale (SMF) tramite un accoppiatore in fibra ottica (FC1). Collimare il raggio laser utilizzando un collimatore in fibra ottica (FC2) su uno stadio motorizzato bidimensionale (Motore, velocità massima: 20 mm/s).</li>
		<li>Deviare il raggio laser utilizzando uno scanner galvanometrico a due assi (Galva). Utilizzare uno specchio spostabile (M1) per riflettere la trave. Mettere a fuoco il fascio attraverso una lente × 4 punti (OL, apertura numerica: 0,1).</li>
		<li>Utilizzare un supporto per traduttori XY (TM) per fissare il trasduttore ad ultrasuoni cavo autoprodotto (UT, frequenza centrale: 25 MHz; Larghezza di banda: oltre il 90%; Foro centrale: 3 mm) sul fondo dell'OL12. Passare il fascio focalizzato attraverso il foro centrale del trasduttore ad ultrasuoni.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Percorso di scansione<ol>
<li>Bloccare galva utilizzando un array di gate programmabile sul campo (FPGA 2) durante WIM. Impostare l'intervallo di scansione e la velocità di scansione appropriati in base a un programma definito dall'utente.</li>
		<li>Bloccare il motore utilizzando un array di gate programmabile sul campo (FPGA 1) durante RIM. Impostare la frequenza di scansione e il numero di punti di scansione utilizzando FPGA 2. Utilizzare un programma definito dall'utente per controllare l'avvio e interrompere la scansione.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Acquisizione dati<ol>
<li>Utilizzare un amplificatore da 50 dB (AMP) per amplificare il segnale PA. Digitalizzare il segnale tramite la scheda di acquisizione dati (DAQ). Ottenere il segnale di innesco tramite FPGA 1 o FPGA 2.</li>
		<li>Utilizzare un'unità di elaborazione grafica (GPU) per elaborare i dati e visualizzare le immagini in parallelo13.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Sistema di imaging CCD<ol>
<li>Utilizzare un LED bianco a forma di anello (temperatura del colore: 6500 K; Illuminamento: 40000 lux; Diametro: 7,5 cm) come fonte di illuminazione. Rimuovere M1, utilizzare uno specchio fisso (M2) per riflettere la luce.</li>
		<li>Registra le immagini utilizzando una fotocamera CCD (6,3 milioni di pixel) sul sistema di imaging PA. Visualizzare le immagini con un software di visualizzazione.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Allineamento del sistema
<ol><li>Selezionare un serbatoio dell'acqua (10 cm × 10 cm × 4,4 cm; finestra inferiore: 3 cm × 3 cm). Coprire l'intero serbatoio dell'acqua utilizzando una membrana in polietilene (membrana spessa: 10 μm). Aggiungere acqua ultrapura sufficiente.</li>
	<li>Posizionare il serbatoio dell'acqua sulla fase di lavoro.</li>
	<li>Accendere l'interruttore laser. Selezionare il programma di controllo laser. Preriscaldare per 5 minuti. Premere il tasto "ON" sull'interruttore di pompaggio. Impostare i parametri laser come da passaggio 1.1.1. Apri il deflettori del laser.</li>
	<li>Selezionare il programma raccolto dalla riga A. Premere il pulsante "Start" per acquisire il segnale a punto singolo e visualizzare l'ampiezza e lo spettro del segnale di linea A corrente.</li>
	<li>Posizionare una lama sul fondo del serbatoio dell'acqua. Immergere la parte inferiore dell'UT nel serbatoio dell'acqua per l'accoppiamento acustico. Evitare bolle nella parte inferiore dell'UT.</li>
	<li>Regolare la posizione di Galva, regolare il traduttore XY tra UT e OL per evitare il segnale di oscillazione e assicurarsi che sia confocale.</li>
	<li>Regolare l'altezza della fase di lavoro per massimizzare l'ampiezza del segnale e determinare la posizione di messa a fuoco.</li>
</ol>3. Esperimento animale
<ol><li>Utilizzare un mouse BALB/c di 5\u20126 settimane con un peso corporeo di 20\u201230 g.</li>
	<li>Anestetizzare l'animale usando uretano (1 g/kg) iniettato per via intraperitoneale prima dell'esperimento.</li>
	<li>Condurre la transizione tra WIM e RIM.<ol>
<li>Utilizzare un trasduttore ad ultrasuoni planare. Radere la pelliccia sul retro del mouse usando un trimmer e una crema depilatoria. Posizionare il mouse sul supporto (8 cm × 2,8 cm × 2 cm) in posizione soggetta.</li>
		<li>Consentire alla regione di imaging di essere a contatto con la membrana in polietilene utilizzando il gel ad ultrasuoni. Evitare bolle nella parte di contatto.</li>
		<li>Posizionare il supporto sul palco di lavoro per l'accoppiamento acustico. Seguire i passaggi 2.3\u20122.4 per avviare il laser e raccogliere il segnale di linea A. Seguire i passaggi 2.6\u20122.7 per allinearli. Premere "Interrompi" per terminare la raccolta dopo l'allineamento.</li>
		<li>Selezionare il programma WIM. Assegnare un nome alla cartella appena creata. Impostare il parametro di scansione su 20 mm/s nella scheda "Velocità di scansione", "20 mm*20 mm" nella scheda "Area di scansione" e "20" nella scheda "Passo". Fare clic sul pulsante Raccogli per avviare la scansione.</li>
		<li>Fare clic sul pulsante Interrompi per terminare la scansione dopo l'acquisizione. Fate clic su Torna a zero (Return to Zero) per portare il motore a zero. Chiudi il deflettori laser. Impostare l'impostazione del trigger sul trigger interno. Premere il tasto OFF per l'interruttore di pompaggio.</li>
		<li>Sostituire il trigger WIM come trigger RIM e collegarlo al trigger laser esterno. Premere il tasto ON per l'interruttore di pompaggio. Impostare l'impostazione del trigger sul trigger esterno. Fare clic sul pulsante Esci per uscire dal programma WIM.</li>
		<li>Utilizzare il passaggio 2.4 per raccogliere il segnale della linea A. Apri il deflettori laser. Seguire i passaggi 2.6\u20122.7 per allinearli. Premere Interrompi per terminare la raccolta dopo l'allineamento.</li>
		<li>Selezionate il programma RIM. Assegnare un nome alla cartella appena creata. Fare clic sul pulsante Raccogli per avviare la scansione.</li>
		<li>Fare clic sul pulsante Interrompi per terminare la scansione dopo aver completato l'acquisizione. Fate clic sul pulsante Esci (Exit) per uscire dal programma RIM.</li>
		<li>Eutanasia l'animale usando la lussazione cervicale al termine dell'imaging.</li>
	</ol></li>
	<li>Condurre WIM di visualizzazione vascolare.<ol>
<li>Utilizzare un trasduttore ad ultrasuoni focalizzato (frequenza centrale: 25 MHz; Larghezza di banda: oltre il 90%; Lunghezza focale: 8 mm). Rimuovere i capelli dell'orecchio o del cuoio capelluto dei topi.<ol>
<li>Usa un bisturi per fare una piccola incisione sul lato laterale della parte superiore temporale cranica del topo (profondità al cranio). Usa le forbici oftalmiche per iniziare da questa incisione. Tagliare il cuoio capelluto intorno al lato esterno del cranio. Comprimere il punto di sanguinamento per interrompere il sanguinamento. Lavare la ferita con la normale soluzione salina. Posizionare il mouse sul supporto.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Consentire alla regione di imaging di essere a contatto con la membrana in polietilene utilizzando il gel ad ultrasuoni. Evitare bolle nella regione di contatto (Figura complementare 1).</li>
		<li>Posizionare il supporto sul palco di lavoro per l'accoppiamento acustico. Utilizzare i passaggi 2.3\u20122.4 per aprire il laser e raccogliere il segnale di linea A. Utilizzare il passaggio 2.6\u20122.7 per allinearlo. Premere Interrompi per terminare la raccolta dopo l'allineamento.</li>
		<li>Selezionare programma WIM. Assegnare un nome alla cartella appena creata. Impostare il parametro di scansione su "10 mm/s" nella scheda "Velocità di scansione", "10 mm*10 mm" sotto la scheda "Area di scansione" e "10" nella scheda "Passo". Fare clic sul pulsante Raccogli per avviare la scansione.</li>
		<li>Fare clic sul pulsante Interrompi per terminare la scansione dopo aver completato l'acquisizione. Fate clic sul pulsante Torna a zero (Return to Zero) per fare in modo che il motore ritorni a zero. Fare clic sul pulsante Esci per uscire dal programma WIM.</li>
		<li>Eutanasia l'animale al termine della procedura mentre l'animale è ancora in anestesia.</li>
	</ol></li>
	<li>Condurre RIM per il monitoraggio dinamico dei piccoli animali.<ol>
<li>Radersi i capelli dell'addome del topo. Posizionare il mouse sul supporto in posizione supina.</li>
		<li>Consentire alla regione di imaging di essere a contatto con la membrana in polietilene utilizzando il gel ad ultrasuoni. Evitare bolle nell'area di contatto.</li>
		<li>Posizionare il supporto sul palco di lavoro per l'accoppiamento acustico. Eseguire i passaggi 2.3\u20122.4 per avviare il laser e raccogliere il segnale di linea A. Eseguire il passaggio 2.6\u20122.7 per allinearlo. Premere Interrompi per terminare la raccolta dopo l'allineamento.</li>
		<li>Selezionate il programma RIM. Assegnare un nome alla cartella appena creata. Fare clic sul pulsante Raccogli per avviare la scansione.</li>
		<li>Fare clic sul pulsante Interrompi per terminare la scansione dopo aver completato l'acquisizione. Fate clic sul pulsante Esci (Exit) per uscire dal programma RIM.</li>
	</ol></li>
	<li>Utilizzate i dati RIM per la ricostruzione della proiezione di ampiezza massima (MAP) lungo la direzione di profondità per programma definito dall'utente. Osserva i cambiamenti dinamici nell'animale.</li>
</ol>

<ol><li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-impulse+panoramic+photoacoustic+computed+tomography+of+small-animal+whole-body+dynamics+at+high+spatiotemporal+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Single-impulse panoramic photoacoustic computed tomography of small-animal whole-body dynamics at high spatiotemporal resolution.</a> Nature Biomedical Engineering. 1 (5), 0071(2017).</li>
<li>Jeon, S., Kim, J., Lee, D., Baik, J. W., Kim, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+on+practical+photoacoustic+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Photoacoustics%22%5BJournal%5D)">Review on practical photoacoustic microscopy.</a> Photoacoustics. 15, 100141(2019).</li>
<li>Baik, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Super+wide-field+photoacoustic+microscopy+of+animal+and+humans+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Transactions+on+Medical+Imaging%22%5BJournal%5D)">Super wide-field photoacoustic microscopy of animal and humans in vivo.</a> IEEE Transactions on Medical Imaging. 39 (4), 975-984 (2019).</li>
<li>Omar, M., Aguirre, J., Ntziachristos, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optoacoustic+mesoscopy+for+biomedicine%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Optoacoustic mesoscopy for biomedicine.</a> Nature Biomedical Engineering. 3 (5), 354-370 (2019).</li>
<li>Lin, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-breath-hold+photoacoustic+computed+tomography+of+the+breast%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Single-breath-hold photoacoustic computed tomography of the breast.</a> Nature Communications. 9 (1), 2352(2018).</li>
<li>Yang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wide-field+monitoring+and+real-time+local+recoding+microvascular+networks+on+small+animals+with+a+dual-raster-scanned+photoacoustic+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biophotonics%22%5BJournal%5D)">Wide-field monitoring and real-time local recoding microvascular networks on small animals with a dual-raster-scanned photoacoustic microscope.</a> Journal of Biophotonics. 13 (6), 202000022(2020).</li>
<li>Sun, J., Zhou, Q., Yang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Label-free+photoacoustic+imaging+guided+sclerotherapy+for+vascular+malformations%3A+a+feasibility+study%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Express%22%5BJournal%5D)">Label-free photoacoustic imaging guided sclerotherapy for vascular malformations: a feasibility study.</a> Optics Express. 26 (4), 4967-4978 (2018).</li>
<li>Xu, D., Yang, S., Wang, Y., Gu, Y., Xing, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+and+high-resolving+photoacoustic+dermoscopy+of+human+skin%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Optics+Express%22%5BJournal%5D)">Noninvasive and high-resolving photoacoustic dermoscopy of human skin.</a> Biomedical Optics Express. 7 (6), 2095-2102 (2016).</li>
<li>Zhang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Miniaturized+photoacoustic+probe+for+in+vivo+imaging+of+subcutaneous+microvessels+within+human+skin%5BTitle%5D)+AND+%22Quantitative+Imaging+in+Medicine+and+Surgery%22%5BJournal%5D)">Miniaturized photoacoustic probe for in vivo imaging of subcutaneous microvessels within human skin.</a> Quantitative Imaging in Medicine and Surgery. 9 (5), 807-814 (2019).</li>
<li>Chen, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultracompact+high-resolution+photoacoustic+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Letters%22%5BJournal%5D)">Ultracompact high-resolution photoacoustic microscopy.</a> Optics Letters. 43 (7), 1615-1618 (2018).</li>
<li>Lan, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-speed+widefield+photoacoustic+microscopy+of+small-animal+hemodynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Optics+Express%22%5BJournal%5D)">High-speed widefield photoacoustic microscopy of small-animal hemodynamics.</a> Biomedical Optics Express. 9, 4689-4700 (2018).</li>
<li>Ma, H., Yang, S., Cheng, Z., Xing, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoacoustic+confocal+dermoscope+with+a+waterless+coupling+and+impedance+matching+opto-sono+probe%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Letters%22%5BJournal%5D)">Photoacoustic confocal dermoscope with a waterless coupling and impedance matching opto-sono probe.</a> Optics Letters. 42 (12), 2342-2345 (2017).</li>
<li>Kang, H., Lee, S. W., Lee, E. S., Kim, S. H., Lee, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+GPU-accelerated+processing+and+volumetric+display+for+wide-field+laser-scanning+optical-resolution+photoacoustic+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Optics+Express%22%5BJournal%5D)">Real-time GPU-accelerated processing and volumetric display for wide-field laser-scanning optical-resolution photoacoustic microscopy.</a> Biomedical Optics Express. 6 (12), 4650-4660 (2015).</li>
</ol>

Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti secondo le linee guida e i regolamenti approvati dal Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali. Gli autori non hanno interessi finanziari rilevanti nel manoscritto e nessun altro potenziale conflitto di interessi da rivelare.

Qui abbiamo presentato un doppio imager fotoacustico a scansione raster per la visualizzazione vascolare non invasiva che è stato progettato e sviluppato per catturare la struttura della vascolarizzazione e il relativo cambiamento dinamico del sangue. Il vantaggio di DRS-PAI è che integra il WIM e il RIM in un unico sistema, il che rende più facile studiare la struttura della rete dinamica vascolare e vascolare dei piccoli animali. Il sistema può fornire una visualizzazione vascolare ad ampio campo ad alta risoluzione e ...

Nel campo biomedico di base, i piccoli animali possono simulare la funzione fisiologica umana. Pertanto, l'imaging di piccoli animali svolge un ruolo importante nel guidare la ricerca di malattie omologhe umane e nella ricerca di un trattamentoefficace 1. L'imaging fotoacustico (PAI) è una tecnica di imaging non invasiva che combina i vantaggi dell'imaging ottico e dell'imaging adultrasuoni 2. La microscopia fotoacustica (PAM) è un prezioso metodo di imaging per la ricerca di base di piccoli animali3. PAM può facilmente ottenere immagini ad alta risoluzione, penetrazione profonda, ad alta specificità e ad alto contrasto basate sull'eccitazione ottica e sul rilevamento degli ultrasuoni4.
Un laser a impulsi con una lunghezza d'onda specifica viene assorbito da cromofori endogeni dei tessuti. Successivamente, la temperatura del tessuto aumenta, il che si traduce nella produzione di onde ultrasoniche foto indotte. Le onde ultrasoniche possono essere rilevate da un trasduttore ad ultrasuoni. Dopo l'acquisizione del segnale e la ricostruzione dell'immagine, la distribuzione spaziale dell'assorbitore può essereottenuta 5. Da un lato, la visualizzazione della rete vascolare di organi interi richiede un ampio campo visivo. Il processo di scansione a campo largo di solito richiede molto tempo per garantire un'altarisoluzione 6,7,8. D'altra parte, osservare le attività emodinamiche dei piccoli animali richiede immagini veloci in tempo reale. L'imaging in tempo reale è utile per studiare i segni vitali dei piccoli animali in temporeale 9,10,11. Il campo visivo dell'imaging in tempo reale è in genere sufficientemente piccolo da garantire un alto tasso di aggiornamento. Pertanto, c'è spesso un compromesso tra il raggiungimento di un ampio campo visivo e l'imaging in tempo reale. In precedenza, due diversi sistemi erano utilizzati per l'imaging a campo largo o l'imaging in tempo reale, separatamente.
Questo lavoro riporta un doppio imager fotoacustico a scansione raster (DRS-PAI), che integrava l'imaging a campo largo basato su uno stadio di traduzione motorizzato bidimensionale e l'imaging in tempo reale basato su uno scanner galvanometrico a due assi. La modalità di imaging a campo largo (WIM) viene eseguita per mostrare la morfologia vascolare. Per la modalità di imaging in tempo reale (RIM), attualmente ci sono due funzioni. Innanzitutto, RIM può fornire immagini B-scan in tempo reale. Misurando lo spostamento della vascucolatura lungo la direzione di profondità, si possono rivelare le caratteristiche della respirazione o dell'impulso. In secondo luogo, il RIM può misurare quantitativamente l'area specifica nell'immagine WIM. Fornendo immagini comparabili delle regioni WIM locali, i dettagli del cambiamento locale possono essere rivelati con precisione. Il sistema progetta una transizione flessibile tra l'imaging a campo largo della visualizzazione vascolare e l'imaging in tempo reale della dinamica locale. Il sistema è auspicabile nella ricerca biomedica di base, dove è necessaria l'imaging di piccoli animali.

<table><tbody><tr><td>Digitalizzatore multiuso a 12 bit</td><td>Spectrum</td><td>M3i.3221</td><td>Scheda di acquisizione dati</td></tr><tr><td>Programma raccolto A-line</td><td>National Instrument</td><td>LabVIEW</td><td>Programma definito dall'utente</td></tr><tr><td>Amplificatore</td><td>RF Bay</td><td>LNA-650</td><td>Amplificatore</td></tr><tr><td>Crema depilatoria Veet</td><td></td><td>33-II</td><td>Accoppiatore Fiberport depilatorio per animali</td></tr><tr><td></td><td>Thorlab</td><td>PAF-X-7-A</td><td>Accoppiatore in fibra</td></tr><tr><td>Gate Array programmabile sul campo</td><td>Altera</td><td>Cyclone IV</td><td>Trigger Control</td></tr><tr><td>Pacchetti di collomazione a fuoco fisso</td><td>Thorlabs</td><td>F240FC-532</td><td>Collimatore in fibra</td></tr><tr><td>Trasduttore a ultrasuoni a nebbia</td> Unità di elaborazione grafica <td>autocostruita</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>NVIDIA</td><td>GeForce GTX 1060</td><td>Supporto</td></tr> <tr><td></td><td>per dati di elaborazioneAutocostruito</td><td></td><td>Fissazione animale</td></tr><tr><td>Programma di controllo laser</td><td>National Instrument</td><td>LabVIEW</td><td>Programma definito dall'utente</td></tr><tr><td>Topi</td><td>Guangdong Medical Laboratory Animal Center</td><td>BALB/c</td><td>Modello animale</td></tr><tr><td>Fotocamera per microscopio</td><td>Mshot</td><td>MS60</td><td>Fotocamera CCD</td></tr><tr><td>Obiettivo per microscopio</td><td>Daheng Optics</td><td>GCO-2111</td><td>Obiettivo</td></tr><tr><td>Specchio</td><td>Daheng Optics</td><td>GCC-1011</td><td>Specchio mobile/fisso</td></tr><tr><td>Magnete mobile Rivelatore capacitivo Galvanometro Scanner Century</td><td>Sunny</td><td>S8107</td><td>Scanner in tempo reale</td></tr><tr><td>Mshot Sistema di analisi delle immagini</td><td>Mshot</td><td></td><td>Software di visualizzazione</td></tr><tr><td>Soluzione salina normale</td><td>CR DOUBLE-CRANE</td><td></td> H34023609 <td></td></tr><tr><td>Forbici oftalmiche</td> saline normali <td>SUJIE</td><td></td><td>Rimozione del cuoio capelluto</td></tr><tr><td>Trasduttore ultrasonico planare</td> Involucro di plastica <td>autocostruito</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>HJSJLSL</td><td></td><td>Membrana in polietilene Software</td></tr><tr><td>di controllo del programma</td><td>National Instrument</td><td>LabVIEW</td><td>Programma definito dall'utente</td></tr><tr><td>Laser pulsato Q-swithched Esportazione</td><td>laser</td><td>DTL-314QT</td><td>Laser a impulsi da 532 nm Programma</td></tr><tr><td>di imaging in tempo reale</td><td>Nazionale Strumento</td><td>LabVIEW</td><td>Programma definito dall'utente</td></tr><tr><td>LED bianco a forma di anello</td> Rasoio <td>autocostruito</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Codos</td><td>CP-9200</td><td>Rasoio per animali</td></tr><tr><td>Fibre monomodali</td><td>Nufern</td><td>460-HP</td><td>Fibra monomodale</td></tr><tr><td>Lama chirurgica</td><td>SUJIE</td><td>11</td><td>Bisturi chirurgico a lama</td></tr><tr><td></td><td>SUJIE</td><td>7</td><td>Rimozione del cuoio capelluto</td></tr><tr><td>Stadio di traslazione</td><td>Jiancheng Optics</td><td>LS2-25T</td> stadio di <td>scansione ad ampio campo</td></tr><tr><td>Trasduttore ad ultrasuoni</td> Gel per ultrasuoni <td>autocostruito</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>GUANGGONG PAI</td><td>ZC4252418</td><td>Accoppiamento acustico</td></tr><tr><td>Uretano</td><td>Tokyo Chemical Industry</td><td>C0028</td> Serbatoio dell'acqua <td>anestetizzata per animali</td></tr><tr><td></td><td>Autocostruito</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Programma di imaging a campo largo</td><td>National Instrument</td><td>LabVIEW</td><td>Programma definito dall'utente</td></tr><tr><td>XY Translator Mount</td><td>Self-made</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

doppia scansione raster photoacoustic small-animal imager per la visualizzazione vascolare

Dual Raster-Scanning Photoacoustic Small-Animal Imager for Vascular Visualization

L'imaging di reti vascolari su piccoli animali ha svolto un ruolo importante nella ricerca biomedica di base. La tecnologia di imaging fotoacustico ha un grande potenziale di applicazione nell'imageologia dei piccoli animali. L'imaging fotoacustico ad ampio campo di piccoli animali può fornire immagini ad alta risoluzione spaziotemporale, penetrazione profonda e contrasti multipli. Inoltre, il sistema di imaging fotoacustico in tempo reale è auspicabile per osservare le attività emodinamiche della vascucolatura dei piccoli animali, che possono essere utilizzate per ricercare il monitoraggio dinamico delle caratteristiche fisiologiche dei piccoli animali. Qui viene presentato un imager fotoacustico a scansione doppia raster, dotato di una funzione di imaging a doppia modalità commutabile. L'imaging a campo largo è guidato da una fase di traslazione motorizzata bidimensionale, mentre l'imaging in tempo reale è realizzato con galvanometri. Impostando diversi parametri e modalità di imaging, è possibile eseguire la visualizzazione in vivo della rete vascolare di piccoli animali. L'imaging in tempo reale può essere utilizzato per osservare il cambiamento cardiaco e il cambiamento del flusso sanguigno indotto dal farmaco, ecc. L'imaging a campo largo può essere utilizzato per tenere traccia del cambiamento di crescita della vascucolatura tumorale. Questi sono facili da adottare in vari settori della ricerca biomedicina di base.

Lo schema del DRS-PAI è illustrato nella figura 1. Il sistema consente il passaggio flessibile e ripetibile tra WIM e RIM. Il segnale PA acquisito viene elaborato rapidamente per generare immagini PA B-Scan e MAP. La telecamera CCD può fornire fotografie di campioni.
Tutti i componenti del DRS-PAI sono integrati e assemblati in una configurazione di imager (Figura 2), semplificando l'assemblaggio e il funzionamento. Nel WIM viene util...

È stato progettato un doppio imager fotoacustico a scansione raster, che integrava l'imaging a campo largo e l'imaging in tempo reale.

Doppia scansione Raster Photoacoustic Small-Animal Imager per la visualizzazione vascolare

Imaging of vascular networks on small animals has played an important role in basic biomedical research. Photoacoustic imaging technology has great ...

L'imager fotoacustico a doppia scansione raster per piccoli animali può essere utilizzato per visualizzare vari tessuti in vivo ed è facilmente adattabile a molti studi di ricerca biomedica che necessitano di imaging di piccoli animali. Per allineare il sistema, coprire un intero serbatoio dell'acqua di 10 x 10 x 4,4 centimetri con una membrana in polietilene spessa 10 micron e riempire il serbatoio con acqua ultra pura. Posizionare il serbatoio sul tavolino di lavoro e accendere l'interruttore laser.Selezionare il programma di controllo laser e riscaldare il laser per cinque minuti. Premere il pulsante di accensione sull'interruttore di pompaggio e impostare i parametri del laser. Aprire lo smusso laser e selezionare il programma A-line raccolto.Premere start per acquisire un segnale a punto singolo e per visualizzare l'ampiezza e lo spettro del segnale della linea A corrente. Posizionare una lama sul fondo del serbatoio dell'acqua e immergere la parte inferiore del trasduttore a ultrasuoni nel serbatoio dell'acqua per l'accoppiamento acustico. Regolare la posizione della Galva e del traslatore X Y tra il trasduttore a ultrasuoni e la lente dell'obiettivo confocale per evitare un segnale di oscillazione.Quindi regolare l'altezza del tavolino di lavoro per massimizzare l'ampiezza del segnale e determinare la posizione di messa a fuoco. Dopo aver confermato la mancanza di risposta al riflesso del pedale, utilizzare un rifinitore e una crema depilatoria per rimuovere i peli dalla parte posteriore, dall'orecchio, dal cuoio capelluto e dall'addome del topo anestetizzato e posizionare il mouse su un supporto di 8 x 2,8 x 2 centimetri in posizione prona. Posizionare il gel per ultrasuoni sull'area da acquisire e posizionare il supporto sul tavolino di lavoro.Premere start per raccogliere un segnale A-line e regolare la posizione del traslatore Galva XT e la fase di lavoro per allineare la regione da riprendere con il laser. Quindi premere stop per terminare la raccolta. Per raccogliere un'immagine a campo largo, selezionare la modalità di imaging a campo largo e assegnare un nome alla cartella appena creata.Nella scheda Velocità di scansione, impostare la velocità di scansione su 20 millimetri al secondo. L'area di scansione a 20 x 20 millimetri e il passo a 20. Una volta impostati i parametri di scansione, fare clic su Raccogli per avviare la scansione.Al termine dell'acquisizione, fare clic su stop e tornare a zero per portare il motore a zero. Metti in posa lo smusso laser e imposta l'impostazione del grilletto sul grilletto interno. Premere off per arrestare l'interruttore di pompaggio e selezionare il trigger della modalità di imaging in tempo reale.Collegare il trigger della modalità di imaging in tempo reale al trigger laser esterno e accendere l'interruttore di pompaggio. Quindi impostare l'impostazione del trigger sul trigger esterno e fare clic su Esci per uscire dalla modalità di imaging ad ampio campo. Per raccogliere un'immagine in tempo reale, avviare la raccolta del segnale A-line e aprire lo smusso del laser.Allineare il laser come dimostrato e fare clic su stop per terminare la raccolta dopo l'allineamento. Selezionare la modalità di imaging in tempo reale e assegnare un nome alla cartella appena creata, fare clic su Raccogli per avviare la scansione. Al termine dell'acquisizione, fare clic su Interrompi.Quindi fare clic su Esci per uscire dal programma di imaging in tempo reale. Per l'imaging a campo largo dei sistemi vascolari cerebrali, selezionare un trasduttore a ultrasuoni focalizzato con una frequenza centrale di 25 megahertz, una larghezza di banda superiore al 90% e una lunghezza focale di 8 millimetri. Usa un bisturi per fare una piccola incisione sul lato laterale della parte superiore temporale cranica del topo e usa le forbici oftalmiche per tagliare il cuoio capelluto attorno al bordo esterno del cranio.Comprimere qualsiasi punto di sanguinamento per ottenere l'omeostasi e lavare la ferita con soluzione fisiologica. Posizionare il gel per ultrasuoni sul cranio esposto e avviare la raccolta del segnale A-line. Fare clic su stop per terminare la raccolta dopo l'allineamento e selezionare la modalità di imaging a campo largo.Assegna un nome alla cartella appena creata e imposta la velocità di scansione su 10 millimetri al secondo. L'area di scansione a 10 x 10 millimetri e il passo a 10. Fare clic su Raccogli per avviare la scansione.Al termine dell'acquisizione, fare clic su stop. Quindi fare clic su Torna a zero per riportare il motore a zero e fare clic su Esci per uscire dal programma di imaging a campo largo. Per un'imaging dinamico in tempo reale, posiziona il mouse in posizione supina e posiziona il gel per ultrasuoni sull'addome.Raccogli un segnale A-line e allinea il laser come dimostrato. Selezionare la modalità di imaging in tempo reale e assegnare un nome alla cartella appena creata. Quindi fare clic su Raccogli per avviare la scansione.Al termine dell'acquisizione, fare clic su stop e esci per uscire dal programma di imaging in tempo reale. Qui si può osservare un'immagine di proiezione di massima ampiezza del dorso del mouse acquisita in modalità di imaging a campo largo. In questa scansione B, il dorso del mouse è stato ripreso utilizzando la modalità di imaging in tempo reale.Le immagini delle reti vascolari dell'orecchio e del cervello del topo possono essere ottenute utilizzando un trasduttore ultrasonico focalizzato. In questa analisi, è stato possibile osservare immagini B scan dell'addome del topo, rivelando la presenza di un vaso entro l'intervallo di imaging di 100 micron. Inoltre, l'imaging a proiezione di massima ampiezza consente di confrontare la direzione della profondità dell'addome del topo rispetto al tempo.Per ottenere una qualità ottimale dell'immagine, è essenziale ottenere una buona regolazione confocale della messa a fuoco ottica e acustica. Lo speciale algoritmo di elaborazione delle immagini può essere sviluppato per l'analisi quantitativa e può fornire informazioni preziose per la diagnosi precoce e il trattamento delle malattie.

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