Name: 腸神経系のその場のCa 2+イメージングに (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-29T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 26 s
Description: 学ぶ腸神経系のCa²⁺イメージング法。蛍光カルシウム指示薬を用いて、生きた腸標本の腸神経細胞とグリア細胞の活動を可視化します。この手法は、神経科学と消化器病学の研究において、腸の生理機能と病態生理を理解する上で重要です。

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この作業は、米国研究製薬工業協会（PhRMA）財団（B. Gulbransenへ）、国立衛生研究所（女性の健康における学際的研究キャリアの構築）、K12 HD065879）、およびミシガン州立大学（B）Gulbransen）からのスタートアップ資金によって支援されました。

注：実験動物からの組織が関与する次の手順では、動物の2013年の安楽死のためにAVMAガイドラインと一致しているとミシガン州立大学IACUCによって事前に承認された。 1.組織調製<ol><li>酸素または物理的障壁をイソフルランとの直接接触から動物を防ぐことを確実にする、室の床に吸収材料上に液体イソフルラン3~5 mlで配置することにより、2.5％のイソフルランを含むチャンバの研究動物を麻酔。フットパッドをつまんで麻酔深度のためのテスト。 NOTE：後肢の引っ込め反射が存在しない場合、麻酔の深さが適切であると考えている。適切に麻酔をかけた後、頚椎脱臼によりマウスを安楽死させる</li><li>仰臥位で動物を置き、70％エタノールで腹部の皮膚をきれいに。正中線で腹部の皮膚を挟ま6センチのメディアを作るために外科用ハサミを使用するように鉗子を使用して、内部消化器官を露出する白線に沿ってL切開。 </li><li>腹膜内部の回腸を見つけて、公開する鈍鉗子を使用してください。ハサミで回腸/結腸腸間膜をカットし、腸の解明始める。 </li><li>腸の長さが十分に解明された後、回腸の準備のために盲腸に胃と近位に腸遠位をカット。大腸の準備のために、直腸に盲腸と近位結腸遠位をカット。 </li><li>すぐに腸のセグメントを削除し、氷上で3μMニカルジピン塩酸塩及び1μMスコポラミン、塩酸を添加したDMEM / F12培地（以下、「メディア」という。）とのビーカーに入れてください。これらの阻害剤の添加は、消化管平滑筋を麻痺させることにより、顕微解剖とその後のイメージングを容易にします。 </li><li>確立された解剖学的マーカーに基づいて関心の切断セグメント（ 例えば 、空腸、回腸、遠位または近位結腸）。通常utiliz回腸遠位部または遠位結腸からの電子組織。しかし、すべての腸の地域で、負荷や画像筋層間神経細胞とグリアを分離するために同じ基本的な手順を使用します。 </li><li>チルド媒体で充填シルガードコーティングしたペトリ皿に希望腸セグメントと場所の小さなセグメント（4-6 cm）を取り外します。 </li><li>近位および昆虫ピンと腸のセグメントの遠位端部を固定し、縦に腸間膜の国境に沿って切断し、まっすぐにすることによって、腸の管を開きます。 </li><li>細かい鉗子（＃5、＃最高の45分の5作品）と、非常に微細な春のはさみを使用して粘膜層を離れて解剖まで、慎重に粘膜側と光張力下でフラットピン組織。 注：適切に行われていない場合は、粘膜の除去は、ENSのための非常に外傷性であることができます。品質の準備のために、剥離やこすることによって粘膜の突然の除去を制限するように注意してください。ベストプラクティスは、粘膜を持ち上げ、細かいハサミで下にカットすることです。 </li><li>小さい準備に組織を切断Sイメージング皿に（約0.5cm 2）とピン新鮮なメディアとの氷上に置かれ（円形筋層が上を向くようにして4隅）。 </li><li>慎重に筋層間神経叢を露出するように細かいピンセットで離れてからかうことで円形の筋肉を離れて解剖。過度のストレッチは避けてください。 </li><li>新鮮な培地と氷と変更ソリューションに戻ってイメージングディッシュを置きます。 </li><li> [メディアにディスパーゼ1 U / mlの（4.48ミリグラム/ 8ミリリットル）、コラゲナーゼタイプII 150 U / mlの（5.45ミリグラム/ 8ミリリットル）]皿当たり酵素ミックスの2ミリリットルを準備します。 </li><li>氷から皿を取り出し、ステップ1.13から酵素ミックスを追加します。 </li><li> 5％CO 2/95％空気で15分間、室温で皿をインキュベートする。 </li><li>メディア3回と再ピンの角を持つウォッシュ組織標本。 </li></ol> 2.のロードのFluo-4色素注：指示色素を搭載した蛍光色素および組織の処理中に制限された光と協力して光退色を避ける。 <ol><li> 4μMのFluo-4ローディング溶液を準備します。 <ol><li> 4 mMのフルオ-4株式の1.5μlのアリコートに1.5ミリリットルのメディアとの250mMプロベネシド株式の1.2を添加する。のFluo-4を50μg、AMに、4mMのフルオ-4ストックはプルロニックF-127の11.4液（0.25％クレマホール-ELを補充したDMSO中20％）を添加することにより調製される。 </li></ol></li><li> 37℃の暗黒インキュベーター内で45分間のFluo-4ローディング溶液中でプレップをインキュベートする。 </li><li>インキュベーターから取り出し、メディアで3回準備を洗う。 </li><li>メディアは200μMのプロベネシドを含む、イメージングの前に37℃で15分間インキュベートするための交換媒体。 注：プロベネシドが神経細胞に多剤耐性トランスポーターを阻害する薬剤である。この薬の添加は、染料を押し出すための神経細胞の能力を阻害し、神経ラベリングを強化します。プロベネシドの不在中のCa 2+指示色素のバルクロードは、主にグリア細胞の負荷を生成します。プロベネシドの添加は、ニューロンおよびグリアの応答の可視化を可能にする。 </li><li>準備クレアル修正BSバッファ。 <ol><li>続いてコンポーネントの（mm）を最終濃度があるように修正されたクレブス緩衝液を作る：121のNaCl、5.9のKCl、2.5のCaCl 2、1.2のMgCl 2、1.2のNaH 2 PO 4、10 HEPES、21.2のNaHCO 3、1ピルビン酸及び8個のグルコース（NaOHでpH7.4に調整されたpH）。のCa 2+イメージングおよびホールマウント解剖時の筋肉の収縮を抑制するために3μMニカルジピンおよび1μMスコポラミンを追加します。 </li></ol></li></ol> 3.イメージングと分析注：蛍光光源、顕微鏡、高品質のCCDカメラと適切な取得ソフトウェアで、少なくとも基本的なイメージング·リグを使用してください。光源と特定の用途に応じて他の成分の添加を変える。フィルターホイールおよびシャッターは、従来のキセノンアーク光源を使用しなければならない。しかし、光源及び照明システムは、これらのコンポーネントを必要としないLED。 <ol><li> RECを置き顕微鏡下でチャンバーディング及び多重加熱シリンジリザーバに重力流灌流システムを用いて、37℃でクレブス緩衝液2-3 ml /分の連続的な灌流速度を確立する。真空トラップに接続された入力と吸引ラインの両方に気泡の発生を防止することを確認してください。 </li><li>明視野照明下での焦点に希望叢を持参してください。フォトブリーチングにつながる可能性があり、組織を、overexposingは避けてください。 </li><li>神経節内のFluo-4の負荷を調べ、イメージングのための健全な神経節を選択します。不健康/損傷した神経節は、自己蛍光または点状の形態を示すであろうし、画像化のために使用すべきではありません。 </li><li>神経節を選択すると、カメラへの光路を迂回し、画像取得ソフトウェアを使用してライブ画像を取得する。神経節に焦点が合うと、画像取得速度と露光時間を設定していることを確認してください。 注：画像取得率と時間は研究者が記録したいイベントによって異なります。ほとんどの実験、イメージの場合グリアのCa 2+応答は、神経細胞におけるCa 2+トランジェントとして急速なようではないので、伝統的にグリア細胞のために、0.5〜1 Hzで取得し、神経細胞のために、最大2-10 Hzのしている。 </li><li>実験を開始し、30秒間のベースラインの活動を確立します。 </li><li>このような2〜3ミリリットル/分の速度で重力流灌流システムを使用して受容体アゴニストおよびアンタゴニストのような関心のある予め温め薬を適用する。通常のバッファーの灌流に戻っアゴニスト/アンタゴニストの適用に従って、少なくとも10分の洗浄/回復期間を可能にする。 NOTE：薬物適用時間は、個々の化合物および実験デザインに依存して変化する。一般に、アゴニストの20~30秒のアプリケーションは、ニューロンおよびグリア細胞におけるGタンパク質共役受容体を活性化するのに十分である。しかしながら、（例えば、ニコチン性アセチルコリン受容体のような）リガンド依存性イオンチャネルはせいぜい5〜10秒の適用時間を必要とする。さらに持続エクスポージャーは、リガンド依存性イオンチャネルが急速にDESEになりますnsitize。アンタゴニストは、受容体経路の完全な遮断を確保するために約3~15分間適用されるべきである。しかし、これはグロス一般化され、研究者は常に彼らの特定のパラダイム内の任意の試験薬を最適化する必要があります。 </li><li>実験の記録とビュータイムラプスムービーを停止します。適当な画像解析ソフトウェアを用いて関心注意深く選択領域（ROIの）。 </li><li>正規化し、その初期ベースライン蛍光値に対してROI蛍光強度を比較するためにソフトウェアを使用してください。正規化された蛍光の変化は、の[Ca 2+] iの変化に正比例する。 <ol><li> ROI - （（F 1 - F 0）/ F 0）F1は、任意の所与の蛍光バックグラウンド、 - ΔF/ F =（F 0）/ F 0（F 1）を使用して、以前に26の記載された方法の変法を使用し点F0、評価精度を向上させるために、ベースラインの蛍光である。この変更を補助筋層間神経叢の根底にある筋層の動きを示す組織調製物における蛍光の変化からノイズを低減する。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

この原稿で説明されている方法論は、ENSのニューロンと腸グリアを効果的に研究するための一貫したアプローチを提供します。培養中のニューロンと腸グリアのイメージングは、個々の細胞の機能についての豊富な洞察をもたらしましたが、これらの細胞をネイティブの多細胞環境で研究することは、それらの生理学と病態生理学を理解するために重要です。蛍光顕微鏡は、ENS 内の細胞の多方向相互作用を評価するための重要な技術です。ENSに選択的蛍光マーカーをロードし、高解像度顕微鏡で画像を取得することで、ENSの細胞活性を定量的に観察できます。ENSの生組織サンプルのイメージングは比較的迅速に実行され、大量の詳細な機能的および空間的データを生成します。これらの実験で使用されるマウス筋膜および粘膜下神経叢の製剤は、分子および遺伝子操作アプローチを可能にします。ホールマウント製剤におけるCa2+ イメージングは、ニューロンとグリアの相互作用を評価するための有用なツールを提供します。
高度な実験パラダイムでは、複数のプローブを組み合わせて、細胞内のさまざまなイベントに関する情報を得ることができます。蛍光顕微鏡は、適切な蛍光標識が使用されている場合、特定の分子のコントラストを高めて画像を記録できます。Fluo-4 が選ばれたのは、ダイナミック レンジが広いためです。ENSでAM色素を使用する場合、十分なインキュベーション時間が不可欠です。最良の結果を得るには、染料の濃度とローディング方法を調整する必要がある場合があります。理想的な調製物には、蛍光の変化を視覚化するのに十分な色素をロードする必要がありますが、色素が標的イオンをキレート化し、細胞内シグナル伝達を妨害するほどではありません。細胞内の光毒性や色素の光退色を防ぐために、蛍光への曝露を制限する必要があります。 
研究者は、この実験のいくつかのステップ、特に溶液と組織の準備に注意する必要があります。細胞機能を維持するために、ENS組織の処理および解剖中は特に注意する必要があります。消化管にはいくつかの層と組織の種類が含まれており、これらのホールマウント準備における解剖と画像の品質に課題をもたらします 27。さらに、MPの相互接続線維路はSMP 2よりも広く、神経節は大きいです。筋神経叢のニューロン密度は、粘膜下神経叢のニューロン密度と比較して高くなります 28。ゆっくりとした不正確な解剖は、神経叢の準備の品質、ひいては実験の全体的な成功に悪影響を及ぼします。したがって、この手順には、清潔で損傷のないツール、練習、手先の器用さが重要です。 
ホールマウント組織調製では、目的の細胞型の蛍光強度の動態と観察された変化の程度を正しく評価するために、関心領域(ROI)を描画する際に慎重に検討する必要があります。神経節は収縮筋層上にあるため、腸の運動性によって引き起こされるモーションアーティファクトは、 その場イメージ ング中の主な懸念事項です。したがって、酵素とのインキュベーション後に組織製剤を再ピン留めし、バッファーに薬理学的阻害剤(ニカルジピン/スコポラミン)を添加することで、これらの運動障害を抑制することで、鮮明で信頼性の高い画像取得が可能になります。組織の動きを防ぐための薬理学的および機械的アプローチとは別に、最近の研究では、記録内の残留組織の動きを補正し、分析の精度を向上させるための高度なソフトウェア方法論と細胞型応答特性の適用が示されています 29。これらの技術的なハードルを除いて、この方法は、ENS のニューロンと腸グリアの形態学的および定量的特徴を評価するための生理学的に関連する条件を提供します。

腸神経系（ENS）は、消化管1の壁内に埋め込 ​​まれた2神経節のある叢で構成されています。これらの筋肉内の神経回路は、筋層間神経叢（MP）と粘膜下神経叢（SMP）は、ニューロンと腸溶性グリア（ 図1）2で構成されている。 MPとSMPは、それぞれ、胃腸（GI）などの腸運動として機能し、上皮吸収および分泌、3を制御する。腸溶性グリアは神経節内のニューロンに近接して配置されているが、腸溶性グリアの集団はまた、繊維路と腸壁3,4の余分な神経節部分を相互接続内に存在する。腸グリアは、元々ニューロンにのみ栄養サポートを提供すると考えられていた。しかし、最近の研究では、強くENSは5,6機能するためのニューロングリア相互作用が必須であることを示唆している。例えば、データは、腸グリアは神経活動を7に「聴く」ことを示しているそして、神経回路6,8を変調する酸化ストレス9から腸ニューロンを保護し、損傷10,11に対応して新たな腸ニューロンを生成することができる。この技術審査で提示プロトコルは、その場の細胞内Ca 2+イメージングで使用してニューロンと腸溶性グリア間の複雑な相互作用を検討するためのシンプルかつ堅牢な方法を提供する。 Ca 2+が興奮性細胞に遍在シグナル伝達分子であり、神経系12におけるシナプスシグナル伝達事象において重要な役割を果たしている。ニューロンまたは腸溶性グリアの励起はどちら流入によってカルシウム2+透過チャネルまたはCaを通じて細胞内カルシウムストアから2+放出を細胞質Ca 2+濃度の上昇を誘発する。蛍光色素でニューロンおよびグリアにおけるイメージングのCa 2+トランジェントの機能的な組織とダイナミクスを研究するために設立され、広く使用される技術であるENS 13-17。のCa 2+イメージングは、ICCのペースメーカーネットワーク18および腸平滑筋19,20を通して興奮の広がりを解明するために、完全な消化管組織セグメントを研究する上で重要なツールであることが示されている。これは、生理的パラメータの広いスペクトルを調べるために、研究者を可能にし、それらの空間分布と時間的なダイナミクスの両方に関する情報を提供します。細胞は、効率的に膜透過性蛍光指示薬、最適化された染色プロトコル21を使用して、低侵襲性の方法で染色することができる。これは、生体内 23だけでなく、機能的に保存調剤14-16,22のニューロンの数が多く、腸溶性グリアを監視する機会を提供しています。組織標本をホールマウントバルクは、Ca 2+に結合した場合、その蛍光を増加するようのFluo-4などの高親和性のCa 2+指示薬色素がロードされている。蛍光の変化はCCDカメラおよびアナによって記録されるデジタルで6溶菌。 Ca 2+の出現は、ニューロンとグリア細胞の相互作用、様々な刺激に応答し、リアルタイムで消化プロセスにおけるこれらの細胞型の関与をモニターする機会を提供した。 その場でのCa 2+イメージングは、腸ニューロンとグリアのシグナル伝達機構に大きな洞察をもたらしたし、細胞培養モデル6,24に比べていくつかの明確な利点を有している。まず、 その場での製剤は、ニューロンとグリアのネイティブマトリックス環境を維持し、無傷組織を標的とするためにその接続の大部分を残す。第二に、遺伝学と培養された腸溶性グリアの形態は大きく、生体内 6,24と比較して変化している。第三に、多くのヘテロタイプの相互作用は、初代細胞培養中に失われ、この制限は、細胞 - 細胞相互作用を評価する。培養した細胞は、基本的な特性の調査、彼らのusefulneに適していますが、腸溶性グリアと神経細胞の間の複雑な相互作用を研究するためのssは限られている。シナプス経路は25そのまま残るように、その場でアプローチを使用して調査ニューロン-グリア相互作用は、より生理学的に関連ある。細胞培養のアプローチと比較すると、 その場でのアプローチで体系的にニューロンと腸溶性グリア間の複雑な相互作用を理解するための改善された条件を提供しています。さらに、全体のマウント製剤における神経節のある叢の平面組織は、細胞内Ca 2+トランジェントの蛍光イメージングのための理想的であり、この技術はENSのニューロン-グリア活性を評価するための直接的なアプローチを提供します。

<table><tbody><tr><td>バブルストップシリンジヒーター&nbsp;</td><td>AutoMate Scientific</td><td>10-4-35-G</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma</td><td>C3306</td><td></td></tr><tr><td>コラゲナーゼ、タイプ II、粉末</td><td>Gibco</td><td>17101-015</td><td></td></tr><tr><td>ディスパーゼ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>42613-33-2</td><td></td></tr><tr><td>解剖ツール</td><td>Roboz&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5879</td><td></td></tr><tr><td>固定ステージ顕微鏡</td><td>Olympus&nbsp;</td><td>BX51WI</td><td></td></tr><tr><td>Fluo-4 AM 色素</td><td>Invitrogen</td><td>F-14201</td><td></td></tr><tr><td>グルコース</td><td>シグマ</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>昆虫ピン</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>Minutien ピン</td><td></td></tr><tr><td>iQ ライブセルイメージングソフトウェア</td><td>Andor</td><td>Andor iQ3</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P3911</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma</td><td>M9272</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sigma</td><td>S8282</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma</td><td>S6014</td><td></td></tr><tr><td>Neo sCMOSカメラ</td><td>Andor</td><td>Neo 5.5 sCMOS</td><td></td></tr><tr><td>Nicardipine</td><td>Sigma</td><td>N7510</td><td></td></tr><tr><td>灌流チャンバー</td><td>カスタム</td><td></td><td></td></tr><tr><td>蠕動ポンプ</td><td>ハーバード装置</td><td>モデル720</td><td></td></tr><tr><td>プルロニックF-127&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>P3000MP</td><td></td></tr><tr><td>Probenecid</td><td>Molecular Probes</td><td>P36400</td><td></td></tr><tr><td>スコポラミン</td><td>Sigma</td><td>S1013&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>サッターラムダDG-4</td>サ<td>ッターDG-4</td><td></td><td></td></tr>シル<tr><td>ガード&nbsp;</td><td>ダウコーニング</td><td>184</td><td></td></tr><tr><td>温度コントローラー</td><td>ワーナーインスツルメンツ</td><td>TC-344C</td><td></td></tr></tbody></table>

腸神経系のその場のca 2+イメージングに

In Situ Ca2+ Imaging of the Enteric Nervous System

腸の反射行動は腸神経系(ENS)によって制御されています。ENSは、腸壁に収容された2つの神経節神経叢のニューロンとグリアの統合ネットワークです。腸管ニューロンと腸グリアは、腸神経節内の唯一の細胞タイプです。腸内ニューロンとグリアの活動は、腸の機能を調整する役割を担っています。このプロトコルでは、細胞内カルシウム(Ca2+)の過渡現象を蛍光インジケーター色素でイメージングすることにより、インタクトENS内のニューロンとグリアの活動を観察する方法を説明しています。私たちの技術的な議論は、げっ歯類の腸からの筋神経叢のホールマウント調製におけるCa2+イメージングの方法に焦点を当てています。Fluo-4などの高親和性Ca2+インジケーターを使用したENSホールマウントのバルクローディングにより、個々のニューロンまたはグリア細胞におけるCa2+応答の測定が可能になります。これらの応答は繰り返し確実に誘発できるため、薬理学的ツールを使用した定量的研究が可能になります。ENSの細胞におけるCa2+応答は、冷却電荷結合素子(CCD)カメラを備えた蛍光顕微鏡を使用して記録されます。ホールマウント調製物におけるCa2+イメージングを用いて得られた蛍光測定は、腸管ニューロンおよびグリア細胞におけるCa2+応答のメカニズムおよび潜在的な機能的影響を特徴付ける簡単な方法を提供します。

この技術の適切な使用は、組織標本をマウント全体の研究者は、正確に細胞内Ca 2+の[Ca 2+] iの腸溶性ニューロンにおける過渡現象とにおけるグリアを測定することができます。マウス結腸の筋層間神経節内のグリア細胞におけるアゴニスト誘発のCa 2+応答の代表的な例は、 ビデオ1に示されている。以下の結果は、我々はこの方法を用いて得られてきたいくつかの代表的な結果を示すことを意味する。まず、 図2は 、腸グリアを測定した実験結果を示した[Ca 2+] iのモルモット結腸の縦筋層間筋肉神経叢（LMMP）準備中のATPによる刺激に応答して変化する。具体的には、この図は、分析筋層間神経節および腸神経の位置を示すアスタリスクの概要を含む上記の実験プロトコルを適切に分析するための方法を示している。これらの結果は、私の[Ca 2+] iのモルモット筋層間神経膠での動員に百マイクロモルのATPの最適な用量をllustrate。この応答は、腸のグリア刺激を較正し、刺激をテストするための応答を正規化するために使用することができる。次に、 図3は 、黄色の円の周囲に示され、適切にグリア細胞の周囲の関心領域（ROI）を選択する方法を解明。これらの結果は、基本条件下および薬理学的刺激に応答して所望の蛍光の変化を示す。最後に、 図4は、全体のマウントの準備での[Ca 2+] iの応答のために腸溶性グリアと神経細胞を選択するための空間的な考慮事項を示しています。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52506/52506fig1highres.jpg" /> ENSの図1.組織。ENSは、2つの主要な神経節のある叢が含まれています。筋層間神経叢はリットルとの間に配置されるongitudinal円形筋肉層。粘膜下神経叢は、粘膜と円形筋層の間に位置している。 ENSはもっぱらニューロンと腸溶性グリアから構成されている。神経線維トラクトは、神経節を接続してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52506/52506fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/52506/52506fig2highres.jpg" /> その場での ATPに対するモルモット結腸の筋層間神経叢に応答図2.腸グリア。 （A）筋層間神経節内のFluo-4蛍光は基本条件下（破線によって概説）。矢印は、100マイクロモル/ LのATP、グリア細胞に刺激を受けると（B）。厚いinterganglionic繊維路を指してではなく、ニューロン、急激に増加するのFluo-4の[Ca 2+]の増加を示す蛍光<sUB&gt;私。最大応答24を誘発1ミリモル/ Lの用量依存的にATPに応答する（C）腸グリア。応答する細胞が小さく、はるかに大きなニューロン（アスタリスクでマーク暗いスペース）を囲むことに注意してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52506/52506fig2large.jpg" target="_blank">表示するには、こちらをクリックしてくださいこの図の拡大版。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/52506/52506fig3highres.jpg" /> その場で ATPに結腸の筋層間神経叢の応答図3.マウスS-100-GFP +細胞。（A）S-100-GFP +マウス結腸の筋層間神経節におけるグリア細胞（緑）（破線で概説）。神経節内のグリア細胞の周囲の関心の6つの領域（ROIを）を黄色の円で示されている。矢印は、神経節に通じる太い線維トラクトを示している。アスタリスクdの2腸溶性ニューロンのenoteの場所。100マイクロモル/ LのATPとの刺激の後、基礎条件の下でRhod-2蛍光。（C）を示す（B）と同じ神経節、グリア細胞が増加して応答がの[Ca 2+] iの増加Rhod-で示した2蛍光。（D）-Cに示した各ROIに対応するトレースします。（E）は D 24に示す6 ROIの応答を（平均±SEM）平均した。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52506/52506fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/52506/52506fig4highres.jpg" /> 腸溶性ニューロン対グリア通信のその場イメージングでは、図4。 （A）代表的な画像（疑似カラー）のCa 2+イメージング実験ホールマウントから筋層間神経叢の調製は、神経細胞のP2X7受容体アゴニストBzATP（100μM、30秒）でチャレンジした。神経作用薬の前、周囲の腸のグリア細胞、グリアにおける経時的な蛍光の変化（青）の（A &quot;）。（B）分析およびニューロンニューロン（A &#39;）でFLUO4蛍光の増加を引き起こすことに注意してください（赤）通常のバッファ（実線でBzATPへの神経作用薬、BzATP。（C）は、ニューロンとグリア反応の適用後）、バッファにニューロンのP2X7受容体13を増強するために、低カルシウム2+およびMg 2+（破線）を含む。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52506/52506fig4large.jpg" target="_blank">してくださいこの図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。</a> 中腸溶性グリアでビデオ1アゴニスト誘起のCa 2+応答その場。このビデオは、Ca 2+指示薬色素、フルオ-4を搭載したマウスの遠位結腸から筋層間神経節を示しています。示されたときに、グリア細胞アゴニスト、ADPは、浴に添加される。 ADPはフルオ-4蛍光で一時的な上昇によって観察されるよう腸溶性グリアに細胞内Ca 2+の上昇を誘発する。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52506/JOVE.mp4" target="_blank">このビデオを見るにはこちらをクリックしてください。</a>

腸内神経系(ENS)は、腸壁に位置するニューロンとグリアのネットワークで、腸の反射を制御します。このプロトコルは、Ca2+イメージングを使用してENSのライブ調製物中の腸管ニューロンおよびグリアの活動を記録する方法を説明しています。

腸神経系のその場のCa 2+イメージングに

Reflex behaviors of the intestine are controlled by the enteric nervous system (ENS). The ENS is an integrative network of neurons and glia in two ...

この手順の目的は、蛍光カルシウムインジケーター染料を用いて、腸管の生体ホールマウント標本における腸管神経およびグリア細胞の活動をイメージングすることです。まず、動物から腸管の一部を摘出し、あらかじめ加温した培地に置きます。次に、腸管を腸間膜側に沿って切り開き、粘膜面を上にして軽い張力をかけながらピンで固定し、平らに広げます。筋層間神経叢のホールマウント標本をマイクロディセクションにより作製し、イメージングディッシュに配置します。次に、インキュベーター内でホールマウント標本に蛍光指示薬のflu oh fourをロードします。最終ステップとして、ロードした標本を、画像取得・解析ソフトウェアで制御される高解像度カメラ搭載の蛍光イメージング顕微鏡を用いて撮影し、ベースライン活性を記録します。次に、調査対象の薬剤を添加し、ニューロンおよびグリア細胞におけるカルシウム過渡応答を記録します。最終的に、腸管神経系のin situカルシウムイメージングを用いて、ニューロンおよびグリア細胞の細胞活性が、生理的な腸機能の調節や、腸の病態生理における腸管神経系機能不全にどのように寄与しているかを研究します。本手法の意義は、NC2カルシウムイメージングを用いてニューロンと腸管グリアの複雑な相互作用を調べる簡便かつ堅牢な方法を通じて、機能性腸管障害および炎症性腸疾患の生理学および病態生理学の理解を深めることにあります。この手順のデモンストレーションは、私の研究室の科学者であるDavidによって行われます。実験動物の組織を用いた以下の手順は、AVMA（2013年）の動物安楽死ガイドラインに準拠しており、ミシガン州立大学のIACUCによって事前に承認されています。承認された手順に従って動物を安楽死させた後、動物を仰臥位にし、腹部の皮膚を70% ethanolで洗浄します。ピンセットで腹部正中線の皮膚をつまみ、外科用鋏を用いて正中線に沿って6 cmの切開を行い、内部の消化器器官を露出させます。次に、鈍端鉗子を用いて腹膜内の結腸を確認し、露出させます。ハサミで回腸結腸間膜を切断し、腸管をほどき始めます。腸管が十分にほどかれたら、本ビデオで示す大腸標本の作製のため、盲腸の遠位および直腸の近位で結腸を切断します。その後、速やかに腸管セグメントを取り出し、3 µMの塩酸ニカルジピンおよび1 µMの塩酸S-スコポラミンを添加した氷上のDM EMF 12培地を含むビーカーに入れます。これらの阻害剤を添加することで、腸管平滑筋が麻痺し、マイクロダイセクションおよびその後のイメージングが容易になります。目的の腸管セグメントから4～6 cmの小さなセグメントを切り出し、冷却した添加培地を満たしたSylgardコーティング済みのペトリ皿に入れます。次に、腸管セグメントの近位端と遠位端を昆虫ピンで固定し、腸間膜側に沿って直線的に縦切りして腸管を開きます。組織を軽く張った状態で粘膜面を上にし、ピンで平らに固定します。5番の微細ピンセットで粘膜を持ち上げ、非常に微細なスプリング鋏でその下方を切除し、粘膜層を慎重に剥離します。組織を約0.5 cm四方の小さな標本に切り分け、それぞれを添加剤入り培地を満たしたイメージングディッシュに入れ、氷上に置きます。各標本の4隅をピンで固定し、円形筋層を上に向けて配置します。精密ピンセットで慎重に剥離させながら、円形筋を取り除きます。筋間神経叢を露出させるため、過度な伸展を避け、イメージングディッシュを氷上に戻し、各ディッシュの溶液を新鮮な補充培地と交換します。次に、ディッシュを氷上から取り出し、各ディッシュに2 mLの酵素ミックスを加え、5%二酸化炭素および95%空気条件下で室温で15分間インキュベートします。最後に、組織標本を培地で3回洗浄します。光退色を避けるため、限定的な光量の下で作業しながら、1.5 mLの補充培地、1.2 µLの250 mM Fluo-4 stock、1.5 µLの4 mM Fluo-4 stock、および約1.5 mLのFluo-4ローディング溶液をイメージングディッシュに加え、暗室インキュベーターにて37 °Cで45分間インキュベートします。インキュベーターからディッシュを取り出した後、標本を培地で3回洗浄します。次に、神経細胞の標識を強化するため、200 µM のプロピオン酸を含む新鮮な培地を加え、前と同様に15分間インキュベートします。インキュベーション中に、プロトコルの記載内容に従って修正 Krebs バッファーを作製し、筋肉の収縮を抑制するために 3 µM のニカルジピンと 1 µM のスコポラミンを添加します。Ca²⁺ イメージングおよびホールマウント解剖の間は、記録チャンバーを蛍光顕微鏡の下に配置し、複数の加熱シリンジリザーバーを備えた重力フロー灌流システムを使用します。37 °CのKrebs緩衝液を毎分2〜3 mLの速度で連続灌流させます。このとき、入力ラインおよび真空トラップに接続された吸引ラインの両方で、気泡が形成されないように注意してください。明視野照明下で、目的の神経叢に焦点を合わせます。組織への過剰な露光はフォトブリーチング（光退色）を招く可能性があるため、避けてください。神経節内のflu oh fourの取り込み状態を確認し、イメージングに適した健全な神経節を選択します。損傷して不健全な神経節は、自家蛍光や点状の形態を示すため、イメージングに使用しないでください。神経節を選択したら、光路をカメラに切り替え、ライブ画像を取得します。画像取得ソフトウェアを使用して、神経節にピントが合っていることを確認し、画像取得レートと露光時間を設定します。画像取得レートと時間は、研究者が記録したいイベントによって異なります。ほとんどの実験では、従来、グリア細胞に対しては0.5から1 Hzで、それ以外には最大2から10 Hzで画像を取得します。ニューロンに比べ、グリア細胞のカルシウム一過性変化は速くないため、記録を開始し、実験的刺激がない状態で、選択した神経節の生理的活動のベースラインを30秒間確立します。その後、使用する薬剤に最適化されたプロトコルに従い、重力流灌流システムを用いて、受容体アゴニストやアンタゴニストなどの目的の薬剤を、1分あたり2～3 mLの速度で、あらかじめ温めてから投与します。記録を停止し、実験のタイムラプス動画を確認します。適切な画像解析ソフトウェアを使用して、関心領域（ROI）を慎重に選択します。最後に、適切なイメージングソフトウェアを用いて、関心領域の蛍光強度を初期のベースライン値に対して正規化し、比較します。正規化された蛍光強度の変化は、カルシウム濃度の変化に正比例します。以下の3つの画像は、モルモズクの腸管グリア細胞がin situでTPに反応することを示しています。基底状態で、点線で示される低レベルのFluo-4蛍光が認められます。100 µM/L ATPで刺激すると、矢印で示される太い神経節間線維束に沿って、ニューロンではなくグリア細胞においてFluo-4蛍光が急速に増加し、カルシウム濃度の上昇が示されています。反応している細胞は小さく、アスタリスクでマークされた暗い領域で示される、より大きなニューロンを取り囲んでいることに注目してください。このヒストグラムは、腸管グリアがTPに対して用量依存的に反応し、1 mmol/Lで最大反応が誘発されることを示しています。このビデオは、カルシウム指示薬Fluo-4を導入したマウス遠位結腸の筋間神経節を示しています。指示があるタイミングで、グリア細胞アゴニストであるADPをバスに添加します。DPは、Fluo-4の蛍光の一過性上昇によって観察されるように、腸管神経膠細胞における細胞内カルシウムイオン（Ca²⁺）の増加を誘発します。このビデオを視聴することで、カルシウムイメージングを用いて、ニューロンと腸管神経膠細胞の間の複雑な相互作用を正確に調べる方法について深く理解できるはずです。ホールマウント標本におけるカルシウム応答のメカニズムと潜在的な機能的影響を特性評価するには、最適なイメージング品質を得るための精密な解剖が必要です。この顕微鏡ベースの手法において、蛍光標識と薬理学的刺激を用いることで、多細胞という本来の環境におけるこれらの細胞のより適切な評価が可能になります。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

電位感受性色素は、その単一細胞から複数の神経節の回路への範囲は調整可能な解像度と、そのようなモルモット腸神経系の神経叢としてそのままニューラルネットワークからの電気活動の光学的記録を有効にする方法このプロトコルは示しています。...

電位感受性色素を用いてモルモット腸ネットワークにおける電気活動の光学的記録

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マウスの粘膜下層および固有層からの腸管グリア細胞の単離

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胚性マウス消化管におけるニューロン集団の免疫蛍光染色

出典:Fried, D. E., Gulbransen, B. D.In Situ Ca2+ 腸神経系のイメージング J. Vis. Exp.

マウス大腸筋神経叢における腸内ニューロンとグリア活性のカルシウムイメージング

出典: Doser, R., et al.in vivoでのニューロンカルシウムハンドリングの細胞内イメージングJ. Vis. 経験。(2023年)このビデオは、トランスジェニックCaenorhabditis elegans株の腹側神経索ニューロンにおける細胞内カルシウムフラックスのin...

Caenorhabditis elegansのニューロンにおける細胞内カルシウムダイナミクスのイメージング

腸神経系のニューロンおよびグリア成分を直接研究するための細胞培養プロトコルを実演します。成体マウスの筋神経叢から、電気生理学、免疫組織化学などにより個々のニューロンとグリアの機能を調べる能力を提供する、カバースリップ上のニューロン/グリア混合培養物。...

不定冠詞<em&gt;インビトロ</em成体マウスの筋層間神経叢から分離腸ニューロンとグリアの&gt;準備

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マウスにおける胃腸の運動を分析するためにビデオ画像と時空間マップ

腸間膜求心性神経は、正常な恒常性と病態生理学に関する情報を消化管から脳に伝えます。胃腸求心性神経活動は、求心性神経が付着した孤立した腸管セグメントを臓器浴に取り付け、神経を分離し、基礎活動と刺激活動を評価することで評価できます。...

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インビボ で2光子蛍光と誘導ラマン散乱顕微鏡を組み合わせた生体組織のイメージング

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インビボ 無傷の背根神経節における一次感覚ニューロンのネットワークにおけるニューロンアンサンブルのカルシウムイメージング

学ぶ腸神経系のCa²⁺イメージング法。蛍光カルシウム指示薬を用いて、生きた腸標本の腸神経細胞とグリア細胞の活動を可視化します。この手法は、神経科学と消化器病学の研究において、腸の生理機能と病態生理を理解する上で重要です。

腸神経系のその場のCa ²⁺イメージングに

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