October 22nd, 2010
我々はレトロウイルス導入を用いて抗原特異的マウスT細胞を生成するためにプロトコルを提示
この手順の目的は、マウスT細胞に機能的な抗原特異的T細胞受容体を発現させることです。まず、目的のTCR遺伝子を含むプラスミドを含むレトロウイルス産生細胞株をトランスフェクションし、レトロウイルスを発現するTCRをパッケージ化します。次に、マウス脾臓からT細胞を単離して精製し、これらの精製されたT細胞に最初のステップで生成されたレトロウイルスを感染させます。
最後に、形質導入されたT細胞を増殖させて、かなりのレベルの受容体を発現および取得します。最終的には、フローサイトメトリーを通じて、マウスT細胞上の機能的抗原特異的TCRの発現を示す結果を得ることができます。こんにちは、私の名前はミシェル・クロウ・ガードです。
私はNYU医学部のNYUがん研究所にいます。今日は、初代T細胞の形質導入方法をお見せしますが、その方法を紹介するのは、研究室のポスドクであるshiong氏、研究室の大学院生であるKaleena Melek氏、研究室のポスドクであるArian Perez Garcia氏です。トランスジェニックマウスのような既存の方法に対するこの技術の主な利点は、時間がはるかにかからないことです。
この方法は、どのTCRが抗原に対してより良い反応を示すことができるかなど、免疫学的な重要な疑問に答えるのに役立ちます。この技術は、癌患者の治療に有望であることが示されており、ヒトT細胞のインビトロ修飾からなる養子T細胞移植療法に適用することができ、T細胞受容体のα鎖およびβ鎖の均等な発現を確保するためである。目的の遺伝子を同じプロモーターの制御下で同じレトロウイルスベクターにサブクローニングします。
狂言マキシ調製キットを使用して高品質の血漿DNAを調製し、1マイクロリットルあたり1マイクログラムのストックを作成します。Platinum Eレトロウイルスパッケージング細胞でプレートから培地を取り出し、1つのXPBSでプレートを1回洗浄します。トリプシンEDTAを添加して細胞を剥がし、摂氏37度で数分間インキュベートします。
脱落した細胞をDMEM培地で中和し、ファルコンチューブに移します。次に、細胞をGの1000倍で5分間遠心分離します。仰迌腫を吸引し、細胞ペレットをDMEM培地に再懸濁します。
細胞数を決定し、細胞を10の0.6倍から1ミリリットルプレートあたり6で希釈します。10ミリメートルのポリリジンコーティングされた組織培養プレートに10ミリリットルの細胞懸濁液を入れ、5%二酸化炭素中で摂氏37度の細胞インキュベーターで一晩増殖します。翌朝、光学顕微鏡で細胞を検査し、約80%coの流暢さを確認します。
メディアをプレートからそっと取り出します。1つのXPBSで細胞を1回洗浄し、ペニシリンまたはストレプトマイシンを含まない10ミリリットルの温めた新鮮なDMEM培地を追加します。唇平均トランスフェクション複合体については、2つの混合物を調製し、DNAのopti ME M1と脂肪切除試薬のもう1つを室温で5分間別々に平衡化します。
その後、穏やかに混ぜ合わせ、20分間インキュベートします。室温で、混合物をゆっくりと白金E細胞に滴下します。プレートを前後に静かに揺らして、トランスフェクション混合物を均等に分配します。
次に、細胞インキュベーターで細胞を摂氏37度と二酸化炭素5%でインキュベートします。6〜8時間後、培地を10ミリリットルの新鮮なDMEM培地と交換してウイルスを産生します。マウスの脾臓を採取し、RPMI培地に移します。
脾臓をセルストレーナーに入れます。シリンジプランジャーで脾臓を5cmの組織培養プレートにつぶします。細胞を無菌PBSで細胞ストレーナーから洗い流し、細胞を回収し、Gの1000倍で5分間遠心分離します。
サップナタントを捨てます。続いて、Resusが細胞ペレットをCK溶解バッファーに懸濁します。脾臓あたり2ミリリットルを加えて2分間インキュベートします。
室温で。RPMI培地を最大20ミリリットル加え、Gの1000倍で5分間遠心分離します。最後に、細胞ペレットを滅菌PBSに再懸濁します。
細胞数を決定し、Gの1000倍で摂氏4度で5分間遠心分離します。ウイルス形質導入前にマウスT細胞を活性化するためには、活性化抗体、すなわち抗CD3イプシロンおよび抗CD28でプレートをコーティングします。無菌PBS中に抗CD1ミリリットルあたり1マイクログラム、3イプシロン、および抗CD281ミリリットルあたり2マイクログラムの抗体混合物を調製し、250マイクロリットルの抗体混合物を24ウェル組織培養プレートの各ウェルに分注し、摂氏37度で2時間インキュベートします。
製品マニュアルに従って脾臓細胞を磁気的に標識します。LSカラムを磁場の中に置きます。標識細胞懸濁液をカラムに塗布します。
濃縮されたマウスCDの8個とT細胞のフロースルーを収集します。カラムを3ミリリットルのバッファーで3回洗浄し、前のブロースルーと組み合わせます。抗 CD 3 イプシロン抗体と抗 CD 8 α 抗体で細胞を染色し、フローサイトメトリーを分析します。
次に、細胞をGの1000倍で5分間遠心分離し、組換えヒトIL Twoを用いてRPMI培地で細胞ペレを1ミリリットルあたり100万細胞に再懸濁する。抗体溶液を活性化プレートから取り出します。滅菌PBSで各ウェルをすすいでください。
各ウェルに1ミリリットルの細胞懸濁液を加え、プレートを摂氏37度に5%二酸化炭素で細胞インキュベーターに入れます。ウイルス産生の2日後、プラチナESE細胞プレートの培地は黄色になるはずです。
ウイルスのすぴー酸を15ミリリットルの円錐管に移し、細胞の破片を取り除きます。ウイルスS上清をGの1000倍で5分間遠心分離します。ウイルスのすりおかしを新しいチューブに慎重に移します。
チューブの底に液体を残し、細胞の破片を乱さないでください。プレートから活性化されたT細胞を50ミリメートルの円錐管に集めます。セル番号を決定します。
一部の細胞を別のチューブに保存して、ネガティブコントロール遠心分離機としてGの1000倍で5分間使用し、仰臥位のナタントを廃棄します。次に、細胞ペレットをウイルス仰臥位に再懸濁します。組換えヒトのミリリットルあたり20ナノグラム、タンパク質硫酸塩のミリリットルあたり20ナノグラムと10マイクログラム/ミリリットルで10〜6細胞で10〜1ミリリットルでナタント。
コントロールチューブ用の24ウェルプレートの各ウェルに1ミリリットルの細胞懸濁液を加えます。レザス。RPMI培地に細胞を同じ細胞密度で、同量の組換えヒト、インターロイキン2、およびタンパク質硫酸塩で懸濁します。セルを同じプレートに追加します。
プレートをプラスチックフィルム遠心分離機で90分間、Gの2000倍、摂氏32度で休憩なしで包みます。遠心分離後、プラスチックフィルムをはがします。1ミリリットルの新鮮なRPMI培地と、組換えヒトインターロイキン1ミリリットルあたり20ナノグラムをそれぞれ2つずつ加え、プレートをインキュベーターにしっかりと戻します。
形質導入されたT細胞を毎日調べることが重要です。必要に応じて、セルを 1 対 3 の比率で分割します。細胞を過成長させたり、培地を6日目または7日目に黄色に変えたりしないでください。
TCRに特異的な抗体とMHC四量体で細胞を染色し、T細胞表面でのTCRの発現を評価します。UNSD T細胞をコントロールとして使用します。これらの形質導入T細胞は、さらなるダウンストリームアプリケーションに対応する準備が整いました。
ウイルス形質導入前。市販の磁気ビーズを使用して高純度T細胞サブセットを取得し、T細胞上のTCRの発現レベルを評価することは有利です。TCRのα鎖またはβ鎖に特異的な抗体を使用することができます。
通常、細胞の30%から80%は、TCR遺伝子とウイルス力価に応じて、形質導入されたTCRを発現できます。TCRに特異的なMHCテトラマーは、TCRの機能発現をさらに検証するためにも使用できます。このテクニックを習得すると、適切に実行すれば1週間で完了できます。
この手順を試みるときは、この手順に従って細胞を健康な状態に保つことを忘れないでください。細胞毒性、酸、サイトカイン放出アッセイなどの他の方法を実施して、形質導入の特異性や感度などの追加の質問に答えることができます。TCRです。
このビデオを見た後、あなたはお気に入りのTCRを初代T細胞に形質導入する専門家になるはずです。それでは、ラボでお会いしましょう。
この記事では、レトロウイルス転導による抗原特異的マウスT細胞の生成プロトコルを提示します。この方法は、マウスT細胞上に機能的なT細胞受容体を発現させることを目的とし、免疫学研究および潜在的な治療応用を促進します。
Retroviral transduction of TCRs into mouse T-cells enables rapid generation of antigen-specific T-cell models for immunotherapy research. This approach reduces timelines from weeks to days, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in immuno-oncology pipelines. The method provides a scalable, reproducible system for evaluating TCR specificity and function prior to human T-cell engineering.
The method fits within the discovery-to-preclinical continuum, enabling rapid TCR evaluation after target identification and before lead optimization in immunotherapy programs.