2012年7月30日
ゼブラフィッシュの急速な発展、小型サイズと透明性感染症の自然免疫制御の研究のための途方もない利点があります 1月4日。ここでは、真菌性病原体を用いたゼブラフィッシュの幼虫を感染させるためのテクニックを実証するカンジダ·アルビカンスマイクロインジェクションすることによって、方法論は、最近、真菌の二形の制御に食細胞NADPHオキシダーゼ活性を巻き込むために使用さ 5。
この手順の全体的な目標は、真菌病原体カンジダ・アルビカンスを使用してゼブラフィッシュの幼生に感染する技術を実証することです。まず、蛍光菌培養物を調製し、魚の胚をコーティングします。次に、アロス注射皿に魚を並べます。
カンジダ・アルビカンスは、各魚の耳から後脳室フィッシャーにマイクロインジェクションされ、その後、低融点エアロスに埋め込まれ、エピ蛍光顕微鏡で可視化されます。最終的に、この方法は、ペトリ皿の単純化されたシステムではなく、宿主の複雑な環境における宿主病原体の相互作用を非侵襲的に画像化するために使用できます。この手法が甘え静脈注射のような既存の方法よりも優れている点は、致死的な播種性疾患を引き起こす局所的な感染症を引き起こすことです。
さらに、この技術により、本質的に大きなCブカン細胞を小さなゼブラフィッシュの幼生に効率的に注入することができます。イーストポーンにカンジダアルビカンストックをストリーキングすることから始めます。デキストロース寒天プレートは、プレートを摂氏37度で一晩インキュベートし、コロニーが成長できるようにします。
コロニーが見えたら、滅菌済みの木製ダボを使用して分離されたコロニーを選び、酵母を16 x 150ミリメートルの培養チューブで5ミリリットルの新鮮な酵母抽出物ペプトデキストロースブロスに溶解します。培養物を、試験管ホイールとインキュベーターを備えた組織培養ローラードラムに載せ、摂氏37度で一晩置きます。翌日、1ミリリットルの培養物を1.5ミリリットルのエンドオフチューブに移し、14, 000回、Gで1分間遠心分離して細胞をペレット化し、その後、サピネートを廃棄し、ペレットを渦巻いて緩めます。
細胞を1ミリリットルのPBSボルテックスに再懸濁し、再度遠心分離します。次に、穿蔽物を捨てて、この洗浄を繰り返します。3回ステップして、残っている培地を取り除きます。
細胞を洗浄したら、ヘモサイトメーターでPBSで1〜100希釈で細胞をカウントします。12時間の培養では、1ミリリットルあたり8個の細胞に10の3〜4倍を期待する必要があります。リースは、酵母を最終濃度10〜7細胞/ミリリットルに曲げます。
注射の前日にふるいを使用して産卵水槽からゼブラフィッシュの胚を採取し、滅菌脱イオン水に1ミリグラムあたり60ミリグラムのインスタントオーシャンソルトを含む卵水溶液に保存します。次に、胚を33度のSIUに24時間置き、12時間の明暗サイクルで置きます。これにより、胚はプリム25幼虫期、感染の日に最適な段階に発達することができます。
60ミリリットルの卵水に入ったトランスファーピペットで胚を非常に深いシャーレに移します。次に、顕微鏡とデュモンピンセットを解剖して、胚をデコレーションします。これは、魚が飛び出すまで、ポテトチップスの袋のようにコーリアンをそっと引き離すことで達成できます。
すべての胚がコーティング解除されたら。そこで、シャーレをシャーレで中央に向けて動かしながら、魚をシャーレの蓋に移し、培地を取り出して新鮮な卵の水と交換します。新鮮な卵の水に魚を加えます。
トランスファーピペットを使用して魚を麻酔するために、トリカメタンスルホン酸のミリリットルあたり200マイクログラムの溶液を準備します。20〜50個の胚を採取し、麻酔液に1〜2分間、または動きが止まるまで交換します。その間、インジェクションユニットの電源を入れ、圧力がパルスをオンにし、パルス持続時間が9に設定され、背圧ユニットのPSIが3に設定されていることを確認します。
注入圧力が30PSIに達するまで、窒素タンクのバルブを徐々に開きます。次に、5マイクロリットルのボルテックスカンジダアルビカン溶液をプールしたマイクロピペットをロードプールし、マイクロピペットホルダーに入れます。水が入った非常に深いシャーレを解剖顕微鏡ステージに置き、マイクロピペットの位置を調整して、視野に入り、先端が部分的に水に沈むようにします。
次に、ピンセットを使用して、プールされたピペットの針を先端から約3ミリメートルのところにクリップします。針が正常にクリップされた場合は、インジェクションユニットのフットスイッチを押すと、液体が分注できるようになります。目盛り付きスライドを使用して、分注量を測定し、分注する液体の量が直径0.21ミリメートルまたはゼブラフィッシュの胚の瞳孔のサイズをわずかに下回るように圧力を調整します。
顕微鏡を設置し、魚に麻酔をかけたら、皿を膨らませて魚を中央に引き寄せ、トランスファーピペットに取ります。魚が先端に落ち着くように、ピペットの側面を慎重に軽くたたきます。次に、できるだけ少量で、摂氏28度に予温した幼生のアオース注射皿に魚をそっと置きます。
なめらかなガラスの棒を使って、丁寧に魚を並べます。次に、ペーパータオルで皿からできるだけ多くの液体を取り除きます。針と最初の魚の両方がはっきりと見えるようになるまで、魚の入ったアロス皿を顕微鏡下に置きます。
目に見える心拍の存在を観察することにより、各魚がまだ生きていることを確認します。死んでいる場合は、捨てて次のものに移ります。ガラスの針をズームインしている魚に向かって動かします。
その際、目のすぐ後ろに2つの耳石がある魚の耳の円形構造に針を慎重に挿入します。針が所定の位置にあるら、フットスイッチを使用して酵母を注入します。.針が正しく挿入されている場合、魚は後脳脳内心室が注射後にわずかにswになり、針を引っ込めて次の魚で手順を繰り返します。
全体のプロセスは15分または20分以内に完了し、さもなければ魚はこの時間後に乾燥して死んでしまいます。酵母はまた、マイクロピペットの底に沈殿し、不均一な感染、投与量、および/またはプールされたマイクロピペットの目詰まりにつながります。すべての魚が注入されたら、卵水を使用してアロスから洗い流し、60ミリリットルの卵水を含む新鮮なペトリ皿に入れます。
次に、皿を摂氏28度に置きます。窒素バルブを閉じ、注入スイッチを連続に設定して、タンクラインの圧力を解放します。次に、圧力がゼロに下がったら、スイッチをパルスに戻し、インジェクションユニットの電源を切ります。
前に説明したように、感染した魚をトリカメタン硫酸塩で麻酔することから始めます。魚に麻酔をかけたら、ピペットを使用して一度に1匹の魚を0.4%の低溶融寒天を含むシャーレに移します。次に、トランスファーピペットを使用し、アグロをできるだけ持ち越さないようにします。
ペトリ皿から各魚をガラス底イメージング皿の1つのウェルに移し、約0.2ミリリットルおよび0.4%で、魚の上部に200マイクログラム/ミリリットルの麻酔薬を補充した低融解物が生じ、内側の円が満たされ、アロスの薄い層がウェルの底に広がるようにした。魚は、レーザー走査型共焦点システムを備えた倒立顕微鏡を使用して、最大24時間画像化できるようになりました。ゼブラフィッシュに赤い蛍光カンジダ・アルビカンスを感染させてから5時間後。
酵母は、FL I 1 EGFP魚の魚の後脳で見ることができますが、これらのような、血管内皮とマクロファージのような細胞は魚の体全体に蛍光を発しています。ここでは、感染から5時間後に緑色で示されています。酵母は、24時間でマクロファージ様細胞内で見ることができます。
感染は背側尾組織に沿って広がり、酵母はFTIC細胞内で再び検出できます。このビデオを見た後、Prim 25ステージのゼブラフィッシュの後脳室にカンジダ・アルビカンスをマイクロインジェクションする方法(1つは真菌培養の準備、2匹は麻酔ゼブラフィッシュの幼生を含む)についてよく理解できるはずです。後脳室に3つのマイクロ注射。
そして4つ目は、感染した幼虫を共焦点イメージング用に準備することです。
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この記事では、カエデノコギリギンガメノウの幼生に真菌病原体であるカンドイダ・アルビカンスで感染させる技術を示しています。この方法により、複雑な環境における宿主-病原体相互作用の非侵襲的イメージングが可能になります。
This method enables non-invasive imaging of host-pathogen interactions in a living vertebrate model, providing mechanistic insights into innate immune responses to fungal pathogens. By visualizing disseminated candidiasis in zebrafish larvae, researchers can de-risk target validation and assess therapeutic candidates in a disease-relevant system that bridges in vitro simplicity and mammalian complexity. The approach supports predictive confidence in early discovery by revealing dynamic pathogen behavior within immune cells and tissues.
The method fits within the discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical evaluation, offering a reusable platform for antifungal mechanism of action studies.