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方法論記事

マルチウェルデバイスの固体培地上での単離 されたカエノラブディティスエレガンスの 長期培養とモニタリング

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DOI：

10.3791/64681

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2022年12月9日

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1Department of Molecular & Cellular Biology, University of Arizona, 2Department of Bioengineering, School of Engineering and Applied Sciences, University of Pennsylvania

この記事について

サマリー

ここには、微細加工されたマルチウェルデバイスの固体培地上で単離された個々の線虫を培養するための最適化されたプロトコルが提示されます。このアプローチにより、個々の動物を生涯を通じて監視して、活動、体のサイズと形状、運動の形状、生存など、老化と健康に関連するさまざまな表現型を確認できます。

要約

線虫 Caenorhabditis elegansは 、そのシンプルで安価な培養技術、迅速な繁殖サイクル(~3日)、短い寿命(~3週間)、および遺伝子操作と分子分析のための多数の利用可能なツールにより、老化研究で使用される最も一般的なモデルシステムの1つです。生存分析を含む C.エレガンスの老化研究を実施するための最も一般的なアプローチは、ペトリプレートの固体線虫増殖培地(NGM)上で数十〜数百匹の動物の集団を一緒に培養することです。このアプローチは動物の集団に関するデータを収集しますが、ほとんどのプロトコルは個々の動物を経時的に追跡しません。ここでは、WorMotelsと呼ばれる微細加工ポリジメチルシロキサン(PDMS)デバイスで個々の動物を長期間培養するための最適化されたプロトコルを紹介します。各装置では、NGMを含む小さなウェルで最大240匹の動物を培養でき、各ウェルは硫酸銅を含む堀で分離され、動物が逃げるのを防ぎます。このホワイト ペーパーでは、元の WorMotel の説明に基づいて、各デバイスの成形、準備、および装着に関する詳細なプロトコルを提供し、一般的な技術的問題の説明とトラブルシューティングのアドバイスを提供します。このプロトコルには、少量のNGMの一貫した負荷、NGMと細菌性食品の両方の一貫した乾燥、薬理学的介入を提供するためのオプション、PDMSデバイスの再利用に関する指示と実際的な制限、および低湿度環境でも乾燥を最小限に抑えるためのヒントがあります。この技術により、ペトリプレートの固体培地での集団培養の標準的な技術と同様の環境で、刺激された活動、刺激されていない活動、体のサイズ、運動形状、健康寿命、生存など、さまざまな生理学的パラメーターの縦断的モニタリングが可能になります。この方法は、自動顕微鏡および分析ソフトウェアと組み合わせて使用 すると、ハイスループットデータ収集と互換性があります。最後に、この技術の限界、およびマイクロトレイを使用して単離された線虫を固体培地上で培養する最近開発された方法とのこのアプローチの比較について説明します。

概要

Caenorhabditis elegans は、その短い世代時間(約3日)、短い寿命(約3週間)、実験室での培養の容易さ、哺乳類との分子プロセスと経路の高度な進化的保存、および遺伝子操作技術の幅広い利用可能性のために、老化研究で一般的に使用されます。老化研究の文脈では、 C.エレガンスは 、生きている動物の晩年の表現型の分析のために、長寿データと高齢者集団の迅速な生成を可能にします。ワーム老化研究を実施するための典型的なアプローチは、6cmペトリプレート内の固体寒天線虫増殖培地(NGM)上で20〜70匹の動物のグループで維持されているワームの集団の寿命を手動で測定することを含む1。年齢同期集団を使用すると、集団全体の個々の動物の寿命または断面表現型を測定できますが、この方法では、個々の動物の特性を経時的に監視することはできません。このアプローチも労働集約的であるため、テストできる母集団のサイズが制限されます。

個々のC.エレガンスの寿命を通して縦断的にモニタリングできる培養方法は限られており、それぞれに異なる長所と短所があります。WormFarm2、NemaLife3、および「挙動」チップ4、とりわけ5,6,7を含むマイクロ流体デバイスは、個々の動物の経時的なモニタリングを可能にする。マルチウェルプレートを使用して液体培養でワームを培養することも同様に、個々の動物またはC.エレガンスの小さな集団のいずれかを経時的にモニタリングすることを可能にします8,9。液体環境は、ペトリプレートの固体培地上の一般的な培養環境とは異なる環境状況を表しており、脂肪含有量やストレス応答遺伝子の発現など、老化に関連する動物生理学の側面を変える可能性があります10,11。これらの研究を、老化したC.エレガンスについて収集されたデータの大部分と直接比較する能力は、潜在的に重要な環境変数の違いによって制限されます。Worm Corral12は、典型的な固体培地培養をより厳密に再現する環境で個々の動物を収容するために開発された1つのアプローチです。Worm Corralには、ヒドロゲルを使用した顕微鏡スライド上に各動物用の密閉チャンバーが含まれており、孤立した動物の縦方向のモニタリングが可能です。この方法では、標準的な明視野イメージングを使用して、体のサイズや活動などの形態学的データを記録します。しかしながら、動物は胚としてヒドロゲル環境に置かれ、そこでそれらは生涯を通じて邪魔されないままである。これには、条件付き無菌変異体またはトランスジェニック遺伝的背景の使用が必要であり、各新規変異または導入遺伝子を条件付き不妊でバックグラウンドに交配する必要があるため、遺伝子スクリーニングの能力と、治療は胚として動物に一度しか適用できないため、薬物スクリーニングの能力の両方が制限されます。

Fang-Yenラボによって開発された代替方法は、WorMotel13,14と呼ばれる微細加工ポリジメチルシロキサン(PDMS)デバイスの個々のウェル内の固体培地上でワームを培養することを可能にする。各デバイスは、単一ウェルトレイ(すなわち、96ウェルプレートと同じ寸法)に配置され、ワームがウェル間を移動するのを防ぐために、嫌悪溶液で満たされた堀によって分離された240ウェルを有する。各ウェルは、その寿命の間、単一のワームを収容することができます。デバイスは吸水性ポリアクリルアミドゲルペレット(「水結晶」と呼ばれる)に囲まれており、トレイは湿度を維持し、メディアの乾燥を最小限に抑えるためにParafilmラボフィルムで密封されています。このシステムにより、個々の動物の健康寿命と寿命のデータを収集できますが、固体培地を使用すると、公開されたC.エレガンスの寿命研究の大部分で動物が経験した環境をよりよく再現できるため、より直接的な比較が可能になります。最近、PDMSデバイス16の代わりに、微小細胞毒性アッセイ15に元々使用されていたポリスチレンマイクロトレイを使用して同様の技術が開発された。マイクロトレイ法は、固体培地上で培養されたワームの個別化されたデータの収集を可能にし、典型的には逃げを引き起こす条件(例えば、ストレッサーまたは食事制限)の下でワームを収容する能力が向上し、トレードオフは、各マイクロトレイが96匹の動物しか収容できないというトレードオフである16、ここで使用されるマルチウェル装置は最大240匹の動物を収容することができる。

ここでは、プレート間の一貫性と複数のデバイスの並列調製に最適化されたマルチウェルデバイスを調製するための詳細なプロトコルを示します。このプロトコルは、Fang-Yen研究所13の元のプロトコルから採用されました。具体的には、汚染を最小限に抑え、固体培地と細菌の食物源の両方の一貫した乾燥を最適化し、RNAiと薬物を送達する技術の説明があります。このシステムは、個人の健康寿命、寿命、および体のサイズや形状などの他の表現型を追跡するために使用できます。これらのマルチウェルデバイスは、寿命を測定するための既存のハイスループットシステムと互換性があり、従来の寿命実験に伴う手作業の多くを排除し、個々の C.エレガンス における自動化された直接的な寿命測定と健康追跡の機会を大規模に提供します。

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プロトコル

1.原液および培地の調製

注意: マルチウェルデバイスの準備を開始する前に、次のストック溶液と培地を準備してください。

  1. 線虫増殖培地(NGM)および低メルトNGM(lmNGM)用のストックソリューション:
    1. 1 M K 2 HPO 4の準備:1 Lボトルに174.18 gのK2HPO4を加え、滅菌脱イオン水で1 Lまで満たします。オートクレーブ(121°C、15psig)で30分間、室温(RT)で保存した。
    2. 1 M KPi、pH 6.0を準備します:1 Lボトルに136.09 gのKH2HPO4 を加え、滅菌脱イオン水で1 Lまで満たします。1 M K2HPO4 で滴定してpH 6.0にします。オートクレーブ(121°C、15psig)で30分間、RTで保存します。
    3. 1 M CaCl 2の調製:73.5 gのCaCl2を500 mLボトルに加え、500 mLまで滅菌脱イオン水で満たします。オートクレーブ(121°C、15psig)で30分間、RTで保存します。
    4. 1 M MgSO 4の準備:123.25 gのMgSO4を500 mLボトルに加え、滅菌脱イオン水で500 mLまで満たします。オートクレーブ(121°C、15psig)で30分間、RTで保存します。
    5. 5 mg / mLコレステロールを準備する:2.5 gのコレステロール、275 mLの100%エタノール、および25 mLの滅菌脱イオン水を500 mLの琥珀色のボトルに入れます。RTに保管してください。
    6. 50 mMフロクスウリジンの調製:0.1231 gのフロクスウリジンと10 mLの滅菌脱イオン水を15 mLのコニカルチューブに入れます。10 mLシリンジを使用して0.22 μmフィルターでフィルター滅菌します。10本の微量遠心チューブに1 mLずつ分注し、-20°Cで保存します。
    7. 50 mg / mLのカルベニシリンを調製する:15 mLのコニカルチューブで、500 mgのカルベニシリンと10 mLの滅菌脱イオン水を混ぜ合わせます。10 mLシリンジを使用して0.22 μmフィルターでフィルター滅菌します。10本の微量遠心チューブに1 mLずつ分注し、-20°Cで保存します。
    8. 1 mMイソプロピルβ-D-1-チオガラクトピラノシド(IPTG)を調製する:15 mLのコニカルチューブで、2.38 gのIPTGと10 mLの滅菌脱イオン水を混ぜ合わせます。10 mLシリンジを使用して0.22 μmフィルターでフィルター滅菌します。10本の微量遠心チューブに1 mLずつ分注し、-20°Cで保存します。
    9. 100 mg / mLのアンピシリンを調製する:15 mLのコニカルチューブで、1 gのアンピシリンと10 mLの滅菌脱イオン水を混ぜ合わせます。10 mLシリンジを使用して0.22 μmフィルターでフィルター滅菌します。10本の微量遠心チューブに1 mLずつ分注し、-20°Cで保存します。
  2. 一般的な C.エレガンス 維持のための線虫増殖培地(NGM)の調製
    1. 50枚のプレートを作るには、1Lフラスコにバクト寒天10g、NaCl1.5g、バクトペプトン1.25g、超純水486mLを混ぜ合わせます。オートクレーブを液体サイクル(121°C、15psig)で少なくとも30分間滅菌します。
    2. オートクレーブ後、培地を55°Cに冷却した後、1 M KPiを12.5 mL、1 M MgSO4を500 μL、1 M CaCl2を500 μL、および5 mg/mLコレステロールを500 μL加えます。
    3. 滅菌技術を使用して、各60 mmプレートに10 mLの培地を注ぎます(合計50)。培地が固まった後(注ぎ込み後少なくとも30分)、プレートの中央に一晩増殖させた細菌培養物(ステップ4およびステップ10に従って調製)300 μLをピペットで貼り付けます。プレートをベンチに置いて、細菌培養物を乾燥させて厚くします(1〜2日)。プレートは4°Cで保管してください。
  3. 低融解線虫増殖培地(lmNGM)プレ混合物を調製します。
    1. 500 mLフラスコに、4 gの低融点アガロース、0.5 gのバクトペプトン、および195 mLの超純水を混ぜ合わせます。オートクレーブを液体サイクル(121°C、15psig)で少なくとも30分間滅菌します。
    2. 培地がまだ溶融している間に、10 mLのアリコートを滅菌ガラス試験管に分配します。各試験管をパラフィルムで密封し、続いて試験管キャップを付けて、lmNGMプレ混合物を保存し、乾燥を防ぎます。培地は固化し、使用前にRTで~2週間保存できます。
  4. 142.8 mM NaClを調製する:250 mLのボトルに、0.8345 gのNaClと100 mLの滅菌脱イオン水を混ぜ合わせます。オートクレーブ(121°C、15psig)で30分間、RTで保存します。
  5. 洗剤溶液を準備する:15 mLのコニカルチューブで、3 mLのTween 20と7 mLの滅菌脱イオン水を混ぜ合わせます。十分に混合し、10 mLシリンジを使用して0.22 μmフィルターでフィルター滅菌し、RTで保存します。
  6. 硫酸銅溶液を調製する:滅菌済みの50 mLボトルで、20 mLの滅菌脱イオン水、0.5 gのCuSO4、および100 μLの洗剤溶液(ステップ1.5で調製)を混ぜ合わせます。CuSO4 が溶解するまで混合します。RTに保管してください。
  7. 吸水性ポリアクリルアミド結晶の準備:オートクレーブで安全なスクイーズボトルに、150 mLの脱イオン水と1 gのタイプS高吸水性樹脂を混ぜ合わせます。ボトルを数回ひっくり返して穏やかに混ぜます。オートクレーブを液体サイクル(121°C、15psig)で少なくとも20分間行い、RTで保存します。
  8. リソジェニーブロス(LB)を準備する:1 L以上のビーカーで、20 gのLB粉末を1 Lの脱イオン水と混ぜ合わせます。2つの500mLビーカーに分注します。オートクレーブ(121°C、15psig)で30分間、RTで保存
  9. 溶解性ブロス(LB)寒天プレートを準備します。
    1. 1 Lフラスコに、10 gのLB粉末、7.5 gのバクト寒天培地、および500 mLの脱イオン水を混ぜ合わせます。液体サイクル(121°C、15psig)で30分間オートクレーブします。
    2. 必要に応じて、オプションの抗生物質(オートクレーブ後、培地が55°Cに冷却された後):500 μLの100 mg/mLアンピシリンを追加します。滅菌技術を使用して、各100 mmプレート(合計25)に20 mLの培地を注ぎ、4°Cで保存します。

2. 3Dマルチウェルデバイス金型の印刷

注: 各デバイスは、カスタム 3D プリント金型を使用して PDMS から成形されます。1つの金型で必要な数のデバイスを製造できます。ただし、複数のデバイスを同時に準備しようとする場合は、各デバイスを並行して作成するために1つの3Dプリントされた金型が必要です。

  1. STL ファイルをダウンロードします (補足ファイル 1 を参照)。
  2. 高解像度3Dプリンターで金型を印刷します。
    メモ: プリンタの解像度は、井戸と堀の容積を一定にするために十分に高くなければなりません。推奨されるプリンタ解像度は、最小 XY 解像度 ~40 μm、レイヤー解像度 28 μm です。多くの材料タイプがPDMSの硬化を妨げるため、3Dプリンターで使用される材料も同様に重要です。経験から、Vero Black印刷材料を使用して高解像度のPolyJetプリンター(解像度:X軸= 600 dpi、Y軸= 600 dpi、Z軸= 1,600 dpi)で製造された金型は一貫して機能します。この研究で使用された金型の3D印刷は外部委託されました(印刷の詳細は 材料表に記載されています)。

3.マルチウェル装置の準備

注:このセクションでは、3Dプリントされた金型を使用してPDMSマルチウェルデバイスを作成する方法について説明します。

  1. 予熱できるように、硬化オーブンを55°Cに設定します。
  2. 1 つのバッチで準備するデバイスの数を決定します。デバイスごとに、使い捨てヘラを使用して、60 gのPDMSベースと6 gの硬化剤を大型の使い捨て計量ボート(または同様の使い捨て容器)で混合します。
  3. PDMS混合物を真空チャンバーに-0.08MPaで30分間入れて気泡を除去します。
  4. PDMS混合物を各3Dプリント型に注ぎます。PDMS混合物が金型の上部からわずかに上に伸びるように、金型を完全に充填します。こぼれた場合に備えて、余分なPDMS混合物を金型に補充するために保管してください。
  5. 充填した金型と余分なPDMS混合物を真空チャンバーに-0.08MPaで25分間入れて、注入プロセス中に発生した気泡を取り除きます。
  6. 充填された金型を真空チャンバーから取り出し、使い捨てヘラで残っている気泡をポップします。スパチュラを使用して、目に見える破片や残っている気泡を金型の端までブラッシングして、ウェルから離します。破片や気泡が残っていると、後の手順でイメージングが妨げられる可能性があります。
  7. 金型がPDMS混合物で完全に満たされていることを確認してください。混合物のごく一部が真空チャンバー内または移送中にこぼれるのが一般的です。ステップ3.5で脱気した余分なPDMS混合物を使用して補充します。これは泡を作成するべきではありませんが、泡が発生した場合は、へらで型の横にそっとブラシをかけることができます。
  8. 最初に一方の端を置き、アクリルが金型の上に平らになるまでもう一方の端をゆっくりと下げて、端より上に伸びているPDMS混合物を移動させて、PDMSで満たされた金型の上に平らなアクリルシートを置きます。アクリルシートの配置中に気泡が発生した場合は、アクリルをゆっくりと取り外し、必要に応じて金型にPDMS混合物を補充し、アクリルの配置を再開します。アクリルシートは、成形装置用の平らな底部を形成し、すべてのウェルがベースに対して同じレベルにあることを確認します。
  9. アクリルの上に2.5ポンドの重りを置きます。それぞれが別々のアクリルシートを備えた複数の金型を積み重ねることができます。加重型をオーブンに入れ、55°Cで一晩硬化させます。
  10. 翌日、オーブンから重りと型を取り出します。
  11. アクリルと硬化PDMSの間にかみそりの刃を慎重に動かして、シールを破ります。金型の上部からアクリルを慎重に取り外します。PDMSはこの時点で設定されており、アクリルを取り除くにはある程度の力がかかる可能性があります。
  12. かみそりまたは金属ヘラを使用して、硬化したPDMSの側面を金型から慎重に緩めます。この段階でPDMSを引き裂くのは簡単です。端の周りをゆっくりと穏やかに作業して、PDMSデバイスを無傷で取り外します。
    注意: 印刷したばかりの金型は、最初の3回の使用で特に粘着性があり、デバイスを取り外しようとしているときにPDMSが裂けることがよくあります。より多くの用途で、硬化したPDMSを金型から取り外すことが容易になります。
  13. デバイスをアルミホイルで包み、オートクレーブテープで密封します。オートクレーブをドライサイクルで121°C、15psigで少なくとも15分間滅菌する。オートクレーブ後、包んだデバイスをベンチに保管し、必要に応じて使用します。

4.バクテリアを縞模様にする

注意: ワームがマルチウェルデバイス上にある間に、ワームの食料源として使用されるバクテリアの準備を開始します。最も一般的な細菌は、 大腸菌 株OP50(またはRNAi実験用のHT115株)です。ワームをデバイスに追加する少なくとも 2 日前に、この手順を完了してください。

  1. バクテリアを新鮮なLBプレートにストリークします。菌株特異的な選択的添加物(例えば、細菌にアンピシリン耐性を付与するプラスミドを選択するためのアンピシリン)がLBプレートに含まれていることを確認してください。
  2. プレートを37°Cで一晩(~18時間)インキュベートし、コロニーを成長させます。

5.培地ローディング用のマルチウェル装置の準備

注意: デバイスを構成するシリコーンPDMS材料の表面は疎水性であり、少量の井戸と嫌悪堀がそれぞれNGMと硫酸銅で満たされるのを防ぎます。この問題を回避するために、酸素プラズマを使用して、デバイスの表面特性を一時的に親水性に変更し、限られた時間枠(最大~2時間)内に井戸と堀を充填できるようにします。このセクションでは、プラズマ洗浄プロセスを完了するための手順について説明します。プラズマクリーンの長引く効果がスポッティングを妨げる可能性があるため、デバイスウェルにバクテリアを見つける少なくとも1日前に、このステップを完了してください。セクション5〜7のタイミングを考えると、技術者あたりのこれらのステップの実際の制限は、並列に3つのデバイスです。

  1. セクション6の準備として、ドライビーズバスインキュベーターを90°Cに予熱します。
  2. マルチウェルデバイスのウェルを充填するために必要な総培地量は、ペトリプレートの場合に比べて小さいため、NGMのバッチを大量に調製し、それを試験管に分注します(ステップ1.3を参照)。
    注:メディアのチューブはベンチに~2週間保管できるため、これは事前に行うことができます。培地を調製し、チューブに分注した場合は、手順5.3に進みます。
  3. 手袋を着用した状態で、オートクレーブ滅菌されたマルチウェルデバイスの包装を解きます。ウェルには触れないでください。デバイスの右上隅にある小さな切り込みを切り取って、使用/再利用された回数を示します(各デバイスのクリーニングと再利用の手順と推奨事項については、以下のセクション15を参照してください)。
  4. ウェルを上に向けて、最大3つの包装されていないデバイスをプラズマクリーナーに入れます。プラズマクリーナーを実行します。
    注意: 次の詳細な手順は、プラズマエッチングPE-50プラズマクリーナー用です。特定の手順と設定は、他のプラズマクリーナーに適合させ、場合によっては再最適化する必要があります。
    1. プラズマクリーナーの電力レベルが75%に設定されていることを確認してください。
    2. ベントバルブとアイソレーションバルブの両方が オフ の位置にあることを確認します。
    3. 酸素タンクのメインバルブを開きます。レギュレーターの圧力が15 psigから20 psigに低下するまで待ってから、アイソレーションバルブを オン の位置に回します。
    4. 真空ポンプとプラズマクリーナーの電源を入れます。
    5. プラズマクリーナーに次の設定を入力するか(最初の使用)、以前にプログラムした設定が正しいことを確認します。
      プラズマ時間:3:00分
      真空セットポイント:149.5 mTorr
      大気ベント:45秒
      パージベント:5秒
      ガス安定化:15秒
      真空アラーム:3:00分
      オートサイクルオフ:オン
    6. Enter キーを押して [コマンド] メニューに移動します。右方向キーを使用して [セットアップ メニュー] を選択し、Enter キーを押します。Enterキーを押して現在の各設定を確認し、右矢印キーを押して次の設定に移動して、すべての設定をスクロールします。
    7. コマンドメニューに戻るには、上矢印を押してから左矢印を押します。
    8. [コマンド メニュー] 画面で、Enter キーを押します。選択 コマンド プラズマ を押して 入力します.システムは、次のフェーズを循環します。
      プラズマポンプダウン
      ガス安定化:このフェーズでは、流量計が1cc / minになるまでプラズマクリーナーの ガス10 ノブを調整します。
      プラズマ時間
      パージポンプダウン
      プラズマサイクル完了
      チャンバーベント
      注意: このプロセスは、完了するまでに約5〜10分かかります。すべてのフェーズが完了すると、 コマンドメニュー が再び画面に表示されます。プラズマ ポンプダウン フェーズ中に圧力が十分に低下しない場合、プラズマクリーナーは次のフェーズに進まず、画面にエラーメッセージが表示されます。このような場合は、真空ポンプのオイルを確認してください。オイルレベルが低い場合、またはオイルが濁っている/汚れている場合は、オイルを交換すると、真空圧が必要なレベルに達することができます。
    9. 酸素タンクのメインバルブをオフにします。
    10. 非常にゆっくりと、ベントバルブを オン の位置に回し、酸素タンクのレギュレーター圧力をゼロに戻します。
    11. アイソレーションバルブを オフ の位置に回します。
    12. 真空ポンプとプラズマクリーナーの電源を切ります。
      注:プラズマクリーナーによるマルチウェルデバイスの親水性表面改質は一時的なものであり、時間の経過とともに(最大約2時間)徐々に効果が低下します。セクション6とセクション7をできるだけ早く進めてください。

6. ウェルにlmNGMを充填する

注意: ドライビーズバスインキュベーターをオンにして、ステップ5.1から予熱する必要があります。浴槽が90°Cに達していることを確認してください。

  1. トレイの内側に70%エタノールをスプレーし、タスクワイプで拭いて乾かすことにより、デバイスごとに1つのシングルウェルポリスチレントレイを滅菌します。
  2. 手袋をはめた手でプラズマクリーナーから各デバイスを取り出し、クリーニングしたトレイに置きます。
  3. 25 mLの使い捨てピペット洗面器を90°Cに加熱した後、ビーズバスインキュベーターに入れます。
  4. 充填するデバイスごとに、固化したlmNGMプレ混合物のチューブを1本集めます(ステップ1.3を参照)。
  5. lmNGMプレミックス試験管を200 mLガラスビーカーに入れ、キャップとパラフィルムを取り外します。メディアが注ぐのに十分溶けるまで、~20秒間マイクロ波をかけます(この段階では、固体メディアの存在は問題ありません)。
  6. 複数の試験管からの溶融lmNGMプレ混合物を別の滅菌200 mLビーカーに混ぜ合わせます。さらに20秒間電子レンジを続けて、合計40秒に達します。lmNGMプレ混合物が沸騰し始めたら、電子レンジを停止し、lmNGMプレ混合物を沈降させてから続行します。
  7. 溶融したlmNGMプレ混合物を電子レンジから取り出し、~60°Cまで冷却します。
    メモ: この段階では、メディアは冷却され、~5 分後に再固化します。すぐに手順 6.8 と手順 6.9 に進みます。
  8. lmNGMプレミックス10 mLごとに、250 μLの1 M KPi、1 M MgSO4の10 μL、1 M CaCl2の10 μL、および5 mg/mLコレステロール10 μLを(順番に)加えます。
    1. 装置で成虫を監視するときに卵の孵化を防ぐために、10μLの50mMフロクスウリジンを追加します。
    2. RNAiプラスミドを選択し、RNAの発現を誘導するには、50 mg/mLのカルベニシリン5 μLと1 mM IPTGの12 μLを追加します。
      注:抗生物質またはその他の添加剤は、実験の設計に応じて変更することができます。この段階で、試験化合物/薬物を培地に追加することもできます。
  9. 溶融したlmNGMをビーズバスの25 mL洗面器に注ぎます。
  10. 200 μLのマルチチャンネルリピーターピペットを使用して、デバイスウェルにlmNGMを充填します。
    1. 14 μLの分注になるようにリピーターを設定します(200 μLのピペットチップを使用する場合は、14 μLを最大14回分注できます)。
    2. 5つのピペットチップを取り付けます。デバイスのウェルの間隔は、384ウェルプレートと同じです。標準的なマルチチャンネルピペットは、ユーザーが行/列の他のすべてのウェルにピペットで入れることができるように間隔を空けています。
    3. チップに溶融lmNGMをロードします。最初の14 μLをlmNGM含有洗面器に戻します。
    4. 迅速かつ慎重に、14 μLを内側のウェル(図1Bの白)に分注し、 図1Bの「x」でマークされたものから始めて、プレートを横切って右に移動し、次に下に移動し、合計 12 回分注します(60ウェル)。
    5. 残りのlmNGMは、最終的な分注液が通常14 μL未満であるため、洗面器に戻します。
    6. すべての内側のウェルが満たされるまで、手順6.10.3〜6.10.5を繰り返します。
    7. 次に、15 μLのアリコートを分注するようにリピーターを設定します。 手順6.10.3〜6.10.5を繰り返しますが、内側のウェルの代わりに、図 1Bの「+」でマークされたウェルから始めて、プレートの外縁の周りを移動して、ウェルの最も外側のリング( 図1B の灰色)を満たします。
      注意: 培地がピペットチップで固まらないように、すばやく作業してください。lmNGMを堀にこぼさないでください。外側の井戸はより早く乾く傾向があります。1 μLのlmNGMを追加すると、最終乾燥ウェルの表面を内側のウェルと同じ乾燥時間で水平にすることができます。
  11. 品質管理ステップとして、各ウェルを調べて、アンダーフィル(lmNGM表面がウェルの端の下に沈んでいる)、オーバーフィル(lmNGM表面の上部にドーム型がある)、気泡や破片が含まれているウェルなど、イメージングを妨げる可能性のある欠陥があるウェルを特定します。
  12. 固化したlmNGMを、短い白金ワイヤーピックまたは真空アスピレーターで不十分なウェルから取り除きます。空のウェルに新鮮な溶融lmNGMを補充します。また、短いプラチナワイヤーピックまたは真空吸引器で堀に溢れた媒体を取り除きます。

7.堀に硫酸銅を加える

注意: このデバイスの井戸は連続した堀に囲まれています。ここでは、堀は硫酸銅で満たされており、硫酸銅は忌避剤として機能し、ワームが井戸から逃げるのを防ぎます。

  1. 200 μLのピペットを使用して、200 μLの硫酸銅溶液(ステップ1.6を参照)を各コーナーのデバイスの堀に2回ずつ分注します。これは、硫酸銅が堀全体を流れるのに十分な量でなければなりません。どの時点でも堀を埋めすぎないように注意してください。硫酸銅はウェルの上面に触れてはいけません。
  2. 硫酸銅が堀全体を簡単に流れない場合は、短いプラチナワイヤーピックを使用して張力を破り、硫酸銅を堀に引きずり込みます。
  3. 硫酸銅が堀全体を流れた後、200μLのピペットまたは真空吸引を使用して、堀からできるだけ多くの硫酸銅を取り除きます。残された残留物は、ワームが井戸を離れるのを防ぐのに十分です。硫酸銅溶液でいっぱいの堀を離れると、硫酸銅が井戸にこぼれ、ワームが逃げる危険性があります。

8.オートクレーブ水結晶の追加

注意: プレート内の湿度を維持し、lmNGMの乾燥を防ぐために、各デバイスは飽和吸水性ポリアクリルアミド結晶で囲まれています。

  1. 水の結晶を準備します(手順1.7を参照)。
  2. スクイーズボトルを使用して、デバイスとトレイの壁の間のスペースに水の結晶を追加します。トレイの蓋を閉め、パラフィルムで四方を包みます。パラフィルムを2枚追加して、プレートを完全に密閉します。
    注:水の結晶はビーカーで準備し、滅菌したヘラでトレイにすくうことができます。ただし、これにより手順に時間がかかり、各トレイが開いて潜在的な汚染物質にさらされる時間が長くなります。
  3. 細菌が発見される準備ができた翌日まで、密封された装置をベンチに置いておきます。lmNGMが追加された後、デバイスがウェルを上に向けて保管されていることを確認します。

9.年齢同期ワーム集団の準備

注:次の手順では、4番目の幼虫期(L4)でマルチウェルデバイスに追加する準備ができているワームの同期された集団が生成されます。ただし、開発のさまざまな段階にあるワームを追加することもできます。この手順は、L4 が必要な場合は、ワームをデバイスに追加する 2 日前に完了する必要があります。希望するライフステージに合わせて同期のタイミングを調整します。

  1. 一貫した老化研究のために、 C.エレガンスを 標準的なNGMプレート上に維持します(十分に給餌された条件下で20°Cでステップ1.2を参照)。
  2. 標準的な方法、例えば漂白17または時限産卵1を介してストックプレートから動物の同期集団を得る。
  3. 分離した卵をバクテリアで斑点を付けたNGMプレートに追加します。卵はこのプレートで孵化し、ワームは野生型動物の場合2日でL4幼虫期に達します。

10.細菌培養物への接種

注:細菌は、 C.エレガンス、最も一般的には 大腸菌 株OP50またはHT115の主要な食料源として使用されます。細菌は10倍濃縮されており、これは調製された培養物の量に含まれるべきである。デバイスを見つける前日に細菌培養を準備します。

  1. ステップ4で調製したLBプレートから、単一のコロニーを選び、スポットするデバイスごとに12mLの滅菌LBを接種します。使用される細菌株に対して必要に応じて選択剤を含める。
  2. 細菌培養物を37°Cのインキュベーターで一晩(~18時間)増殖させ、~250rpmで振とうします。

11.濃縮されたバクテリアで井戸を見つける

注:少量の濃縮細菌が各ウェルに追加され、デバイス上の寿命全体にわたってワームに餌を与えるのに十分です。ワームをウェルに加える前に、細菌培養物を乾燥させる必要があります。各ウェルの培地容量は、添加した細菌量(5 μL)に比べて小さい(14〜15 μL)ため、細菌培地の化学物質含有量はウェルの化学環境に影響を与える可能性があります。これを説明するために、細菌を濃縮して塩水に再懸濁し、低浸透圧ストレスを回避しながら枯渇したLBを除去します。この段階で追加されるlmNGMレシピ(ステップ1.3〜1.4を参照)に塩は追加されません。

  1. セクション10に記載されるように細菌を一晩増殖させた後、細菌培養物を10倍濃縮する。細菌を~3,400 x g で20分間遠心分離してペレット化し、上清を処分し、ペレットを元の培養容量の1/10の142.8 mM NaClに再懸濁します(ステップ1.4を参照)。例えば、1つの240ウェルデバイスを見つけるには、12 mLの培養液をスピンダウンし、1.2 mLの142.8 mM NaClに再懸濁します。
    注:テスト化合物/薬物は、スポッティングする前に再懸濁された細菌培養物に追加できます。
  2. リピートピペットを使用して、5 μLの濃縮細菌を各ウェルにスポットします。ピペットチップがlmNGMを突き刺し、ワームがウェルの表面の下に穴を掘る可能性があるため、lmNGM表面との直接接触を避けてください。虫が堀に引き寄せられて堀に逃げてしまうので、菌が堀にこぼれないように注意してください。
  3. トレイの蓋を外した状態で斑点のあるバクテリアを乾かします。このステップは、井戸環境の長期的な完全性にとって重要であり、斑点を付けられたデバイスを乾燥させるさまざまな方法があります。どの方法を使用する場合でも、バクテリアが乾いている間はカバーを外して座る必要があるため、デバイスが無菌環境にとどまっていることを確認してください。風量の増加により、乾燥時間が大幅に短縮されます。乾燥は、以下の手順で説明するように実行できます。
    1. デバイスを覆い隠さずに、10%の漂白剤で洗浄したプラスチックビンなどの清潔で密閉された容器に置き、続いて70%のエタノールを入れます。この乾燥方法は数時間かかることがあります。
    2. カバーされていないデバイスを滅菌層流フードに入れます(以下の推奨方法と同様)。
    3. コンピュータケースファンとHEPAフィルターを使用して最小限のコストで構築できる特注の「乾燥ボックス」(この研究で採用された最適化された方法)を使用してデバイスを乾燥させます( 補足ファイル1を参照)。
      注:使用する方法に関係なく、乾燥ステップはローカル環境に合わせて最適化する必要があります。通常の乾燥時間が特定されるまで、ウェルの乾燥速度を頻繁に監視します。低湿度環境では、乾燥ボックスを使用すると、乾燥時間は~30〜40分になります。ウェル内の培地が収縮して沈むため、プレートを乾燥させすぎないでください。デバイスをより長く乾燥させ、多数のウェルを過剰に乾燥させるよりも、いくつかのウェルがまだ濡れている間にデバイスを乾燥から取り外す方が良いです。
  4. 水の結晶を確認してください。トレイ内の水の結晶の大部分が乾燥し、乾燥プロセス中に体積が失われた場合は、トレイにさらに追加します。
  5. バクテリアが乾いたら、すぐにワームを追加するか(セクション12)、後で使用するためにトレイを密封します。密封するには、トレイの蓋を閉め、4つの側面すべてを1枚のパラフィルムで包みます。2 回繰り返して、合計 3 つのパラフィルムレイヤーを作成します。トレイを完全に包んだ後、ワームを追加する前に、デバイスを室温で最大4日間ベンチに置いておくことができます(セクション12)。

12.マルチウェルデバイスへのワームの追加

  1. プラチナピックを使用してウェルごとに1つのワームを手動で各ウェルに追加し、セクション9で準備したワームのプレートから動物を移します。希望するライフステージと年齢にあるワームのみを選択してください。
    注:ワームをデバイスに追加するのに1時間以上かかると、lmNGMが乾燥する可能性があるため、ワームはできるだけ早く追加する必要があります。デバイスのウェルに追加する前に、一度に複数のワーム(20+)を選択すると、速度を上げるのに役立ちます。

13.長期使用のためのデバイスの準備の終了

注意: これらの手順により、実験期間中、デバイスのウェルが水和されたままになります。

  1. 水の結晶を調べます。水の結晶がデバイスの上部と同じ高さであるが、オーバーフローしていないことを確認してください。必要に応じて、トレイに水の結晶を追加します。
  2. 準備した洗剤溶液をトレイの蓋の内側に一滴加え(手順1.5を参照)、洗剤溶液が乾くまでタスクワイプでこすります。これにより、デバイスがトレイ内に密封された後の蓋の曇りを防ぎ、ワームがはっきりと見えるようになります。
  3. パラフィルムシールの長期的な完全性を促進する特定の技術を使用して、トレイを3枚のパラフィルムで包みます。
    1. トレイの両側だけを覆うようにパラフィルムを少し伸ばします。これを2番目のパラフィルムで繰り返して、他の2つの側面をカバーします。
    2. パラフィルムの最初の層の上に重ねて、パラフィルムの最後の部分を取り、それを完全に伸ばし、4つの側面すべてを包みます。適切に密封されている場合、デバイスウェルは~2か月間水和したままにする必要があります。
      注意: パラフィルムの完全性は1〜2週間ごとに監視する必要があり、壊れた場合はパラフィルムを交換する必要があります。
  4. 70%エタノールで濡らしたタスクワイプを使用して、トレイの上部から指紋を取り除きます。

14. データの収集

注:この研究の目的は、培養方法論を説明することです。一度装着されると、マルチウェルデバイスは、さまざまな表現型の縦方向モニタリングと互換性があります。ここでは、最も一般的なパラメータのいくつかを測定するための基本的なガイダンスが提供されます。

  1. 寿命:プレートをタップするか、1〜3日ごとにワームを明るい青色の光にさらして、寿命を監視します。動きが観察されない場合は、デッドとしてスコアを付けます。これらのマルチウェルデバイスは、寿命を推定するための自動イメージングおよび分析パイプラインとも互換性があります13,18。
  2. 活動:デバイスウェル内の動物の静止画像またはビデオを撮影し、移動距離、速度、またはその他の移動メトリックを評価することにより、生涯を通じて個々の動物の活動を監視します。これらのデバイスは、活動を推定するための自動イメージングおよび分析パイプラインとも互換性があります13,18。
  3. 体のサイズと形状:デバイスウェル内の動物の静止画像を撮影し、標準的なイメージング技術を使用して視覚パラメータを定量化することにより、体のサイズと形状の変化を監視します。原則として、この培養方法は、線虫の体型のより高度な評価のために既存のソフトウェアと互換性があるはずです19,20,21。

15.デバイスの再利用

注意: 実験が完了した後、マルチウェルデバイスは洗浄して最大3回再利用できます。追加の再利用は、おそらく培地からの化学物質またはPDMS材料の壁に蓄積する細菌によって引き起こされる、ワームの表現型に影響を与え始めます。

  1. パラフィルムを廃棄し、トレイからデバイスを取り外します。デバイスの右上隅にあるノッチを確認します。これは、デバイスが使用された回数を示しています。3回使用した場合は、デバイスを廃棄してください。使用回数が3回未満の場合は、清掃して再利用してください。
    注意: トレイはポリスチレン製で、lmNGM、バクテリア、またはメディアへの添加剤と直接接触することはありません。視覚的に明確である限り、何度も再利用できます。
  2. トレイから残っている水の結晶を洗い流します。トレイの内側に10%漂白剤溶液をスプレーし、10分間放置します。脱イオン水ですすぎ、すぐに乾かしてウォータースポットを避けてください。
  3. デバイスを流水の下に保持して、ウェルからメディアのクリーニングを開始します。デバイスを水中でゆっくりと曲げたりひねったりして、ウェルからメディアを緩めますが、デバイスが裂けるほど曲げないでください。ウェルに詰まった残りの培地を200 μLのピペットチップで取り出します。
  4. 2Lビーカーに攪拌子~3/4を入れ、脱イオン水で沸騰させます。
  5. 沸騰したお湯に1つまたは2つのマルチウェルデバイスと攪拌子を追加します。磁気攪拌を低速(~200 rpm)にオンにして、水中でデバイスを穏やかに攪拌します。デバイスを10分間沸騰させます。
  6. 金属製のピンセットでデバイスを水から取り出し、ペーパータオルの上にしっかりと下に置いて水気を切ります。デバイスを少なくとも一晩乾燥させます。
  7. 装置が完全に乾いたら、ホイルで包み、オートクレーブテープで密封します。オートクレーブテープに装置の使用回数を記入してください。オートクレーブを121°Cで15分間のドライサイクルで滅菌します。これで、デバイスを再利用する準備が整いました。

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結果

WorMotel培養システムを使用して、寿命、健康寿命、活動など、さまざまなデータを収集できます。発表された研究では、寿命と健康寿命13,14、静止と睡眠22,23,24、および行動25を研究するためにマルチウェルデバイスを利用しています。寿命は、手動で、または画像の収集とダウンストリームの画像分析を通じてスコアリングできます。前者のアプローチでは、1〜3日ごとに刺激(プレートを叩いたり、青色光にさらされたりするなど)に続いてワームを手動で観察し、ペトリプレート1の標準的な方法と同様に、動きが観察されない場合は死んでいるとスコアを付けることができます。後者のアプローチは似ていますが、刺激が適用された後に撮影された画像間のフレーム間の違いを比較...

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ディスカッション

WorMotelシステムは、何百もの孤立した C.エレガンスの 個別化されたデータを経時的に収集するための強力なツールです。発生停止、運動行動、および老化のアプリケーションにマルチウェルデバイスを使用した以前の研究に続いて、この作業の目標は、活動、健康、および寿命をより高いスループットの方法で長期間監視するためのマルチウェルデバイスの準備を最適化することでした。この作業は、元のプロトコル13からのステップの多くを最適化し、技術的困難を提示し得る重要なポイントを強調し、プレートおよび他の材料の再利用に関する議論を提供する、マルチウェルデバイスを準備するための詳細なプロトコルを提供する。

スケーリングの目的で、現在、通常の週に10〜20台のデバイスを準備しているラボとして、デバイスを再利用できるかどうか、再利用できる場合はどの程度再利用できるかが最重要でした。PDMS装置の準備は、ペトリプレート上で伝統培養を行うよりも時間と費用の両面で高いコストがかかりますが、これらの高いコストは、PDMSまたはシステムの他のコンポー...

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開示事項

著者らは、開示すべき利益相反はないと述べています。

謝辞

この研究は、NIH R35GM133588からG.L.S.、米国医学アカデミー触媒賞、アリゾナ州理事会が管理するアリゾナ州技術研究イニシアチブ基金、およびエリソン医学財団によってサポートされました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
2.5ポンド重量CAPバーベルRP-002.5
アクリルシート(6インチx 4インチx 3/8インチ)ファルケンデザインACRYLIC-CL-3-8 / 1224大きなシートを小さいサイズにカット 
アンピシリンナトリウム塩Sigma-AldrichA9518
オートクレーブスクイーズボトルNalgene2405-0500
バクト寒天BD Difco214030
バクトペプトンThermo Scientific211677
Basin, 25 mLVWR89094-664使い捨てピペット洗面器 
キャビネット式真空デシケーター SP Bel-ArtF42400-4001乾燥剤を使用する必要はなく、真空チャンバーとして使用するだけです。 
CaCl2Acros Organics349615000
Caenorhabditis elegans N2Caenorhabditis Genetics Center (CGC)N2野生型
カルベニシリン株 GoldBioC-103-25
遠心分離機Beckman360902
コレステロールICN Biomedicals Inc101380
圧縮酸素タンクエアガスUN1072
CuSO4Fisher ChemicalC493-500
ドライビーズバスインキュベーターフィッシャーサイエンティフィック11-718-2
大腸菌OP50 Caenorhabditis Genetics Center (CGC)OP50C. elegansの標準的な実験室用食品
エタノールミリポアex0276-4
フロクスウリジン研究製品 国際F10705-1.0
ハイブリダイゼーションオーブンTechne731-0177PDMS混合物を硬化させるために使用される、同様のオーブンで十分です
インキュベーターシェルラボ202020度;ワーム株と37°を維持するためのCインキュベーター。バクテリアを育てるCインキュベーター 
イソプロピル ß-D-1-チオガラクトピラノシド (IPTG)GoldBioI2481C100
K2HPO4>Fisher ChemicalP288-500
KH2PO4Fisher ChemicalP286-1
KimwipesKimTech34155Task
wipes LB Broth, LennoxBD Difco240230
低融点アガロース研究製品国際A20070-250.0
MgSO4Fisher ChemicalM-8900
マイクロ波 シャープR-530DK
マルチチャンネルリピートピペット、20–200 µL LTS EDP3レイニン17013800使用された正確なモデルはもう販売されておらず、同様のモデルのカタログ番号が提供されています
NaClFisher BioreagentsBP358-1
Nunc OmniTrayThermo Scientific264728Clear polystyrene trays
Parafilm MFisher Scientific13-374-10ダブルワイド (4 in)
ペトリプレート、100 mM VWR25384-342
ペトリプレート、60 mM フィッシャーサイエンティフィックFB0875713A
プラズマクリーナープラズマエッチング株式会社PE-50
PLATINUM真空ポンプJBインダストリーDV-142N 
PolyJet 3DプリンタStratasys Objet500 Connex3PolyJet 3Dプリンティングサービス(メーカー:Vero Rigid;仕上げ:マット;カラー:グロス;解像度:X軸:600dpi、Y軸:600dpi、Z軸:1600dpi)
振とうインキュベーターLab-Line3526CC
smartSpatulaLevGo, Inc.17211使い捨てスパチュラ
高吸水性樹脂 (AgSAP Type S)M2 Polymer TechnologiesType S本文では「水晶」と呼ばれ
SYLGARD 184 シリコーンエラストマーベースThe Dow Chemical Company2065622
SYLGARD 184 シリコーンエラストマー硬化剤The Dow Chemical Company2085925
シリンジフィルター (0.22 & micro;m)ネスト・サイエンティフィック・USA社 
シリンジ、10mL フィッシャーサイエンティフィック14955453
TWEEN 20Thermo ScientificJ20605-AP洗剤
真空ポンプオイルVWR54996-082
VeroBlackPlusStratasys RGD875硬質 3D プリント フィラメント
計量ボートThermo ScientificWB30304PDMS 混合物の量に十分な大きさ
ズ ProtoCAMが提供するています380111

参考文献

  1. Sutphin, G. L., Kaeberlein, M. Measuring Caenorhabditis elegans life span on solid media. Journal of Visualized Experiments. (27), e1152(2009).
  2. Xian, B., et al. WormFarm: A quantitative control and measurement device toward automated Caenorhabditis elegans aging analysis. Aging Cell. 12 (3), 398-409 (2013).
  3. Rahman, M., et al. NemaLife chip: A micropillar-based microfluidic culture device optimized for aging studies in crawling C. elegans. Scientific Reports. 10, 16190(2020).
  4. Chronis, N., Zimmer, M., Bargmann, C. I. Microfluidics for in vivo imaging of neuronal and behavioral activity in Caenorhabditis elegans. Nature Methods. 4 (9), 727-731 (2007).
  5. Clark, A. S., Huayta, J., Arulalan, K. S., San-Miguel, A. Microfluidic devices for imaging and manipulation of C. elegans. Micro and Nano Systems for Biophysical Studies of Cells and Small Organisms. Liu, X., Sun, Y. 13, Academic Press. Cambridge, MA. Chapter 13 295-321 (2021).
  6. Levine, E., Lee, K. S. Microfluidic approaches for Caenorhabditis elegans research. Animal Cells and Systems. 24 (6), 311-320 (2020).
  7. Atakan, H. B., et al. Automated platform for long-term culture and high-content phenotyping of single C. elegans worms. Scientific Reports. 9, 14340(2019).
  8. Solis, G. M., Petrascheck, M. Measuring Caenorhabditis elegans life span in 96 well microtiter plates. Journal of Visualized Experiments. (49), e2496(2011).
  9. Leung, C. K., Deonarine, A., Strange, K., Choe, K. P. High-throughput screening and biosensing with fluorescent C. elegans strains. Journal of Visualized Experiments. (51), e2745(2011).
  10. Laranjeiro, R., Harinath, G., Burke, D., Braeckman, B. P., Driscoll, M. Single swim sessions in C. elegans induce key features of mammalian exercise. BMC Biology. 15 (1), 30(2017).
  11. Çelen, İ, Doh, J. H., Sabanayagam, C. R. Effects of liquid cultivation on gene expression and phenotype of C. elegans. BMC Genomics. 19 (1), 562(2018).
  12. Pittman, W. E., et al. A simple apparatus for individual C. elegans culture. Methods in Molecular Biology. 2144, 29-45 (2020).
  13. Churgin, M. A., et al. Longitudinal imaging of Caenorhabditis elegans in a microfabricated device reveals variation in behavioral decline during aging. eLife. 6, 26652(2017).
  14. Jushaj, A., et al. Optimized criteria for locomotion-based healthspan evaluation in C. elegans using the WorMotel system. PLoS One. 15 (3), 0229583(2020).
  15. Mittal, K. K., Mickey, M. R., Singal, D. P., Terasaki, P. I. Serotyping for homotransplantation. 18. Refinement of microdroplet lymphocyte cytotoxicity test. Transplantation. 6 (8), 913-927 (1968).
  16. Espejo, L., et al. Long-term culture of individual Caenorhabditis elegans on solid media for longitudinal fluorescence monitoring and aversive interventions. Journal of Visualized Experiments. , (2022).
  17. Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Cerón, J. Basic Caenorhabditis elegans methods: synchronization and observation. Journal of Visualized Experiments. (64), e4019(2012).
  18. Freitas, S. Worm Paparazzi - A high throughput lifespan and healthspan analysis platform for individual Caenorhabditis elegans. University of Arizona. , Tucson, USA. Master's thesis (2021).
  19. Moore, B. T., Jordan, J. M., Baugh, L. R. WormSizer: High-throughput analysis of nematode size and shape. PLoS One. 8 (2), e57142(2013).
  20. Husson, S. J., Costa, W. S., Schmitt, C., Gottschalk, A. Keeping track of worm trackers. WormBook. , (2013).
  21. Roussel, N., Sprenger, J., Tappan, S. J., Glaser, J. R. Robust tracking and quantification of C. elegans body shape and locomotion through coiling, entanglement, and omega bends. Worm. 3 (4), 982437(2014).
  22. Grubbs, J. J., vander Linden, A. M., Raizen, D. M. Regulation of sleep by KIN-29 is not developmental. microPublication Biology. 2020, (2020).
  23. Iannacone, M. J., et al. The RFamide receptor DMSR-1 regulates stress-induced sleep in C. elegans. eLife. 6, 19837(2017).
  24. McClanahan, P. D., et al. A quiescent state following mild sensory arousal in Caenorhabditis elegans is potentiated by stress. Scientific Reports. 10, 4140(2020).
  25. Churgin, M. A., McCloskey, R. J., Peters, E., Fang-Yen, C. Antagonistic serotonergic and octopaminergic neural circuits mediate food-dependent locomotory behavior in Caenorhabditis elegans. The Journal of Neuroscience. 37 (33), 7811-7823 (2017).
  26. Kenyon, C., Chang, J., Gensch, E., Rudner, A., Tabtiang, R. A C. elegans mutant that lives twice as long as wild type. Nature. 366 (6454), 461-464 (1993).
  27. Murphy, C. T., et al. Genes that act downstream of DAF-16 to influence the lifespan of Caenorhabditis elegans. Nature. 424 (6946), 277-283 (2003).
  28. Hulme, S. E., et al. Lifespan-on-a-chip: Microfluidic chambers for performing lifelong observation of C . elegans. Lab on a Chip. 10 (5), 589-597 (2010).
  29. Lionaki, E., Tavernarakis, N. High-throughput and longitudinal analysis of aging and senescent decline in Caenorhabditis elegans. Methods in Molecular Biology. 965, 485-500 (2013).
  30. Szewczyk, N. J., et al. Delayed development and lifespan extension as features of metabolic lifestyle alteration in C. elegans under dietary restriction. The Journal of Experimental Biology. 209, 4129-4139 (2006).
  31. Ghosh, R., Emmons, S. W. Episodic swimming behavior in the nematode C. elegans. The Journal of Experimental Biology. 211, 3703-3711 (2008).
  32. Hartman, J. H., et al. Swimming exercise and transient food deprivation in Caenorhabditis elegans promote mitochondrial maintenance and protect against chemical-induced mitotoxicity. Scientific Reports. 8, 8359(2018).
  33. Yemini, E., Jucikas, T., Grundy, L. J., Brown, A. E. X., Schafer, W. R. A database of Caenorhabditis elegans behavioral phenotypes. Nature Methods. 10 (9), 877-879 (2013).

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マルチウェルデバイスの固体培地上での単離 されたカエノラブディティスエレガンスの 長期培養とモニタリング
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