Name: Sf9細胞でとアメフラシ感覚ニューロンにおけるPKC転座のライブイメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-06T11:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 54 s
Description: 学ぶSf9細胞とアメフラシ感覚ニューロンにおけるPKC転座のライブイメージング法。蛍光標識したPKCを用いてレーザー走査型顕微鏡でリアルタイムに可視化し、細胞内シグナル伝達の動態を解析する。

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この作品は、ウェインS. Sossinに健康研究（CIHR）グラントのカナダの協会によってサポートされていました。キャロルA.ファラーはデラフォンルシェルシュエンサンテケベック（FRSQ）とコンラッドハリントンの交わりからポスドクの受信者です。著者は、グラフィックの概要とヘルプのためのビデオ撮影とマデリーンリッチモンドプールのヘルプはジョアンナブジー、マーガレットヘイスティングスとマーガレットLabbanに感謝します。

1。 Sf9細胞の単層培養の準備とメンテナンス<ol><li> Sf9細胞の培養と維持管理は、組織培養フードで実行されます。 </li><li> Sf9細胞はスポドプテラフルギペルダの卵巣細胞（Sf21細胞）から誘導されるとインビトロジェンからグレースのメディアで凍結した細胞として購入することができます。 </li><li>補ったグレイス昆虫培地、（1X）、〜30％ウシ胎児血清（FBS）斜め首が75 cm 2の細胞培養フラスコ内で追加された。の代わりに8 mLの</li><li> （約1〜2分）前後にチューブを移動して37℃のウォーターバス中で急速にSf9細胞の凍結チューブを融解する。 </li><li>均等に細胞を分散さは75 cm 2の細胞培養フラスコと優しく手で岩の板にSf9細胞を移す。 </li><li>細胞が接続されるまで、27で1〜2時間℃でインキュベートする。 </li><li>古い培地を除去し、30％FBSをfreshGraceの昆虫培地10mLに置き換えます。 </li><li>細胞がコンフルエントになるまで27℃でインキュベートする。 </li><li>単層培養を維持するためには、Sf9細胞のコンフルエントなフラスコから古い培地を除去し、10％FBSをグレース昆虫培地5 mLを加える。 </li><li>軽くフラスコの側にSf9細胞を分離するために数回タップします。 </li><li>ピペッティングしながらフラスコの壁を噴霧、一度ゆっくりと上下に10 mLのピペットとピペッター、ピペットメディアを使用する。滅菌済み15 mLのPolystereneチューブに細胞を移す。 </li><li>新しい75センチメートル2細胞培養フラスコと優しく手で岩の板に10％FBS（対数増殖期を維持するために1:5希釈）とグレース昆虫培地を8mLにSf9細胞懸濁液2 mlを加え。 </li><li>細胞がコンフルエントになるまで27℃でインキュベートする。 </li></ol> 2。 Sf9細胞で蛍光標識PKCの発現<ol><li>ライブイメージングの実験、文化35ミリメートルでSf9細胞マテックガラス底培養disheswith 14mmのガラス表面と0.16〜0.19ミリメートルのカバーガラスの厚さ。 </li><li>蛍光タンパク質でタグ付けされたPKCSは、以下に詳述する変更とメーカーのCellfectin IIのトランスフェクション試薬、以下の推奨事項を使用したSf9細胞で発現されています。 </li><li> 1日目：前に細胞を播種するために、少なくとも30分間、10％FBSとグレース昆虫培地で各マテックの料理を扱う。 </li><li>血球計を使用して、ステップ11（上記）からSf9細胞を数える。 </li><li> 150μLの全体積の各マテックのガラスカバースリップ上にプレートを0.05 × 10 6個の細胞。細胞は室温で30分間添付することができます。 </li><li>グレースの2mLを徐々に細胞を脱着しないように、各皿を1 mLに10％FBSを添加している追加。 </li><li> 27℃で一晩。 </li><li>この時点から、プラスミドDNAをSf9細胞のトランスフェクションのための製造業者の勧告を使用してください。 </li><li> 2日目：Cellfectin IIのトランスフェクション試薬を用いて蛍光標識およびPKCSトランスフェSf9細胞。私たちはしばしば、このシステムで共発現している（プラスミド構築のための詳細は以前に2,5を記載されている）強化された緑色蛍光タンパク質（EGFP）と単量体の赤色蛍光タンパク質（MRFP）でタグ付けされたPKCS。一度に蛍光タンパク質の発現は約70〜80％の細胞に発現している72時間のトランスフェクション後に得られます。つの蛍光タンパク質の同時発現は、約30％共発現細胞にトランスフェクション効率を低下させる。 PKC EGFP -タグ付きおよびPKC MRFP -タグを共発現したとき、最適なタンパク質発現のためのMRFP -タグ融合タンパク質のためのより多くのプラスミドDNAを2倍使用してください。 </li><li>実行ライブイメージング48〜72時間トランスフェクション後（最適なタンパク質発現のために、72時間を待つ）。 </li></ol> 3。 アメフラシ感覚ニューロンに蛍光標識PKCの発現<ol><li> アメフラシ神経細胞培養の調製は、趙と同僚の4でビデオの記事に記載されている。 </li><li>蛍光タンパク質でタグ付けされたPKCSは、以下に詳述するマイクロインジェクションの手順を使用してアメフラシ感覚ニューロンに発現されています。 </li><li>蒸留水の1％ファストグリーン（FCF）のストック溶液を調製、注射器と28ミリメートルシリンジフィルター（0.20μm）を使用してフィルタ。 -20℃で分注しストア</li><li>感覚ニューロンのマイクロインジェクションは、神経細胞を分離した後、1日または2日目に行ったが、我々は2日待っていると、カバースリップに優れた細胞接着を可能にすることに気付くことができます。 </li><li>感覚ニューロンの単離後2日目に、ファストグリーンのアリコートを解凍し、注射器と28ミリメートルシリンジフィルター（0.20μm）を使用して再度フィルタ。 </li><li> 0.5パーセントファストグリーンを含む蒸留水でプラスミドDNAの溶液を調製します。 μg/μLの0.4という高いプラスミドDNAの濃度を使用することができますが、これらの値より上にすることは推奨されません。 </li><li> 1 mLの注射器と4mmシリンジフィルター（0.20μm）を用いてプラスミドDNA /ファストグリーンソリューションをフィルタリングします。 </li><li>マイクを使って15分間16110 × gでプラスミドDNA /ファストグリーンソリューションを遠心rocentrifuge。 </li><li>微小電極プラーを使用して神経細胞のマイクロインジェクション（サッターフレイミング/ブラウンマイクロピペットプラー、モデルP - 97）のために鋭い電極を準備します。ボックスのフィラメントを使用して、1ミリメートル、外径、内径0.75ミリメートルと内部のフィラメント（世界精密機器がTW100F - 4）で薄壁ガラスキャピラリーを用いて長さ100 mmのガラス微小電極を引き出します。マイクロインジェクションの電極を引き出す方法の詳細についてはサター電極の料理本を参照してください。 </li><li> microloaderピペットチップ（エッペンドルフCA32950 - 050）を用いてプラスミドDNA /ファストグリーン溶液2μLを各電極を埋める。 </li><li>マイクロインジェクションの駅にアメフラシ神経細胞の培養を含むマテックガラス底の培養皿に移す。 </li><li>マイクロインジェクションステーションの構成は次のとおりです。自家製の防振台（キネティックシステムの防振ワークステーション）、外部のハロゲン照明とステレオスコープ、マイクロマニピュレーター（サターハクスリーウォールタイプのマニピュレーターに培養皿を保持するために、大きなガラスのステージをその空気ポンプ（世界の精密機器PV820空気圧ピコ-ポンプ）に接続されている微小電極ホルダー、）三軸の粗と超微細位置決めの両方を可能にする。空気ポンプの圧力入力は、圧縮された窒素のタンクに接続されています。 </li><li>微小電極ホルダーに微小電極を挿入します。 </li><li>ステレオ顕微鏡下での表示、細胞核内にマイクロピペットの先端を挿入します。 </li><li>核がuniformely緑色になるまで、窒素（/ 2の20ポンド期間に10〜100ミリ秒）の短い圧力パルスを実現。 </li><li>室温で4時間細胞をインキュベートし、℃で使用するまで4℃で保管。 24時間後に注射 - 最適なPKC転座の場合は、ライブイメージングの実験20を実行してください。 </li></ol> 4。 Sf9細胞をリビングにし、 アメフラシ感覚ニューロンにおけるPKC転座の可視化<ol><li>イメージングのために、我々は、Axiovert 200でツァイスLSM510倒立型共焦点顕微鏡を使用してください。 </li><li>イメージングプロトコルは、次の点以外はSf9細胞用とアメフラシ感覚神経でも同じです： アメフラシ感覚ニューロンは、X40の油浸対物レンズで撮像されているのに対し、Sf9細胞は、X63油浸対物レンズで撮像されています。 Sf9細胞は、 アメフラシ感覚ニューロンが18から20 o Cで台を維持室温でイメージングされたのに対し、26〜27 ° Cの時に維持温度制御チャンバー内に撮像されています</li><li>我々は、EGFPタンパク質とMRFPタンパク質でタグ付けされた画像のPKCにHeNeレーザー（543nmで励起）でタグ付けされた画像のPKCに50％のレーザー出力で30mWのアルゴンレーザー（488nmの励起）を使用します。アルゴンやヘリウムネオンレーザーの線は4％に減衰しており、事前の画像処理やピンホールにはそれぞれ50％の伝送出力が1に調整されます。 </li><li>イメージング段階で安定培養皿を持っているし、動きや振動を避けることが重要です。 </li><li>静かに皿に1 mLの全容量を残して10 mLのピペットを用いてディッシュから培地を1mLを削除します。 </li><li>核を見ることができる細胞の中央部で撮影してください。 </li><li>画像は30秒ごとに取る10月20日共焦点画像の時系列を設定します。 </li><li>時系列を開始します。 </li><li>写真2枚が（30秒の時点の後に）撮影された後、軽く薬を1 mL（2X濃度）P1000ピペットを用いて細胞の上にドロップしてドロップを追加。薬剤は、約30秒間連続して追加されます。 </li><li>一部の薬は、他の人が唯一の最適な5〜10分後の治療（動画1と動画2）である遅い転座を誘発しながら（60秒の時点で）すぐに次の薬物治療に表示できる高速な転座を誘発する。 </li><li>薬剤が洗い流さする必要がある場合は、皿の片側に1つのピペットで静かに洗浄バッファーをピペッティングし、反対側でメディアをペッティング、洗浄を行うために2 × 10 mLのピペットを使用してください。 </li><li>洗浄が効果的と薬剤の効果は可逆的であるかにされている場合、PKCは30〜60秒以内に細胞質ゾルに戻ります。 </li><li> LSMファイルとしてムービーを保存します。 </li><li> LSMのファイルを開くと画像が前と後の薬物治療定量化するためにNIHの画像Jソフトウェアを使用してください。定量化は別の場所で1記載されている。 </li></ol>

<ol><li>Farah, C. A., Nagakura, I., Weatherill, D., Fan, X. &amp, Sossin, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiological+role+for+phosphatidic+acid+in+the+translocation+of+the+novel+protein+kinase+C+Apl+II+in+Aplysia+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Physiological role for phosphatidic acid in the translocation of the novel protein kinase C Apl II in Aplysia neurons.</a> Mol Cell Biol. 28, 4719-4733 (2008).</li>
<li>Zhao, Y., Leal, K., Abi-Farah, C., Martin, K. C., Sossin, W. S. &amp, Klein, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((M.Isoform+specificity+of+PKC+translocation+in+living+Aplysia+sensory+neurons+and+a+role+for+Ca2%2B-dependent+PKC+APL+I+in+the+induction+of+intermediate-term+facilitation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">M.Isoform specificity of PKC translocation in living Aplysia sensory neurons and a role for Ca2+-dependent PKC APL I in the induction of intermediate-term facilitation.</a> J Neurosci. 26, 8847-8856 (2006).</li>
<li>Farah, C. A., Weatherill, D., Dunn, T. W. &amp, Sossin, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PKC+differentially+translocates+during+spaced+and+massed+training+in+Aplysia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">PKC differentially translocates during spaced and massed training in Aplysia.</a> J Neurosci. 29, 10281-10286 (2009).</li>
<li>Zhao, Y., Wang, D. O., Martin, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+Aplysia+sensory-motor+neuronal+cell+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparation of Aplysia sensory-motor neuronal cell cultures.</a> J Vis Exp. , (2009).</li>
<li>Manseau, F., Fan, X., Hueftlein, T., Sossin, W. S., Castellucci, V. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ca2%2B-independent+PKC+Apl+II+mediates+the+serotonin+induced+facilitation+at+depressed+synapses+in+Aplysia%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Ca2+-independent PKC Apl II mediates the serotonin induced facilitation at depressed synapses in Aplysia.</a> J. Neuroscience. 21, 1247-1256 (2001).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

我々は、Sf9細胞やアメフラシ感覚ニューロンのリアルタイムで蛍光標識PKCの画像の転座に手法を記載している。 Sf9細胞は、培養するため、画像PKC転座にシンプルなシステムを提供し、それらをトランスフェクトするのはとても簡単です。対照的に、 アメフラシ感覚ニューロンのマイクロインジェクションは、習得には時間がかかります。まで数カ月に。この技法に関連する問題は、電極の目詰まりなどがあります。注射液をフィルタリングし、それを遠心分離すると、通常のに役立ちますが、それをいっぱいにしながら時々気泡が電極に形成することができます。我々は、代わりに毛細管現象の電極を埋めるためにmicroloaderピペットチップを使用すると、気泡の形成を最小限に抑えるために役立つことがわかります。温度と運動：ライブイメージングについては、二つの要因は、しっかりとイメージングのセッション中に制御する必要があります。温度の変動は、転座に影響を与える可能性がありますし、温度制御チャンバーの使用を考慮する必要があります。撮影時の動きを避けるために、防振テーブルを使用することができます。

<table><tbody><tr><td>Sf9凍結細胞</td><td>&lt;電子顕微鏡（EM）&gt;*Spodoptera frugiperda*&lt;/em&gt; 卵巣細胞</td><td>Invitrogen</td><td>B825-01</td><td></td></tr><tr><td>グレイス&amp;rsquo;昆虫培地、補充済み (1X)、液体</td><td>試薬</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11605-094</td><td>Sf9細胞の培養に使用する</td></tr><tr><td>Corning 75cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; 傾斜ネック細胞培養フラスコ</td><td>ツール</td><td>Corning</td><td>430720</td><td>Sf9細胞の培養に使用する</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>試薬</td><td>CanSera</td><td>CS-C08-500</td><td>補足資料 Grace&amp;rsquo;使用前にFBSを含む培地で［細胞を］処理する</td></tr><tr><td>シリンジ</td><td>ツール</td><td>BD Biosciences</td><td>309604</td><td>Fast Green溶液のろ過に使用する</td></tr><tr><td>シリンジ</td><td>ツール</td><td>BD Biosciences</td><td>309602</td><td>プラスミドDNA / Fast Green溶液のろ過に使用する</td></tr><tr><td>フィルター</td><td>ツール</td><td>Corning</td><td>431229</td><td>Fast Green溶液のろ過に使用する</td></tr><tr><td>フィルター</td><td>ツール</td><td>Corning</td><td>431212</td><td>プラスミドDNA / Fast Green溶液のろ過に使用する</td></tr><tr><td>ガラス底ディッシュ</td><td>ツール</td><td>MatTek Corp.</td><td>P35G-1.5-14-C</td><td>トランスフェクションおよびイメージング前のSf9細胞の培養に使用します。</td></tr><tr><td>Cellfectin II試薬</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>10362-100</td><td>Sf9細胞において蛍光タグ付きPKCを発現させるために使用</td></tr><tr><td>ファストグリーンFCF</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F-7252</td><td>プラスミドDNA溶液のマイクロインジェクションを可視化するために使用する &lt;em&gt;アプリス（アメフラシ）&lt;/em&gt; 感覚ニューロン</td></tr><tr><td>薄壁ガラスキャピラリー</td><td>ツール</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>TW100F-4</td><td>マイクロ（micr）を作成するために使用してください。&amp;#8211;マイクロインジェクション用電極</td></tr><tr><td>マイクロローダーピペットチップ</td><td>ツール</td><td>Eppendorf</td><td>CA32950-050</td><td>マイクロプレートに充填する前にオートクレーブ滅菌してください。&amp;#8211;マイクロインジェクション用電極</td></tr><tr><td>PV820 ニューマチック・ピコポンプ </td><td>ツール</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>SYS-PV820</td><td>マイクロインジェクション装置の構成部品</td></tr><tr><td>マイクロ&amp;#8211;電極ホルダー</td><td>ツール</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>MPH6S</td><td>マイクロプレートホルダーとして使用する&amp;#8211;電極 </td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>ツール</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>MP-85</td><td>マイクロピペットを配置するために使用する&amp;#8211;3軸電極</td></tr></tbody></table>

sf9細胞でとアメフラシ感覚ニューロンにおけるpkc転座のライブイメージング

Live-imaging of PKC Translocation in Sf9 Cells and in Aplysia Sensory Neurons

プロテインキナーゼCS（PKCには）そのような細胞の成長と学習と記憶のような細胞プロセスの様々な調節において中心的役割を果たすスレオニンキナーゼセリンです。古典的PKCに（α、βI、βII、γ）、新規のI型は、PKCS（ε、η）、小説II型PKCの（δ、θ）、そして非定型PKCの（ζとι：脊椎動物におけるPKCアイソフォームの4つの既知の家族が暮らしている）。古典的なPKCSは、 カルシウムによって活性化されている小説のPKCがDAGにより活性化されるが、Ca 2 +の -独立している間に+とdiacylclycerol（DAG）、。非定型PKCには、Ca 2 +もDAGのどちらによって活性化されています。 アメフラシカリフォルニ 、記憶形成を研究する我々のモデルシステムでは、という三神経系特異的PKCアイソフォームの主要な各クラスから1つ、従来のPKC APL私、小説のI型PKC APL IIと非定型PKC APL IIIがあります。 PKCには、脂質活性化キナーゼであるため、細胞外シグナルに応答して、古典と小説PKCの活性化は、しばしば細胞質から形質膜へのPKC転座と相関している。そのため、生きた細胞でリアルタイムでPKCトランスロケーションを可視化するPKCの活性化につながるシグナル伝達経路を解明するための貴重なツールとなっています。私たちはシナプス可塑性の異なる型を媒介するため、異なる条件下で転位するPKCの、異なるアイソフォームを確立し、PKC APL IIの、セロトニン（5HT）アクティベーションのためのDAGとホスファチジン酸の両方の生産（PA）を必要とするために例えば、このテクニックは、許可されている転座1-2。重要なのは、同じニューロンを可視化する機能は、繰り返し私たちは、例えば、絶妙の詳細3におけるPKC応答の脱感作を測定することができました。このビデオでは、我々はSf9細胞培養の準備の各ステップを示す、 アメフラシ感覚ニューロンの培養物に反応してSf9細胞やアメフラシ感覚神経とPKC転座のライブイメージングの蛍光標識のPKCS発現する別のビデオの第4条に記載されているレーザー走査顕微鏡を用いて異なる活性剤。

このビデオでは、我々は、蛍光標識のPKCS使用して生きた細胞内PKC転座の可視化を実証する。

Sf9細胞でとアメフラシ感覚ニューロンにおけるPKC転座のライブイメージング

プロテインキナーゼC（PKC）は、細胞の増殖などの多種多様な細胞プロセスを制御する中心的な役割を担うセリン・スレオニンキナーゼであり、...

この手順の目的は、生細胞における蛍光タグ付きPKCの転位を可視化することです。これは、まずSf9細胞の培養液、またはPlegia California由来の感覚ニューロンの培養液を調製することで達成されます。次のステップでは、これらの細胞に蛍光タグ付きPKCを発現させます。最終ステップは、レーザースキャニング顕微鏡を用いて、異なる活性化剤に対するPKCの移行をイメージングすることです。最終的に、生細胞を用いてPKCの移行をリアルタイムでイメージングすることにより、ジオールグリセロールなどのセカンドメッセンジャーによる異なるPKCアイソフォームの分化的な調節を示す結果を得ることができます。こんにちは、キャロル・フェラです。私はモントリオール神経学研究所のWayne Sawn博士の研究室でリサーチアソシエイトを務めております。本日は、アプリス（Aplysia）の感覚ニューロンにおけるPKC転位のライブイメージングについて実演します。この手法は、記憶形成時に異なるPKCアイソフォームがどのように活性化されるかなど、シナプス可塑性分野における重要な疑問を解明するのに役立ちます。組織培養フード内にて、75 cm²の細胞培養フラスコに30%胎児牛血清含有Grace昆虫培地を8 mL入れてSf9細胞の単層培養を準備します。凍結保存されたSf9細胞のチューブを、37 °Cの恒温水槽の中でチューブを1〜2分間前後に動かし、急速に融解させます。次に、Sf9細胞を細胞培養フラスコに移し、フラスコを手で静かに揺らして細胞を均一に分散させます。細胞が付着するまで、27 °Cで1〜2時間インキュベートします。次に、フラスコから古い培地を除去し、30% FBSを含む新鮮なGrace昆虫培地 10 millilitersに交換します。細胞がコンフルエントになるまで 27 degrees Celsiusでインキュベートします。単層培養を維持するには、コンフルエントになったSf9細胞のフラスコから古い培地を除去し、10% FBSを含むGrace昆虫培地 5 millilitersを加えます。フラスコの側面を数回軽く叩いてSf9細胞を剥離させます。その後、10 milliliter ピペットを使用して、培地をゆっくりとピペッティングします。ピペッティングしながらフラスコ壁面に細胞を分散させた後、細胞を滅菌済みの15 milliliterポリスチレンチューブに移します。新しい75 centimeter squared細胞培養フラスコに、10% FBS添加Grace昆虫培地8 milliliterを加え、そこにSF nine細胞懸濁液2 milliliterを1:5の希釈比で加えます。対数増殖期を維持するため、フラスコを手で静かに揺らしてください。次に、細胞がコンフルエントになるまで、再び27 °Cでインキュベートします。インキュベーション後、SF nine細胞は、蛍光タグ付きpkcsの発現に関する記述手順に従い、蛍光タグ付きpkcsの発現に使用できる状態になります。Plegia神経細胞培養は、既報の通り、matechガラスボトム培養皿で調製します。感覚ニューロンの単離から2日後、シリンジと孔径0.2 µmの20 mmシリンジフィルターを用いて、あらかじめ調製したfast green溶液をろ過します。0.5% fast greenを含む蒸留水を用い、濃度が0.4 µg/µL以下となるように、E-G-F-P-P KC API twoをコードするプラスミドDNA溶液を調製します。1 mLシリンジと孔径0.2 µmの4 mmシリンジフィルターを用いて、プラスミドDNA fast green溶液をろ過します。その後、マイクロ遠心機を用いて、プラスミドDNA fast green溶液を16,110 ×gで15分間遠心分離します。次に、マイクロエレクトロードプラーを用いて、ニューロンへのマイクロインジェクション用の鋭い電極を作製します。フィラメントが入った薄壁ガラスキャピラリーを使用して、ガラスマイクロ電極を引きます。各電極に、2 µLのプラスミドDNA fast green溶液を満たします。マイクロロードピペットチップを用いて、マイクロインジェクションステーションでマイクロインジェクションを行います。マイクロインジェクションステーションは、除振台の上に培養皿を保持するための自作の大型ガラスステージ、外部ハロゲン照明付きの実体顕微鏡、マイクロマニピュレーター、および空気圧ポンプに接続されたマイクロ電極ホルダーで構成されています。ニューマチックポンプの圧力入力端を圧縮窒素タンクに接続します。plegiaニューロン培養細胞を含むmatechガラスボトム培養皿をマイクロインジェクションステーションに移し、マイクロ電極をマイクロ電極ホルダーに挿入します。実体顕微鏡でニューロンを観察し、マイクロピペットの先端を細胞核に挿入します。核が均一に緑色になるまで、持続時間10〜100ミリ秒、圧力20 pounds per square inchの短い窒素圧力パルスを与えます。細胞を室温で4時間インキュベートし、使用時まで4 °Cで保存します。SF9細胞およびpledgia感覚ニューロンのイメージングには、axia avert 200を備えたZeiss LSM 510倒立共焦点顕微鏡を使用します。このビデオでは、肢端感覚ニューロンのイメージングについて実演します。SF nine細胞のイメージングに関する詳細は、書面によるプロトコルをご参照ください。EGFPタンパク質でタグ付けされたPKCをイメージングするには、30 milliwattsのアルゴンレーザーを50%のレーザー出力で使用してください。次に、Argonneレーザーラインを透過率4%まで減衰させます。続いて、ピンホールを1に調整し、培養皿をイメージングステージ上に固定して、移動や振動がないようにします。10 mLピペットを用いて、培養皿から1 mLの培地を静かに除去し、全量を1 mLにします。ディッシュ内で、核が確認できる細胞の中央部分を特定します。30秒の間隔で、10〜20枚の共焦点画像をタイムシリーズで設定します。動画を開始し、2枚目の写真を撮影した後、2倍濃度の薬剤 1 mL を緩やかに添加して転位を誘導します。薬剤を細胞の上に、約30秒間かけて一滴ずつ連続的に滴下してください。ここでは、薬剤処理直後に確認できる迅速な転位を誘導するために、セロトニンを使用しています。一部の薬剤は緩やかな転位を誘導し、処理後5〜10分で最適になります。10 mLピペットを2本使い、一方のピペットでディッシュの片側に洗浄バッファーを穏やかに滴下し、もう一方のピペットで反対側から培地を吸引することで薬剤を洗浄します。洗浄が適切に行われ、薬剤の効果が可逆的である場合、PKCは30〜60秒以内に細胞質へと戻ります。動画を、図に示すようにLSMファイルとして保存します。以下は、麻痺した感覚ニューロンにおけるPKC転位のライブイメージングの代表的な結果です。E-G-F-P-P KC APL twoを感覚ニューロンに発現させ、30秒間隔で10枚の共焦点画像を連続して記録しました。この例では、記録開始から30秒後にディッシュにセロトニンを添加しました。この例では、Sf9細胞におけるPKC転位のライブイメージングを示します。EGFP-PKCαとmRFP-PKCβをSf9細胞に共発現させ、30秒の間隔で10枚の一連の共焦点画像を記録しました。1,2-dioctyl-sn-glycerolを添加しました。記録開始から30秒後に、細胞透過性のDYLグリセロールアナログをディッシュに添加しました。このビデオを視聴することで、aplasia感覚ニューロンにおける蛍光タグ付きpkcsの発現方法、および生細胞内でのPKC転位のイメージング手法について深く理解できるはずです。

live-imaging-pkc-translocation-sf9-cells-aplysia-sensory

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JoVE Journal

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このプロトコルは、吸光度の電圧依存性色素とフォトダイオードアレイを用いた非トランスジェニック無脊椎動物種における単細胞分解能を用いたニューロン集団活性をイメージングする方法を提示する。このアプローチにより、迅速なワークフローが可能になり、イメージングと解析を1日にわたって追求できます。...

非トランスジェニック無脊椎動物における単一ニューロン分解能を用いたネットワークダイナミクスを記録するためのフォトダイオードベースの光学イメージング

このプロトコルは、Fibrin血栓を使用したサンプル固定化のアプリケーション、ドリフトの制限、およびライブイメージング中の試薬の追加と洗い流しを可能にするアプリケーションを記述します。試料は、カバースリップの表面に培養培地を含むフィブリノーゲンの滴に移され、その後、トロンビンを加えることによって重合が誘導される。...

ライブイメージングのためのフィブリン・クロッツによる ショウジョウバエ 組織固定化の応用

シナプス伝達に必要な細胞内事象を視覚化するために、2つの関連する方法が記載されている。これらのプロトコルは、 in vitro...

筋萎縮性側索硬化症のモデルにおけるシナプス機能のリアルタイム蛍光測定

本稿では、自動マルチチャンネルイメージングとメカノバイオロジカル解析を可能にし、Yes関連タンパク質(YAP)のメカノ感度を解明する統合多機能・ユーザープログラマブルシステムの活用方法に関する詳細な段階的プロトコルを提示する。...

多機能システムを用いたヒトがんおよび正常細胞における有形関連タンパク質の全光学機構調査

ここでは、初代海馬げっ歯類ニューロンのトランスフェクションと生細胞共焦点イメージングを組み合わせて、軸索輸送に対する病理学的タンパク質誘発性の影響を解析し、これらの影響を媒介する機構経路を特定する方法を示します。...

生細胞イメージングを使用して、初代海馬ニューロンの軸索輸送に対する病理学的タンパク質の影響を測定する

学ぶSf9細胞とアメフラシ感覚ニューロンにおけるPKC転座のライブイメージング法。蛍光標識したPKCを用いてレーザー走査型顕微鏡でリアルタイムに可視化し、細胞内シグナル伝達の動態を解析する。

Sf9細胞でとアメフラシ感覚ニューロンにおけるPKC転座のライブイメージング

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