Name: 光イメージングによる非侵襲的検出のための蛍光色素で標識幹細胞 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-04-02T18:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 42 s
Description: 学ぶ蛍光色素によるヒト胚性幹細胞と間葉系幹細胞の標識法。光イメージングを用いた非侵襲的なin vivo追跡と組織病理学的解析により、再生医療における細胞動態の理解を深めます。

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このプロジェクトは、再生医療のためのカリフォルニア工科大学からレオンJ.タールのSEEDの助成金によってサポートされていました。トビアスヘニングは、ドイツ研究協会（DFG、HE 4578/1-2）から奨学金研究によって資金を供給された。我々は感謝してヒト胚性幹細胞の培養上彼のアドバイスをファニートのMenesesを確認応答したい。

蛍光色素との間葉系幹細胞のラベリングは、DID <ol><li>間葉系幹細胞を標識するための手順を開始するには、トリプシン処理および細胞の定義の数と、懸濁液を得るために細胞を数える。 </li><li>インキュベーターから細胞を取り出し、ラベルを付ける細胞を含むフラスコから古い培地を吸引除去</li><li>のMg / Caのフリー10mlのPBSで細胞を洗浄する。 PBSを吸引除去する。 MgおよびCaは、トリプシンを阻害する、従って私達はこれらなしでPBSを使用してください。 </li><li>我々は5mlを使用するT75フラスコのために、予め温めておいた0.05％トリプシンを追加。フラスコの表面全体が覆われていることを確認してください。 </li><li>約5分間37インキュベーターで℃でインキュベートする。 </li><li>顕微鏡下で剥離を確認してください。細胞がまだフラスコに付着した場合、それを数回タップし、トリプシン処理が成功するまで少し長く待つ。 </li><li>今、それは10％FCSを含有する培地を加えることによってトリプシンを中和する必要があります。トリプシンがあるので、我々はメディアの同じ量を使用してください。 </li><li>すべての細胞は培地に再懸濁していることを確認するために数回上下にピペッティングし。 </li><li>滅菌15ミリリットルキャップポリプロピレンチューブに細胞溶液を移す。 </li><li> 5分間、400 rcfで遠心する。 </li><li>細胞ペレットを崩さないように確実に上清を吸引除去する。 </li><li> DMEMで細胞を再懸濁し、細胞数に進みます。 </li><li>無血清培地（DMEM）のmlあたり^ 6 × 10の密度で標識される細胞をサスペンド。 </li><li>これは、細胞懸濁液のすべての準備だった。今、それはラベルを開始する準備ができています。 </li><li>最初に、細胞懸濁液のmlあたり、DID造影剤を5μLを加える。 </li><li>その後、軽くピペッティングすることによってソリューションを混在させること。 </li><li> 37標識溶液℃で6 - ウェル低アタッチメント皿で20分間で細胞をインキュベートする。 </li><li>シンプルなインキュベーションが完了したら、それは15ミリリットルキャップポリプロピレンチューブに細胞溶液を転送する必要があります。 </li><li> 5分間、400 rcfで、それを遠心してください。 </li><li>細胞ペレットを乱さないように確実に、標識メディウムを吸引除去する。 </li><li> PBSで細胞を洗浄。細胞ペレットを分割することを確認し、上下のセルをピペッティング。 </li><li>後者の二つのステップをさらに2回繰り返し、3の洗浄工程の合計があるので。 </li><li>細胞をカウントし、細胞の生存を決定するためにトリパンブルーテストを実行します。これらは、我々がここで説明するつもりはないされている標準的な細胞培養のプロトコルです。 </li><li>あなたの細胞は、光イメージャで撮像される準備が整いました。 </li></ol>蛍光色素ICGとヒト胚性幹細胞の標識<ol><li>ヒト胚性幹細胞を標識するための手順を開始するには、インドシアニングリーン造影剤を​​準備する。トランスフェクション剤のプロタミンと混ぜる。 </li><li>インドシアニングリーン粉1mgのを測定します。ジメチルスルホキシド（DMSO）を100μLでICGの粉末を溶かし。 </li><li>混合するダルベッコ改変イーグル培地（DMEM + 10％ウシ胎児血清）メディア400μLを加え、よくそれを振る。インドシアニングリーンの2mg/mlの最終濃度でこれが結果。 </li><li>トランスフェクションエージェントのプロタミンを追加。造影剤のためのシャトルとしてプロタミン行為、それはより効率的に細胞内に取得できるように。 </li><li> 300μLICGと300μLの無血清ダルベッコ改変イーグル培地で、10mg/mlの濃度で供給される5μL硫酸プロタミンを、混ぜる。 </li><li>ゆっくりとフォームへの複雑なように5分のための新しいトランスフェクション溶液を振る。 </li><li>標識溶液が準備ができています。 </li><li> hESCの10ミリメートルのシャーレから、古いメディアを吸引除去する。 </li><li>予め温めておいた血清を含まないDMEM 5mlを追加します。 </li><li>細胞に予め用意されたICG /プロタミン溶液を加える。 37℃インキュベーターに皿を置くことによって1時間のインキュベーションを開始℃に</li><li>インキュベーションが完了したら、インキュベーターから皿を削除し、標識溶液を吸引除去する。 </li><li> 5mlのPBSで皿を洗浄して細胞を洗浄する。 </li><li> PBSを吸引除去し、0.25％トリプシン5mlのと交換してください。 ℃で5分間トリプシン処理を発生させるための37皿をインキュベートする。それは、たまに料理を少し振るのに役立ちます。 </li><li>静かに残りのコロニーを分割するために、上下にピペッティングし。 </li><li>皿にKSRの同量を追加してトリプシンを中和する。 </li><li> 15ミリリットルチューブに細胞溶液を移し、5分間で400 rcfで解決策を遠心する。 </li><li>完全なメディアで細胞を再懸濁します。 </li><li>この時点でも塊がある場合は、トリプシン処理し、再度遠心する。 </li><li>塊のない細胞溶液が達成されると、古いメディアを吸引除去し、予め温めておいたフルESCメディア10mlのでペレットを再懸濁します。 </li><li>この時点で、それはヒトES細胞からマウスのフィーダー細胞を分離する必要がある。これはことを保証するために行われ、後に、唯一のイメージング幹細胞が発生します。 </li><li>このためには、目を移すゼラチンコートした10cmディッシュへの電子の細胞溶液。 </li><li> 37℃のインキュベーターに料理を入れて、それが45分放置します。この時間の間に、料理を邪魔しないように注意してください。今、フィーダーは皿に付着し、幹細胞はしません。 </li><li>ペトリ皿の中から解決策を転送する。そして今、私たちはヒト胚性幹細胞の標識した単一細胞のソリューションを持っている。 </li><li>細胞は、今カウントすることができますし、トリパンブルー試験は、それらを実行することができます。 </li><li>細胞は、イメージを作成する準備が整いました！ </li></ol>

<ol><li>Daldrup-Link, H. E., Rudelius, M., Metz, S., Piontek, G., Settles, M., Pichler, B., Heinzmann, U., Weinmann, H. J., Schlegel, J., Link, T. M., Rummeny, E. J., Oostendorp, R. A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell+tracking+with+Gadophrin-2+--+a+bifunctional+contrast+agent+for+MR+imaging%2C+optical+imaging+and+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Nucl+Med+Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">Stem cell tracking with Gadophrin-2 -- a bifunctional contrast agent for MR imaging, optical imaging and fluorescence microscopy.</a> Eur J Nucl Med Mol Imaging. 31, 1312-1321 (2004).</li>
<li>Simon, G. H., Daldrup-Link, H. E., Kau, J., Metz, S., Schlegel, J., Piontek, G., Saborowski, O., Demos, S., Duyster, J., Pichler, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+imaging+of+experimental+arthritis+using+allogeneic+leukocytes+labeled+with+a+near-infrared+fluorescent+probe%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Nucl+Med+%26+Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">Optical imaging of experimental arthritis using allogeneic leukocytes labeled with a near-infrared fluorescent probe.</a> Eur J Nucl Med & Mol Imaging. 33, 998-1006 (2006).</li>
<li>Sutton, E., Henning, T., Pichler, B., Bremer, C., Daldrup-Link, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+Tracking+with+Optical+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Radiol%22%5BJournal%5D)">Cell Tracking with Optical imaging.</a> Eur Radiol. 2, 350-357 (2003).</li>
<li>Funovics, M. A., Alencar, H., Su, H. S., Khazaie, K., Weissleder, R., Mahmood, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Miniaturized+multichannel+near+infrared+endoscope+for+mouse+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">Miniaturized multichannel near infrared endoscope for mouse imaging.</a> Mol Imaging. 2, 350-357 (2003).</li>
</ol>

OIは、蛍光の検出に基づいて、比較的新しいイメージング技術です。 OIは、放射性トレーサーベースのイメージング技術と同じくらい敏感ですが、任意の照射への暴露に関連付けられていない。 OIは、それによって標的部位への細胞移動への洞察を提供する、非侵襲的かつ反復的に追跡する細胞の効果的な手段を提供します。テクニックの一つの主要な制限は、in vivoでの蛍光プローブの限られた組織の浸透です。このように、皮膚の表面から約5-10 cmより多くの深部組織中のトレーサの集積は、検出されない場合があります。現在の臨床応用はこのような、内視鏡心血管および網膜イメージング（Funovicsら、2003）などの表面的なテクニックに限定されているが、研究のこのドメインは、生体内細胞追跡にによって提供される広大な可能性の認識を通して拡大していきます。

<table><tbody><tr><td>インドシアニングリーン (IR-125)</td><td>試薬</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC41254-1000</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-2650</td><td></td></tr><tr><td>D-MEM 高グルコース</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5648</td><td></td></tr><tr><td>ゼラチン</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G1890</td><td>PBSで最終濃度0.1%に希釈</td></tr><tr><td>PBS (Mg/Ca不含)</td><td>試薬</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA 0.05% </td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>25300-120</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA 0.25% </td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>25200-114</td><td></td></tr><tr><td>FCS (特性解析済み)</td><td>試薬</td><td>Hyclone</td><td>SH30071.03</td><td></td></tr><tr><td>セルストレーナー (40 &amp;mu;m ナイロン)</td><td>試薬</td><td>BD Biosciences</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>DiD</td><td>試薬</td><td>Molecular Probes, Life Technologies</td><td>V-22887</td><td></td></tr><tr><td>Knockout DMEM</td><td>試薬</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>10829018</td><td></td></tr><tr><td>Knockout Serum Replacer</td><td>試薬</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>10828028</td><td></td></tr><tr><td>β-メルカプト&amp;#8211;エタノール </td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7522</td><td></td></tr><tr><td>非必須アミノ酸 </td><td>試薬</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11140050</td><td></td></tr><tr><td>FGF-2</td><td>試薬</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>233-FB-025</td><td></td></tr><tr><td>グルタミン 200mM </td><td>試薬</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>試薬</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>プロタミン硫酸塩</td><td>試薬</td><td>American Pharmaceutical Partners</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

光イメージングによる非侵襲的検出のための蛍光色素で標識幹細胞

 Labeling Stem Cells with Fluorescent Dyes for non-invasive Detection with Optical Imaging

光イメージング（OI）は、新しい幹細胞ベースの治療のin vivoモニタリングのための簡単​​、迅速かつ安価なツールです。技術は、蛍光色素、標識細胞と特定の標的臓器や病態におけるその蓄積の可視化のその後の静脈注射による幹細胞のex vivoでの標識に基づいています。紹介したテクニックは、我々は脂溶性蛍光色素を使って簡単なインキュベーションすることによりヒト間葉系幹細胞（hMSCの）ラベルを付ける方法を示していました（C67H103CIN2O3S）と我々はラベル付け方法FDAによるヒト胚性幹細胞（ヒトES細胞）蛍光色素はグリーン（ICG）をインドシアニン承認した。取り込み機構は、リン脂質の細胞膜の脂質二重層でlypophilic染料の付着と拡散を介してです。細胞を、血清含有培地でのインキュベーションとは対照的に無血清培地中の色素とインキュベートされている場合の標識効率は、通常、改善されています。さらに、トランスフェクション剤、硫酸プロタミンの添加は、造影剤の取り込みを大幅に向上させます。

このビデオでは、蛍光色素を持つヒト胚性幹細胞と間葉系幹細胞のラベリングのテクニックを示しています。この手法は、生体内で光学イメージングを、蛍光顕微鏡による病理組織学的相関の移植された幹細胞の追跡に使用することができます。

光学イメージング（OI）は、新たな幹細胞療法のin vivoモニタリングを可能にする、簡便で迅速かつ安価なツールです。この手法は、ex vivoでの...

Hiku Alge Blink博士の研究室へようこそ。本プロジェクトに資金を提供していただいたカリフォルニア再生医療研究所に感謝いたします。蛍光造影剤を用いて幹細胞を標識することで、移植した幹細胞をin vivoで追跡することが可能になります。ラベル化された幹細胞をその後光学イメージングすることで、生体内での細胞移動を非侵襲的にモニタリングする縦断的研究が可能になります。このビデオでは、ヒト胚性幹細胞とヒト間葉系幹細胞の両方を蛍光染料でラベルする方法を説明します。こんにちは、カリフォルニア大学サンフランシスコ校放射線科のコントラスト剤研究グループのソフィー・ボディントンです。本日は、蛍光造影剤を用いて幹細胞を標識する2つの異なる手法をご紹介します。一つは蛍光染料のDiDを用いた間葉系幹細胞の標識であり、もう一つはEndInvitrogenを用いたヒト胚性幹細胞の標識です。まずは、DiDを用いたヒト間葉系幹細胞の標識法から説明します。間葉系幹細胞の標識の手順を開始するために、まず細胞をトリプシン処理して計数し、定義された細胞数の懸濁液を調製します。これは標準的な組織培養の手法であるため、ここでは詳細に説明しません。標識する細胞を、無血清培地を用いて1 mLあたり100万個の密度で懸濁させます。まず、細胞懸濁液1mLあたり5µLのDiDコントラスト剤を加えます。次に、ピペッティングで穏やかに溶液を混合します。細胞をラベル標識溶液とともに、6ウェル低接着ディッシュ内で37°Cで20分間インキュベートします。簡単なインキュベーションが完了したら、細胞溶液を15mL遠心チューブに転移させます。400 RCFで5分間遠心分離します。次に、ペレットを乱さないように注意しながら、ラベル化培地を吸引して除去します。その後、PBSで細胞を洗浄します。ピペットで細胞を吸い上げ、出しすることで、細胞ペレットを確実に解きほぐします。後者の2つのステップをさらに2回繰り返し、計3回の洗浄ステップを行います。次に、細胞数を計測し、トリパンブルー染色により細胞生存率を判定します。細胞生存率を確認した後、細胞を光学イメージャーで撮像する準備が整います。ヒト胚性幹細胞の標識手順を開始するために、まずコントラスト剤であるインドシアニングリーンを調製します。次に、プロタミンとして知られるトランスフェクション剤と混合します。まず、1 mgのインドシアニングリーン粉末を量り取り、100 µLのDMSOに溶解させます。この混合物に10% FCSを含むDMEMを400 µL加え、よく振とうします。これにより、インドシアニングリーンの濃度は2 mg/mLとなります。次に、造影剤のシャトルとして機能し、細胞内への導入効率を高めるトランスフェクション剤であるプロタミンを添加します。10 mg/mLの硫酸プロタミ

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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