精液中のペルオキシダーゼ陽性白血球の検査

不妊症は、生殖年齢のカップルの約15%に影響を与える世界的な公衆衛生問題として浮上しています。男性要因は、不妊症全体の症例の約50%に寄与しており、ほぼ20%から30%は男性要因のみに起因する可能性があります^1,2,3。男性生殖器感染症(MGTI)は、男性不妊症の重大な原因の1つであり、症例の約15%を占めています^4,5。

ほとんどの個体は精液中に白血球を持ち、非精子細胞の13%を占め、好中球12%、マクロファージ0.9%、リンパ球0.1%の割合が異なります^6,7。世界保健機関(WHO)のヒト精液の検査と処理に関する実験マニュアル(第5版)によると、白血球精子症は通常、精液中の>1×10⁶細胞/ mLの白血球の存在として定義^{されます8。}この状態は、環境毒素、薬物乱用、精索静脈瘤、MGTIなどの多くの要因によって引き起こされる可能性があり、すべてが^精液中の白血球濃度の異常な増加につながる可能性があります9。白血球は精液中の活性酸素種(ROS)レベルを上昇させ、脂質過酸化とタンパク質とDNAへの酸化的損傷を引き起こし、精子の運動性の低下、精子の形態学的異常の増加、精子のDNA断片化指数の上昇、精子の先体機能の障害、さらには胚の発達への悪影響をもたらす^{可能性があります10,11}。

現在、アンドロロジストは一般的に、生殖器の炎症を特定する際に、精液中の丸い細胞または精液中のエラスターゼを調べることを選択します。しかし、剥がれた精子形成細胞と生殖管上皮細胞を区別することはしばしば困難であり、抗生物質の無差別で不必要な使用を減らすことには寄与しません⁶。後者の検査方法は、比較的複雑で時間がかかり、結果の報告が遅いため、MGTIなどの疾患の早期診断と治療には有益ではありません。米国泌尿器科学会(AUA)は、精液分析における円形細胞濃度が1 ×^{10 6} 細胞/mLを超える場合は、白血球と生殖管から剥がれた細胞をさらに分化する必要があると提案しています¹²。一部のアンドロロジーラボでは、フローサイトメ^トリー13 または白血球抗原(CD45など)免疫細胞化学¹⁴ を利用して白血球を検査しています。これらの方法は正確ですが、費用と時間がかかるため、特に発展途上国では大規模な臨床実装が困難です。

ペルオキシダーゼは様々な種類の細胞に広く分布しており、酸化ストレス損傷に対する耐性に重要な役割を果たしています。ミエロペルオキシダーゼ(MPO)は、一般的に免疫細胞に発現するペルオキシダーゼサブファミリーのメンバーです。好中球のアズロフィリック顆粒^15,16で最も高発現し、リンパ球^17,18、単球、マクロファージ¹⁹にも発現する。精液中の白血球、特に好中球の濃度は、ペルオキシダーゼ陽性の丸い細胞を調べることによって得ることができます^7,20。精液中の白血球の検査プロセスを経済的、便利、かつ効率的にするために、検査方法を再設計しました。コンピューター支援精液分析(CASA)システムの助けを借りて、白血球の濃度を60分以内に取得できます。これにより、患者さんの検査費用や結果が出るまでの待ち時間が短縮され、検査技師の負担軽減や医師の診断・治療待ち時間の短縮が期待できます。

この研究は、中山大学第三附属病院の医療倫理委員会によって審査され、承認されています。

1.作業溶液の調製

1. 作業溶液の調製に不可欠な次の試薬(オルトトルイジン基質溶液、飽和塩化アンモニウム(NH₄Cl)溶液、148 mmol/L エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム塩(Na₂EDTA)溶液、および 6% (v/v) 過酸化水素溶液。トランスファーピペット(1000 μL、200 μL、10 μL)や試験管ラックなどの必要なツールとともに、室温(RT)のラボベンチに置いてください。
   注意:上記の試薬を取り扱う前に、安全データシート(SDS)をお読みください。
2. 調製した作業溶液を保管し、光への暴露から保護するために、不透明な茶色の試薬ボトルを準備します。
3. 以下に指定された比率に従って、試薬を不透明な茶色の試薬ボトルに移します。
   1. 200 μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを100 μLに調整します。次に、NH₄Cl溶液100μLを不透明な茶色の試薬ボトルに移します。
   2. ピペットチップを交換し、上記の200 μLのトランスファーピペットを使用して、148 mmol/L Na₂EDTA溶液100 μLを不透明な茶色の試薬ボトルに移します。次に、ピペッティングで静かに吹き付け、溶液を完全に均質化します。
   3. 1000 μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを900 μLに調整します。次に、900μLのオルトトルイジン基質溶液を不透明な茶色の試薬ボトルに移し、ピペッティングで静かに吹き付け、溶液を完全に均質化します。
   4. 10 μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを5 μLに調整します。次に、6%(v/v)過酸化水素溶液5 μLを不透明な茶色の試薬ボトルに移します。
4. 1000μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを1000μLに調整します。ピペットチップを元に戻し、ピペッティングで静かに吹き飛ばし、不透明な茶色の試薬ボトル内の溶液を完全に均質化します。
5. すぐに使用できる作業溶液は、RTの不透明な茶色の試薬ボトルに光を避けて保管してください。作業溶液は24時間反応性です。
6. 各精液サンプルには、900μLの作業溶液が必要です。毎日調製する作業溶液の量が、毎日検査されるサンプルの数に対応していることを確認してください。

2.精液サンプルの調製

1. 精液サンプルを採取する前に、ヒト精液の検査と処理に関する世界保健機関(WHO)の検査マニュアル(第5版)で義務付けられているように、患者が2〜7日間射精を控えていることを確認してください。⁸.マスターベーションは、精液サンプルを取得するための好ましい方法です。検査の精度を向上させるために、射精したすべての精液を採取するように患者に指示します。
2. 恒温スタンドの電源を入れ、事前に37°Cまで加熱して、その後の精液サンプルの液化をスムーズに進めます。
3. 患者の精液サンプルを受け取ったら、識別コード、採取時間、禁欲期間、およびその他の関連情報を含む詳細情報をポリマーベースのレセプタクルの外壁に細心の注意を払って記録します。
4. 精液サンプルを収容するポリマーベースのレセプタクルを、精液化に有益な37°Cに予熱した恒温スタンドに置きます。
5. 精液サンプルをポリマーベースのピペットに吸い込み、精液サンプルが完全に液化するまで5分ごとに液化状態を観察します。
6. 精液サンプルが30分以内に完全に液化されていない場合は、まだ検査を行わないでください。さらに30分待ちます。60分経っても精液が完全に液化しない場合は、等量のリン酸緩衝液を1:1に希釈し、静かに攪拌して液化を促進します。
7. 徹底的な攪拌と一貫した均質化の後、その後の検査手順のために完全に液化した精液サンプルを保持します。

3. ペルオキシダーゼ陽性白血球の染色と原精液サンプルの分析

1. サンプリングの前に、ポリマーベースのピペットを使用してピペッティングで繰り返しブローし、検査中の精液サンプルを完全に均質化します。
2. 200 μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを100 μLに調整します。ピペットチップを交換し、精液サンプル100μLを遠心分離チューブに移します。
3. 1000 μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを900 μLに調整します。ピペットチップを交換し、上記の作業溶液900μLを遠心チューブに移します。
4. 1000μLのトランスファーピペットを用いて、精液サンプルと作業液からなる反応物をピペッティングで繰り返しブローし、十分に均質化します。
5. 遠心分離管を2次元加振機上の試験管ラックに置き、室温で200rpmで30分間連続撹拌します。
6. 染色反応を待っている間に、CASAシステムを利用して精液サンプルを分析し、ポリマーベースのレセプタクル内の元の精液サンプル中の精子の濃度を決定します。
   1. CASAシステムの電源スイッチをオンにし、SCA SCOPEアイコンをダブルクリックしてアプリケーションソフトウェアを開きます。
   2. サンプリングする前に、ピペッティングで繰り返しブローし、元の精液サンプルをポリマーベースのピペットで再度完全に均質化します。
   3. 10 μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを10 μLに調整します。ピペットチップを交換し、元の精液サンプルを10 μLまでピペットで移し、SCA計数チャンバーに入れます。精液サンプルの漂流が止まるまで60秒待ちます。
   4. SCA計数チャンバーをCASAシステムのサンプルホルダーに配置し、アプリケーションソフトウェアのダイアログボックスに患者の情報を設定して、正式な検査の準備をします。
   5. 開始ボタンをクリックして、CASAシステムを使用してSCA計数チャンバー内の元の精液サンプルを調べ、精子の濃度などの必要なデータを記録します。

4. ペルオキシダーゼ陽性白血球と精子の観察

1. 1000μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを1000μLに調整します。ピペットチップを交換し、ピペッティングで繰り返しブローし、30分間の反応プロセスの最後に、遠心分離管内の精液サンプルと作業溶液からなる反応物を完全に均質化します。
2. 10 μLのトランスファーピペットを使用し、ノブを回してスケールを10 μLに調整します。ピペットチップを元に戻し、上記の反応物10μLをピペットで採取し、精子計数室に入れます。最後に、精子計数室を専用のガラスカバースリップで覆います。
3. 精子計数室を顕微鏡ステージに置き、2つの10倍接眼レンズで光学顕微鏡の電源スイッチをオンにします。次に、反応物サンプルのドリフトが止まるまで60秒待ちます。
4. 待ち時間中に顕微鏡コンバーターを10倍対物レンズに切り替えます。次に、粗調整つまみと微調整つまみを順番に調整します。最後に、精子と丸い細胞を10×10の倍率で観察します。
5. 分析する視野が決まったら、顕微鏡コンバーターを40倍の対物レンズに切り替え、精子と褐色ペルオキシダーゼ陽性白血球を10×40の倍率で観察します。
6. 電子カウンターシステムを利用して、少なくとも200個の精子と、対応するフィールド内の褐色ペルオキシダーゼ陽性白血球の数をカウントします。

5.ペルオキシダーゼ陽性白血球の濃度の計算

1. ペルオキシダーゼ陽性白血球の濃度は、次の式を使用して計算します。
   

前述の手順を実施すると、遠心分離管内の反応物はしばしば半透明の乳白色の外観を示します(図1)。明らかに褐色を検出すると、白血球の脱顆粒の可能性が明らかになり、液体染色が生じる可能性があります。その結果、染色プロセスが失敗する可能性があり、再染色するか、再検査のために新しい精液サンプルを採取する必要があります21。

ペルオキシダーゼ陽性の白血球は褐色を呈し、染色されていない通常の丸い細胞とは対照的でした(図2、通常のスライド)。その後、現在の顕微鏡フィールドの下ですべての精子と褐色白血球をカウントしてから、継続的な観察と集計のためにまったく新しいフィールドに移行しました。最適な精度を確保するためには、最低200個の精子と対応する視野に存在する白血球を数える必要があります。

図1:反応液。 反応プロセスを完了する反応物は、半透明の乳白色の液体です。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図2:光学顕微鏡での観察(通常のスライド)。 (A)ペルオキシダーゼ陽性白血球、(B)10倍40倍光学顕微鏡で観察した普通の丸い細胞。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

著者は何も開示していません。