May 30th, 2013
CD4+制御性T細胞は強力な免疫調節因子であり、免疫恒常性において重要な機能を果たします。末梢血中のこれらの細胞が不足しているため、特にHIV-1感染の状況では、機能研究が困難になっています。ここでは、HIV-1感染者の末梢血から機能的なCD4+ Tregを単離し、増殖させる方法について述べる。
この手順の全体的な目標は、H HIV V 1 陽性の末梢血から拡大した天然 CD 4 陽性の制御性 T 細胞の表現型と抑制機能を評価することです。これは、まず、密度、勾配、およびフローベースの細胞選別により制御性T細胞を単離することによって達成されます。第2ステップでは、制御性T細胞を培養中で増殖させます。
次に、増殖した細胞の表現型は、最終ステップでフローサイトメトリーによって特徴付けられ、拡大したTRE集団の機能がT細胞抑制アッセイによって評価されます。HIV感染者における天然のCD4陽性TREの調査は、伝統的に困難であり、主に人口の不足によるものです。私たちの技術の利点は、これらの非常に希少な細胞を大量にexvivoで生成できることです。
ここで示した方法は、HIV疾患の進行における制御性T細胞の機能と特異性の特性評価を容易にすることにより、HIV免疫病因分野における重要な質問に答えるのに役立つ可能性があります。この方法は、末梢血制御性T細胞に関する洞察を得ることができますが、腸関連リンパ組織からの制御性T細胞の増殖など、他の体区画にも適用できます。HIV複製の主要な部位 まず、A CD収集チューブからの血液を50ミリリットルの円錐管に慎重に移すことから始め、チューブあたり15ミリリットルの血液の最終量が得られます。
次に、25マイクロリットルのロゼットep、ヒトCDの4つの陽性T細胞濃縮カクテルを血液1ミリリットルあたり追加します。慎重に混合し、細胞懸濁液を室温で20分間インキュベートします。インキュベーション後、2%FBSを添加した15ミリリットルのPBSを血液と慎重に混合します。
次に、希釈した血液サンプルを15ミリリットルのヒストパックの上に15ミリリットルのコニカルチューブに重ねます。血液を1200G、室温で20分間ゆっくりと開始し、休憩なしで回転させた後、CD 4陽性T細胞が豊富なPBMC層を新しい50ミリリットルの円錐管に移します。FBSを添加したPBSで細胞を洗浄します。
細胞を数え、次に別の洗浄後、ペレットを200マイクロリットルあたり6個の細胞に約20×10で再懸濁します。以下の抗体を指示された濃度で添加し、暗所4°Cで30分間細胞をインキュベートします。未結合の抗体を洗い流した後、PBSとFBSを加えて1ミリリットルあたり6細胞の20倍で細胞を懸濁し、35μmのナイロンメッシュで細胞懸濁液を濾過します。
現在、バイオハザード物質の取り扱いに装備されたセルソーターを使用して、CD 3、ポジティブCD、4、ポジティブCD、25、ポジティブCD1、27、ex vivo 15培地でソートします。このゲーティング戦略を用いて、従来のCD 3陽性CD4陽性CD4陽性CD25陰性CD1 27陽性T細胞を次いで、ネガティブコントロールとして単離および増殖することができる。選別後、T-Rex細胞をex vivo 15培地で洗浄し、ペレットを10の250倍で10倍にして1mlあたり3細胞に再懸濁します。
ヒト血清ペニシリンおよびストレプトマイシンを添加したex vivo 15培地。次いで、ヒトT活性化剤CD 3、CD 28ビーズを洗浄した後、製造元の指示に従って、単離されたT-Rex細胞にビーズを1細胞あたり1対1のビーズの割合で添加する。次に、2日間の培養後、培地の量を2倍にし、IL2を細胞に加えます。
次に、T-Rex細胞を2週間培養し、5日目、7日目、9日目、および12日目に培地を交換します。9日目に、培養拡大の最後に1対1の比率でビーズを培養物に加えます。回収した従来型T細胞および制御性T細胞をPBSで洗浄します。
次に、ライブデッド固定可能なバイオレットデッドセルステインキットを使用します。死細胞を染色するための製造元のプロトコルに従って、PBSおよびFBSの余分な汚れを洗い流します。次に、以下の抗体を指示された濃度で添加し、4°Cの暗所で30分間細胞をインキュベートします。
再度洗浄した後、製造元の指示に従って、Fox P 3転写因子染色バッファーセットで細胞を染色します。次に、以下の抗体を指示された濃度で添加し、フローサイトメーターでデータを取得します。また、拡大培養の最後には、自家凍結保存された、ex vivo pbmcを解凍します。
細胞を37°Cのインキュベーターで約3時間休ませます。今示したように死んだ細胞を染色した後、PBSで細胞をFBSで洗浄し、抗CD 3、PEサイズ7で細胞を4°Cの暗闇で30分間インキュベートします。細胞を洗浄した後。
再度、PBSおよびFBSのペレットを再懸濁し、35マイクロメートルのナイロン網を通して細胞懸濁液をろ過し、次にバイオハザード物質を扱うために装備された細胞選別機を使用して、生存可能なCD 3つの陽性T細胞をR 10培地に選別します。CFSEで細胞を標識した後、製造元の指示に従って、細胞をrプラス培地に1ミリリットルあたり6個の細胞のうち10個ずつ補充して再懸濁します。次に、増殖したT-Rex細胞とResusを回収し、ヒトR 10培地で10ミリリットルあたり6細胞の0.5倍で懸濁します。
次いで、細胞培養物をさらに0.2に分割し、10倍を1ミリリットルあたり6細胞に5倍、10倍10を1ミリリットルあたり6細胞に0.125倍希釈する。次に、Resusは、ヒトR 10培地中の1ミリリットルあたり6ビーズの0.75倍で、製造元の指示に従って調製された抗CD2、抗CD3、抗CD28マイクロビーズを懸濁します。次に、ビーズをさらにR 10培地で希釈して、6ミリリットルあたり6個のビーズのうち0.6、2、5、0、0.562、および0.5×10の3つの異なる最終濃度にそれぞれ
希釈します。培養、希釈した細胞およびビーズ懸濁液を、このプロトコルに従って96ウェル丸底プレートに入れる。4日間の培養後、細胞を洗浄し、これらの抗体と摂氏4度で30分間インキュベートします。最後に、フローサイトメーターでデータを取得します。
この最初の図は、単一のCD 3陽性、CD 4陽性、CD 25陽性、CD 1 27、PBMCからの低TREGS、HIV Vから分離された1陽性の個体、抗CD 25および抗CD 1 27抗体クローンおよびそれらのコンジュゲートをフローソートするために使用されるゲーティング戦略を表しており、トレグ集団の良好な分離に不可欠です。この代表的な例では、トレグの拡大は14日間の培養後に765倍の変化に達しました。拡大褶曲の変化は、個体ごとに異なり、開始母集団の100倍から2,500倍の範囲です。
この図では、グレーのヒストグラムは、選択した treg マーカーの染色を表しています。たとえば、CTLA 4、Fox、P three、Helios などです。制御性T細胞の基本的な特性は、標準化されたフローベースのT細胞増殖アッセイを用いてT細胞エフェクター機能を抑制する能力です。
この図は、制御性TT細胞が、異なるT細胞対トレグ比で活性化T細胞の増殖を抑制する方法を示しています。このビデオを見れば、HIV陽性者から機能的制御性Tregを分離し、拡大する方法を十分に理解できるはずです。この手順を試みる際には、従来のT細胞も増殖し、この手順に従って細胞培養を汚染して過剰増殖する可能性があるため、T-Rexの選別に厳格なゲーティング基準を適用することを覚えておくことが重要です。
また、in vitroで感染した蛍光HIVと非感染の制御性Tregの機能や遺伝子発現を比較するなどの研究も実施できます。HIV陽性の検体を扱うことは、厳格な血液媒介病原体の標準的な操作手順に従うことや、バイオハザード物質を処理するための装備を備えた販売注文書での作業などの予防措置を常に講じる必要があるという点で危険であることを忘れないでください。
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この記事では、HIV-1感染者の末梢血からCD4+制御性T細胞(Tregs)を分離・増殖させる方法を提示します。この技術は、これらの細胞の希少性による課題に対処し、HIV-1感染の文脈で機能解析を可能にします。
Expanding regulatory T cells from HIV-1-infected individuals addresses a critical bottleneck in immunology research, enabling functional studies of a rare but therapeutically relevant cell population. This capability supports target validation and mechanistic de-risking in HIV vaccine and immunotherapy development by providing sufficient material for phenotypic and functional characterization. Overcoming cell scarcity improves predictive confidence in preclinical models and informs go/no-go decisions in early discovery pipelines.
The method integrates into the discovery workflow by enabling isolation and expansion of Tregs for downstream phenotypic screening and functional validation, supporting lead identification through mechanistic de-risking of immunomodulatory targets.