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Neuroscience
Un modello di roditore neonatale di iniezione venosa retroorbitaria
Un modello di roditore neonatale di iniezione venosa retroorbitaria
JoVE Journal
Neuroscience
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This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
A Neonatal Rodent Model of Retroorbital Vein Injection

Un modello di roditore neonatale di iniezione venosa retroorbitaria

Full Text
9,848 Views
04:39 min
February 23, 2024

DOI: 10.3791/65386-v

Eridan Rocha-Ferreira1, Syam Nair1, Owen Herrock1, Erik Axel Andersson2, Carl Joakim Ek2, Carina Mallard2, Henrik Hagberg1

1Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Clinical Sciences, Department of Obstetrics and Gynecology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg, 2Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Neuroscience and Physiology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol highlights a reproducible retro-orbital injection method for intravenous drug administration in neonatal rats and mice. The technique facilitates compound delivery into the venous circulation, which is particularly crucial for preclinical studies mimicking neonatal care unit conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Pharmacology
  • Animal models

Background

  • Intravenous administration is commonly used in neonatal intensive care units.
  • Injections via the tail vein are difficult in neonates, making alternative routes necessary.
  • The retro-orbital route is simpler and can be used effectively for compound administration.
  • This method allows for real-time monitoring of injection success through visible dye tracking.

Purpose of Study

  • To optimize intravenous drug administration techniques in neonatal rodents.
  • To provide a reliable method for compound delivery that can be used in various preclinical settings.
  • To enhance reproducibility and outcomes in rodent studies related to neonatal care.

Methods Used

  • The retro-orbital injection method is demonstrated using trypan blue dye.
  • Subjects include neonatal rats and mice under anesthesia during the procedure.
  • New sterile syringes are utilized for each animal to prevent contamination.
  • Injection occurs at the medial canthus of the eye at a 40-degree angle.
  • Recovery protocols ensure the well-being of the animals post-injection.

Main Results

  • The protocol enables successful visualization of compounds in the venous system.
  • Effective tracer administration allows for assessment of vascular responses after injury.
  • These results highlight the potential for quantifying vascular leakage and injury assessment.
  • The method does not cause adverse effects when performed properly.

Conclusions

  • This study establishes the retro-orbital injection as a reliable method for drug administration in neonatal rodents.
  • The technique presents significant clinical relevance in translational research.
  • Enhanced understanding of venous drug delivery mechanisms supports future studies in neonatal pharmacology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the retro-orbital injection method?
The retro-orbital injection method simplifies intravenous administration in neonatal rodents, providing a more accessible alternative to tail vein injections, which can be challenging.
How is the retro-orbital injection performed?
The injection is performed with the animal under anesthesia, using a 29 to 31 gauge needle positioned at the medial canthus of the eye, angled appropriately to access the venous plexus.
What types of data can this method help obtain?
The method allows for real-time monitoring of compounds in the blood circulation, enabling assessments of tracer distributions and vascular responses.
Can this method be adapted for other substances?
Yes, this injection technique can be used for various compounds, including antibodies, cells, and other therapeutic agents directly into the venous circulation.
Are there any limitations to this injection method?
Care must be taken to ensure proper needle placement to avoid complications, and the procedure should only be performed by trained individuals for optimal animal welfare.
How does this study contribute to neonatal pharmacology?
The study presents a reliable method for intravenous drug administration that can improve translational research on drug effects in neonatal care settings.

Questo protocollo mira a dimostrare una via di somministrazione venosa riproducibile che può essere utilizzata nei ratti e nei topi per tutto il periodo neonatale. Questa procedura è importante per gli studi preclinici sui roditori che desiderano rispecchiare la somministrazione di farmaci nelle unità di cura neonatale utilizzando principalmente la somministrazione endovenosa.

L'iniezione retroorbitale è un metodo di iniezione specializzato utilizzato per somministrare composti nella circolazione venosa. La ricerca sugli animali è un passo importante verso il lavoro clinico. Nell'ambito della ricerca sugli animali, c'è la necessità di somministrare diversi tipi di composti attraverso vie diverse.

Alcune di queste vie includono quella sottocutanea, intraperitoneale e endovenosa. L'iniezione endovenosa è la via più comunemente utilizzata nei neonati che si trovano nell'unità di terapia intensiva neonatale. Tuttavia, nella ricerca sui roditori, in particolare nei roditori adulti, le iniezioni endovenose vengono eseguite di routine sulla vena caudale.

Nei neonati, è estremamente difficile eseguire un'iniezione della vena caudale con successo e in modo riproducibile. Pertanto, la via retro-orbitale può essere utilizzata come alternativa più semplice. Innanzitutto, dimostreremo l'utilizzo di un colorante, il blu tripano, in modo che lo spettatore possa vedere chiaramente il colorante che entra nella circolazione venosa.

Il ratto neonatale viene posto in anestesia completa, con la testa sdraiata su un fianco, appoggiata sopra una fonte di luce, in modo che l'occhio e la vascolarizzazione laterale siano esposti e visibili. L'ago viene inserito nella parte anteriore dell'orbita oculare, l'equivalente del canto mediale. Iniettare la soluzione con un movimento delicato, fluido e fluido.

Per riprodurre al meglio questa procedura, è importante comprendere l'anatomia venosa orbitaria. Nel ratto c'è una rete di diverse vene appena sotto l'occhio, che consentono un accesso facile e diretto al plesso venoso. Nel ratto albino neonatale è visibile anche sia la vena temporale superficiale che quella facciale.

Questa procedura può essere eseguita esattamente nello stesso modo. Nei topi neonatali. Usa un ago con calibro da 29 a 31 intorno a 0,30 millimetri.

Per ottenere volumi accurati, prelevare la soluzione da iniettare da un volume pipettato. Posizionare gli animali su una superficie piana in decubito laterale. Indurre l'anestesia con isoflurano per tutto il corpo.

5% induzione, 3% mantenimento. Controllare la profondità dell'anestesia utilizzando il metodo del riflesso di ritiro della trazione. Con la testa rivolta verso destra, somministrare l'iniezione nel seno retroorbitale destro.

Inserire lo smusso dell'ago verso il basso nella parte anteriore dell'orbita dell'occhio, l'equivalente del canto medio, con un angolo di circa 40 gradi. Questo angolo consente di dirigere l'ago verso la parte posteriore dell'orbita dell'occhio. Iniettare con un movimento delicato, fluido e fluido.

Attendere un breve istante prima di estrarre l'ago, lentamente, per evitare il riflusso. Utilizzare una nuova siringa sterile per ogni animale per evitare contaminazioni. Metti il cucciolo nella scatola di recupero, appoggiato su un dispositivo di riscaldamento protetto, a circa 35-37 gradi Celsius.

Attendi il recupero e controlla eventuali segni di sofferenza prima di riportare il cucciolo alla madre. Questa tecnica è stata utilizzata per somministrare il tracciante biotina-destrano nel sistema vascolare del cervello di animali che hanno subito un'emorragia della matrice germinale. Gli animali che hanno ricevuto un'iniezione salina come controllo non mostrano alcuna colorazione visibile della vascolarizzazione all'interno del cervello.

Il successo dell'iniezione retro-orbitale del tracciante biotina-destrano ha permesso di valutare la sua presenza nel sistema vascolare cerebrale entro 10 minuti dalla somministrazione retro-orbitale. Questa tecnica è stata quindi utilizzata per rilevare la perdita vascolare del tracciante a livello dei singoli vasi sanguigni negli animali feriti da GMH. Questo risultato consente, ad esempio, di quantificare la lesione quantificando la quantità di vasi sanguigni che fuoriescono a seguito di una lesione cerebrale GMH.

Inoltre, questa procedura può essere eseguita anche senza una fonte di luce, rendendola una tecnica semplice, diretta e riproducibile che consente la somministrazione del composto direttamente nella circolazione venosa di ratti e topi neonatali. Se eseguita correttamente, questa procedura non dovrebbe causare effetti negativi. Questa radice di somministrazione consente iniezioni di anticorpi, cellule e altri composti direttamente nella circolazione venosa degli animali neonatali.

Questa via è di maggiore rilevanza clinica rispetto ad altre vie, come le iniezioni intraperitoneali o sottocutanee.

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Neuroscienze Numero 204 ratto topo neonato iniezione venosa retroorbitale somministrazione di composti endovenosa

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