-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Basic Biology
Podawanie związków II
Podawanie związków II
JoVE Science Education
Lab Animal Research
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Lab Animal Research
Compound Administration II

5.7: Podawanie związków II

40,561 Views
12:32 min
August 24, 2015
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Źródło: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Uniwersytet Notre Dame, IN

Podawanie związków jest często integralnym elementem badania na zwierzętach. Należy ocenić wiele czynników, aby upewnić się, że związek jest dostarczany prawidłowo. Droga podania wpływa na mechanizmy wchłaniania. Charakterystyka substancji, która ma być wprowadzona (pH, lepkość i stężenie) może decydować o wyborze drogi podawania.1,2,3

Procedure

1. Aplikacja miejscowa

  1. Przed nałożeniem jakichkolwiek maści i kremów usuń całą sierść z tego obszaru za pomocą kremu do depilacji lub golenia.
  2. Dokładnie oczyść i osusz skórę.
  3. Substancję należy nanosić bezpośrednio na skórę za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką lub za pomocą bezpośrednio umieszczonej kropli, aby uniknąć kontaktu z technikiem.
  4. Aby uzyskać najlepsze rezultaty, nałóż kilka cienkich warstw maści lub kremu, zamiast jednorazowego nakładania grubej warstwy.
  5. Nałóż płyn, rozdzielając włosy i nakładając kroplę na odsłoniętą skórę.
  6. W przypadku stosowania substancji miejscowo istnieje ryzyko wchłaniania ogólnoustrojowego ze względu na pielęgnację obszaru przez zwierzę. Należy podjąć środki zapobiegawcze w celu uniknięcia przypadkowego spożycia lub przedwczesnego usunięcia substancji. Dostępne są małe obroże lub tarcze, aby zapobiec dotarciu zwierzęcia do dotkniętych części ciała. Może być również wymagane indywidualne trzymanie, aby zapobiec przebywaniu w pomieszczeniach ze strony współwięźniów z klatki.

Figure 1
Rysunek 1. Stosowanie miejscowe u myszy.

2. Dawkowanie doustne

  1. W przypadku podawania zwierzętom związków chemicznych w postaci paszy lub wody, należy obliczyć minimalną dawkę dobową w oparciu o masę ciała. Średnia waga szczepu myszy lub szczura użytego w doświadczeniu może być wykorzystana do dokonania obliczeń, chyba że określono konieczność zważenia każdego zwierzęcia i obliczenia dawki dla każdego osobnika.
  2. W przypadku protokołów, które wymagają, aby spożycie pokarmu i/lub wody było dokładnie mierzone, zwierzęta muszą być trzymane indywidualnie.
  3. Specjalistyczne karmy lub smakołyki mogą być produkowane w celu zaspokojenia potrzeb eksperymentalnych.
    1. Zastąp standardową dietę dietą opracowaną w formule, która pozwala zwierzętom spożywać ten związek przez cały dzień.
    2. Żywność może wymagać częstszej wymiany niż standardowa żywność ze względu na niestabilność związku.
  4. Substancje mogą być również podawane poprzez rozpuszczenie ich w wodzie pitnej, co pozwala zwierzętom na otrzymywanie związku przez cały dzień
    1. Do wody dodaje się niewielką ilość cukru, aby była smaczna. Dokładna ilość, którą należy dodać, zależy od przyjęcia wody przez myszy. Użyj najmniejszego możliwego przyrostu.
    2. Częstotliwość wymiany wody zależy od stabilności związku. Niektóre substancje mogą być wrażliwe na światło lub wytrącać się z czasem.

3. Procedura zgłębnika

Proste lub zakrzywione igły dozujące o rozmiarze 20-25 x 1,5 cala są używane dla myszy. W przypadku szczurów stosuje się proste lub zakrzywione igły dozujące o rozmiarze 18-20 x 2-3 cale. Są one dostępne jako igły wielokrotnego użytku ze stali nierdzewnej lub jako igły jednorazowe. Igły jednorazowe mogą mieć metalowy lub elastyczny plastikowy trzonek z silikonową końcówką.

  1. Podłączyć igłę dozującą do strzykawki wybranej na podstawie objętości i lepkości badanego roztworu. Do dozowania gęstych płynów preferowana jest strzykawka typu Luer lock. Są one ogólnie dostępne od rozmiaru 3 cm³ z podziałką 100 μl. Może to nie być odpowiednie dla mniejszych objętości lub gdy istnieje potrzeba dokładnych objętości dawek w mniejszych przyrostach.
  2. Przymocować strzykawkę do igły w taki sposób, aby podziałki na cylindrze można było odczytać bez obracania igły. Po umieszczeniu igły w przełyku, każde obroty mogą spowodować pęknięcie przełyku, powodując śmierć zwierzęcia.
  3. Napełnić strzykawkę odpowiednią objętością artykułu do podania (optymalna objętość = 5 ml/kg i maksymalna objętość = 20 ml/kg)4
  4. Odpowiednie unieruchomienie jest niezbędne do tej procedury. 7
    1. Ręcznie krępuj myszy, chwytając skórę u podstawy głowy i potrząsając nimi. Ważne jest, aby ciało było trzymane w taki sposób, aby było zawieszone w linii prostej od głowy do ogona. Jakiekolwiek skręcenie ciała utrudni umieszczenie igły do zgłębnika w przełyku.
    2. Chwyć mocno kark, aby głowa miała minimalny ruch na boki. Kończyny tylne muszą być ustabilizowane, aby zapobiec rotacji ciała.
    3. Aby złapać szczura, chwyć go za ramiona za pomocą palca wskazującego i środkowego po obu stronach szyi, a dłoni po grzbiecie zwierzęcia. Kciuk, trzeci i czwarty palec powinny otaczać klatkę piersiową, aby zwierzę nie mogło poruszać się do przodu lub do tyłu. Ułożenie palców po obu stronach szyi zapobiega obracaniu głowy przez szczura.
    4. Ważne jest, aby ciało było w linii prostej i nie było skręcone, aby pomóc w umieszczeniu igły do zgłębnika bez uszkodzenia jamy ustnej, gardła, przełyku lub żołądka.
    5. Upewnij się, że głowa nie ma nadmiernych ruchów na boki.
    6. Kończyny tylne mogą być ustabilizowane, aby zapobiec rotacji ciała. Osiąga się to, pozwalając tylnym stopom spoczywać na blacie lub klatce.
  5. Podawanie substancji
    1. Ustawić igłę tak, aby krzywizna była skierowana w dół i zrównała się z naturalną krzywizną szyi. Wprowadzić igłę do jamy ustnej z prawej lub lewej strony, między siekacze i zęby trzonowe pod kątem w kierunku tylnej części gardła.
    2. Gdy igła znajdzie się w jamie ustnej, odchyl głowę do tyłu za pomocą igły do zgłębnika, aż nos będzie skierowany do góry. Jest to szczególnie ważne w przypadku używania prostych igieł. Igła powinna łatwo wsunąć się do przełyku. Nie wciskać igły na siłę. Jeśli wyczujesz jakikolwiek opór, wycofaj igłę i spróbuj ponownie.
    3. Gdy igła znajdzie się na swoim miejscu w żołądku, delikatnie odłóż związek.
    4. Wyjąć igłę, upewniając się, że nie następuje obrót zakrzywionej igły.
    5. Jeśli zwierzę zacznie się szarpać, wyjmij igłę dozującą i mocniej unieruchomij zwierzę.
    6. W trakcie wykonywania zabiegu, jeśli zwierzę wykazuje objawy sinicy lub niewydolności oddechowej lub jeśli z jego pyska wypływa roztwór, należy natychmiast wyjąć igłę dozującą i wypuścić zwierzę do klatki.
    7. Ogólnie rzecz biorąc, podczas zgłębnikowania szczurów i myszy, szczególnie z substancją żrącą, zalecaną praktyką jest downętrzne dostarczenie niewielkiej ilości – w celu zbadania kaszlu – przed podaniem całej objętości. W ten sposób, jeśli igła zostanie nieprawidłowo umieszczona, objętość dostarczana do płuc będzie mniejsza, a zwierzę ma większe szanse na wyzdrowienie.

Figure 2
Rysunek 2. Zgłębnik doustny u myszy (po lewej) i szczurów (po prawej).

Wiele eksperymentów wymaga, aby związek był podawany zwierzęciu drogą doustną lub miejscową, tak aby metoda lepiej naśladowała naturalne przyjmowanie substancji doświadczalnej.

W przypadku dawkowania doustnego związek ten może być rozpuszczony w wodzie pitnej lub włączony do pokarmu spożywanego przez zwierzęta. Inną, bardziej precyzyjną metodą dawkowania doustnego jest zgłębnik doustny, w którym za pomocą dużej igły umieszcza się związek bezpośrednio w żołądku. Z drugiej strony, środek miejscowy może być umieszczony bezpośrednio na powierzchni skóry i zazwyczaj ma na celu oddziaływanie tylko na obszar, na który jest stosowany. Każda z tych strategii ma zalety i ograniczenia, które omówimy w tym filmie. Następnie pokażemy, jak wykonywać te techniki podawania związków u zwierząt laboratoryjnych i niektóre z ich zastosowań.

Zanim zagłębimy się w protokoły, przyjrzyjmy się rozważaniom, korzyściom i wadom tych technik. Doustne dawkowanie tabletek, kapsułek lub płynów jest najczęściej stosowaną metodą podawania leków u ludzi. Jednak tabletki i kapsułki są niepraktyczne dla gryzoni, więc powszechne dawkowanie doustne odbywa się poprzez rozpuszczenie związku w wodzie pitnej lub pożywieniu.

Podczas dozowania przez wodę pitną sacharoza jest często dodawana do wody w celu zwiększenia smakowitości. Powinien być jednak dobrze zbilansowany, aby zachęcać do normalnego spożywania wody i nie nadmiernego picia ze względu na słodki smak. Dobrą zasadą jest rozpoczęcie od 10% roztworu sacharozy, a następnie dostosowanie w zależności od spożycia. Innym sposobem doustnego dawkowania zwierzęcia jest specjalistyczna karma. Istnieje dostępna na rynku pasza, która zawiera powszechnie dozowane związki, takie jak fenbendazol. Firmy produkujące karmę dla gryzoni mogą również tworzyć specjalistyczne diety testowe, aby spełnić wymagania eksperymentalne.

Zaletą tej formy dawkowania doustnego jest to, że jest nieinwazyjny, podaje związek w sposób ciągły i naśladuje doustne podawanie leku przez człowieka. Brakuje jednak precyzji, ponieważ spożycie związku zależy od przyjęcia pokarmu lub wody, stabilności związku i liczby zwierząt obecnych w klatce. Jeśli dokładne dawkowanie nie jest kluczowe dla eksperymentu, ta nieinwazyjna metoda jest najlepsza dla dobrego samopoczucia zwierząt.

Do bardziej precyzyjnego podawania doustnego można użyć zgłębnika doustnego, który osadza związek bezpośrednio w żołądku o określonej porze i objętości. Jednak do wykonania tej techniki wymagane jest odpowiednie szkolenie, ponieważ może dojść do poważnych uszkodzeń zwierzęcia, jeśli nie jest ono odpowiednio unieruchomione.

Jeśli chodzi o środki do stosowania miejscowego, należą do nich kremy, balsamy, maści, spraye i żele. Zazwyczaj środki miejscowe mają na celu wpływanie tylko na obszar, na który są stosowane. Jednak mogą one również zostać wchłonięte do krwiobiegu, co może być zamierzone lub niezamierzone. Wchłanianie to zależy od: stanu skóry, użytej powierzchni, stężenia substancji, czasu kontaktu i rozpuszczalności lipidowej środka.

Teraz, gdy omówiliśmy tło metod podawania doustnego i miejscowego, poznajmy protokoły, zaczynając od podawania doustnego za pośrednictwem paszy lub wody.

W celu obliczenia dawkowania, najpierw należy znać zamierzoną dawkę, która ma być podawana. Po drugie, musisz określić masę ciała. Zamiast ważyć pojedyncze zwierzęta, do obliczeń można użyć średniej wagi szczepu myszy lub szczura, chyba że określono inaczej. Po trzecie, powinieneś zdawać sobie sprawę z liczby zwierząt w klatce, a po czwarte, musisz znać średnie dzienne spożycie wody lub pożywienia na klatkę.

Pamiętaj, że przygotowana żywność lub woda pitna z rozpuszczonym związkiem może wymagać częstszej wymiany niż standardowa żywność lub woda ze względu na niestabilność związku. Niektóre związki mogą być wrażliwe na światło lub mogą z czasem się wytrącać.

Teraz nauczmy się, jak doustnie podawać precyzyjne dawki, wykonując doustne zgłębnik u myszy i szczurów.

Pierwszym krokiem jest dobranie odpowiedniej igły do zabiegu. Są one wielokrotnego użytku wykonane ze stali nierdzewnej lub jednorazowe z elastycznym plastikowym trzonkiem i silikonową końcówką. W przypadku myszy odpowiednie są proste lub zakrzywione igły dozujące o średnicy 20-25 o długości 1,5 cala. W przypadku szczurów wybierz proste lub zakrzywione igły dozujące o rozmiarze 18-20 o długości 2-3 cali. Prawidłowy rozstaw igieł i wybór strzykawki zależy również od objętości i lepkości. Zapoznaj się z filmem Podawanie związków chemicznych I, aby zrozumieć wpływ tych czynników. Do dozowania gęstych płynów preferowana jest strzykawka typu Luer lock.

Po dokonaniu selekcji przymocować strzykawkę do igły w taki sposób, aby podziałki na cylindrze można było odczytać bez obracania igły. Jest to ważne, ponieważ po umieszczeniu igły w przełyku każde obroty mogą spowodować pęknięcie ściany przełyku, powodując śmierć zwierzęcia. Następnie napełnić strzykawkę odpowiednią objętością roztworu, który ma być podany.

Metodę tę należy zawsze wykonywać u zwierząt przytomnych z nienaruszonymi odruchami połykania, aby zapobiec przypadkowemu umieszczeniu w tchawicy. Stosowanie odpowiedniej techniki unieruchamiania ma kluczowe znaczenie dla tej procedury. W przypadku myszy chwyć skórę u podstawy głowy i mocno przytrzymaj kark. Dzięki temu głowa ma minimalną możliwość poruszania się na boki. Upewnij się również, że ciało jest zawieszone w linii prostej od głowy do ogona; Każde skręcenie utrudni umieszczenie igły do zgłębnika w przełyku. Kończyny tylne muszą być również ustabilizowane, aby zapobiec rotacji ciała.

Aby powstrzymać szczura, chwyć go za ramiona za pomocą palca wskazującego i środkowego po obu stronach szyi. Zapobiegnie to obracaniu głowy szczura z boku na bok. Kciuk, trzeci i czwarty palec otaczają klatkę piersiową, aby zapobiec poruszaniu się zwierzęcia do przodu lub do tyłu.

Po prawidłowym unieruchomieniu zwierzęcia ustaw igłę tak, aby krzywizna była skierowana w dół i zgodna z naturalną krzywizną szyi. Następnie wprowadź igłę do ust z prawej lub lewej strony, przez diastemę oraz między siekaczami a zębami trzonowymi pod kątem w kierunku tylnej części gardła. Teraz, gdy igła jest umieszczona w jamie ustnej, użyj jej, aby odchylić głowę do tyłu, aż nos zostanie skierowany do góry. W tym momencie igła powinna łatwo wsunąć się do przełyku. Po umieszczeniu igły w żołądku, delikatnie zdeponuj związek. Następnie wyjmij igłę ze zwierzęcia, uważając, aby jej nie obracać. Ważne jest, aby NIE wciskać igły na siłę. Jeśli poczujesz opór, usuń go i spróbuj ponownie. W trakcie wykonywania zabiegu, jeśli zwierzę wykazuje oznaki sinicy lub niewydolności oddechowej lub jeśli z jego pyska wypływa roztwór, należy natychmiast usunąć igłę dozującą i wypuścić zwierzę do klatki.

Na koniec przyjrzyjmy się procedurom podawania miejscowego zwierzętom laboratoryjnym. Zacznij od znieczulenia zwierzęcia. Odbywa się to zwykle za pomocą szybko działającego środka wziewnego, który umożliwia szybką regenerację zwierząt. Aby uzyskać więcej informacji na temat podawania znieczulenia, zobacz inny film z tej kolekcji.

Następnie za pomocą maszynki do strzyżenia włosów usuń całą sierść z obszaru aplikacji. Aby uniknąć skaleczeń, przyłóż płaską powierzchnię maszynki do strzyżenia przy skórze i gol się w kierunku przeciwnym do kierunku wzrostu włosów. Następnie oczyść skórę wodą i osusz ją gazikiem. Teraz za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką nałóż substancję bezpośrednio na skórę. Aby uzyskać najlepsze rezultaty, nałóż kilka cienkich warstw maści lub kremu, zamiast jednorazowego nakładania grubej warstwy. Aby zapobiec przypadkowemu spożyciu miejscowo stosowanego związku z powodu pielęgnacji, umieść małą obrożę lub osłonę, aby zapobiec dotarciu zwierzęcia do dotkniętej części ciała. Ponadto, aby zapobiec przebywaniu w pomieszczeniach przez kolegów z klatki, zwierzęta powinny być trzymane indywidualnie.

Teraz, gdy już rozumiesz te alternatywne drogi podawania, zobaczmy, jak są one obecnie wykorzystywane w badaniach biomedycznych.

Jednym z ważnych zastosowań zgłębnika doustnego jest precyzyjne podawanie substancji w celu zbadania ich bezpośredniego wpływu na przewód pokarmowy. W tym przypadku naukowcy wykorzystali tę metodę do dostarczenia przekształconych drożdży probiotycznych bezpośrednio do żołądka zwierzęcia. A następnie przeprowadzili sekcję plastrów Peyera, które są zorganizowanymi guzkami limfatycznym z jelita cienkiego, aby zbadać przyleganie dostarczonego mikroorganizmu.

Nieinwazyjna droga doustna może być stosowana do naśladowania naturalnego sposobu infekcji przenoszonej przez żywność. W tym eksperymencie naukowiec opracował model doustnej transmisji Listeria monocytogenes u myszy poprzez spożycie skażonej żywności. Po zakażeniu naukowcy pobrali różne narządy, takie jak jelito cienkie, okrężnica, śledziona, wątroba i woreczek żółciowy, aby przeanalizować rozprzestrzenianie się infekcji na te tkanki.

Wreszcie, niektórzy badacze są zainteresowani badaniem mechanizmu, za pomocą którego promieniowanie UV może prowadzić do oparzeń słonecznych. W tym przypadku naukowcy wykorzystali drogę miejscową, aby zastosować substancję farmakologiczną, która indukuje produkcję melaniny naskórka - środka chroniącego przed promieniowaniem UV. Następnie zastosowali protokół, który jest podobny do badań na ludziach, aby zbadać działanie ochronne środka stosowanego miejscowo przeciwko rumieniowi wywołanemu promieniowaniem UV.

Właśnie obejrzałeś drugą część JoVE dotyczącą metod podawania związków związanych z dawkowaniem doustnym i miejscowym. Powinieneś teraz zrozumieć, w jaki sposób można doustnie dawkować zwierzęciu przy użyciu paszy lub wody i jak można wykonać bardziej precyzyjne, doustne podawanie przez zgłębnik. Na koniec należy zapoznać się z rozważaniami i metodą podawania miejscowego oraz zastosowaniami tych różnych technik. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Transcript

Wiele eksperymentów wymaga, aby związek był podawany zwierzęciu drogą doustną lub miejscową, tak aby metoda lepiej naśladowała naturalne przyjmowanie substancji doświadczalnej.

W przypadku dawkowania doustnego związek ten może być rozpuszczony w wodzie pitnej lub włączony do pokarmu spożywanego przez zwierzęta. Inną, bardziej precyzyjną metodą dawkowania doustnego jest zgłębnik doustny, w którym za pomocą dużej igły umieszcza się związek bezpośrednio w żołądku. Z drugiej strony, środek miejscowy może być umieszczony bezpośrednio na powierzchni skóry i zazwyczaj ma na celu oddziaływanie tylko na obszar, na który jest stosowany. Każda z tych strategii ma zalety i ograniczenia, które omówimy w tym filmie. Następnie pokażemy, jak wykonywać te techniki podawania związków u zwierząt laboratoryjnych i niektóre z ich zastosowań.

Zanim zagłębimy się w protokoły, przyjrzyjmy się rozważaniom, korzyściom i wadom tych technik. Doustne dawkowanie tabletek, kapsułek lub płynów jest najczęściej stosowaną metodą podawania leków u ludzi. Jednak tabletki i kapsułki są niepraktyczne dla gryzoni, więc powszechne dawkowanie doustne odbywa się poprzez rozpuszczenie związku w wodzie pitnej lub pożywieniu.

Podczas dozowania przez wodę pitną sacharoza jest często dodawana do wody w celu zwiększenia smakowitości. Powinien być jednak dobrze zbilansowany, aby zachęcać do normalnego spożywania wody i nie nadmiernego picia ze względu na słodki smak. Dobrą zasadą jest rozpoczęcie od 10% roztworu sacharozy, a następnie dostosowanie w zależności od spożycia. Innym sposobem doustnego dawkowania zwierzęcia jest specjalistyczna karma. Istnieje dostępna na rynku pasza, która zawiera powszechnie dozowane związki, takie jak fenbendazol. Firmy produkujące karmę dla gryzoni mogą również tworzyć specjalistyczne diety testowe, aby spełnić wymagania eksperymentalne.

Zaletą tej formy dawkowania doustnego jest to, że jest nieinwazyjny, podaje związek w sposób ciągły i naśladuje doustne podawanie leku przez człowieka. Brakuje jednak precyzji, ponieważ spożycie związku zależy od przyjęcia pokarmu lub wody, stabilności związku i liczby zwierząt obecnych w klatce. Jeśli dokładne dawkowanie nie jest kluczowe dla eksperymentu, ta nieinwazyjna metoda jest najlepsza dla dobrego samopoczucia zwierząt.

Do bardziej precyzyjnego podawania doustnego można użyć zgłębnika doustnego, który osadza związek bezpośrednio w żołądku o określonej porze i objętości. Jednak do wykonania tej techniki wymagane jest odpowiednie szkolenie, ponieważ może dojść do poważnych uszkodzeń zwierzęcia, jeśli nie jest ono odpowiednio unieruchomione.

Jeśli chodzi o środki do stosowania miejscowego, należą do nich kremy, balsamy, maści, spraye i żele. Zazwyczaj środki miejscowe mają na celu wpływanie tylko na obszar, na który są stosowane. Jednak mogą one również zostać wchłonięte do krwiobiegu, co może być zamierzone lub niezamierzone. Wchłanianie to zależy od: stanu skóry, użytej powierzchni, stężenia substancji, czasu kontaktu i rozpuszczalności lipidowej środka.

Teraz, gdy omówiliśmy tło metod podawania doustnego i miejscowego, poznajmy protokoły, zaczynając od podawania doustnego za pośrednictwem paszy lub wody.

W celu obliczenia dawkowania, najpierw należy znać zamierzoną dawkę, która ma być podawana. Po drugie, musisz określić masę ciała. Zamiast ważyć pojedyncze zwierzęta, do obliczeń można użyć średniej wagi szczepu myszy lub szczura, chyba że określono inaczej. Po trzecie, powinieneś zdawać sobie sprawę z liczby zwierząt w klatce, a po czwarte, musisz znać średnie dzienne spożycie wody lub pożywienia na klatkę.

Pamiętaj, że przygotowana żywność lub woda pitna z rozpuszczonym związkiem może wymagać częstszej wymiany niż standardowa żywność lub woda ze względu na niestabilność związku. Niektóre związki mogą być wrażliwe na światło lub mogą z czasem się wytrącać.

Teraz nauczmy się, jak doustnie podawać precyzyjne dawki, wykonując doustne zgłębnik u myszy i szczurów.

Pierwszym krokiem jest dobranie odpowiedniej igły do zabiegu. Są one wielokrotnego użytku wykonane ze stali nierdzewnej lub jednorazowe z elastycznym plastikowym trzonkiem i silikonową końcówką. W przypadku myszy odpowiednie są proste lub zakrzywione igły dozujące o średnicy 20-25 o długości 1,5 cala. W przypadku szczurów wybierz proste lub zakrzywione igły dozujące o rozmiarze 18-20 o długości 2-3 cali. Prawidłowy rozstaw igieł i wybór strzykawki zależy również od objętości i lepkości. Zapoznaj się z filmem Podawanie związków chemicznych I, aby zrozumieć wpływ tych czynników. Do dozowania gęstych płynów preferowana jest strzykawka typu Luer lock.

Po dokonaniu selekcji przymocować strzykawkę do igły w taki sposób, aby podziałki na cylindrze można było odczytać bez obracania igły. Jest to ważne, ponieważ po umieszczeniu igły w przełyku każde obroty mogą spowodować pęknięcie ściany przełyku, powodując śmierć zwierzęcia. Następnie napełnić strzykawkę odpowiednią objętością roztworu, który ma być podany.

Metodę tę należy zawsze wykonywać u zwierząt przytomnych z nienaruszonymi odruchami połykania, aby zapobiec przypadkowemu umieszczeniu w tchawicy. Stosowanie odpowiedniej techniki unieruchamiania ma kluczowe znaczenie dla tej procedury. W przypadku myszy chwyć skórę u podstawy głowy i mocno przytrzymaj kark. Dzięki temu głowa ma minimalną możliwość poruszania się na boki. Upewnij się również, że ciało jest zawieszone w linii prostej od głowy do ogona; Każde skręcenie utrudni umieszczenie igły do zgłębnika w przełyku. Kończyny tylne muszą być również ustabilizowane, aby zapobiec rotacji ciała.

Aby powstrzymać szczura, chwyć go za ramiona za pomocą palca wskazującego i środkowego po obu stronach szyi. Zapobiegnie to obracaniu głowy szczura z boku na bok. Kciuk, trzeci i czwarty palec otaczają klatkę piersiową, aby zapobiec poruszaniu się zwierzęcia do przodu lub do tyłu.

Po prawidłowym unieruchomieniu zwierzęcia ustaw igłę tak, aby krzywizna była skierowana w dół i zgodna z naturalną krzywizną szyi. Następnie wprowadź igłę do ust z prawej lub lewej strony, przez diastemę oraz między siekaczami a zębami trzonowymi pod kątem w kierunku tylnej części gardła. Teraz, gdy igła jest umieszczona w jamie ustnej, użyj jej, aby odchylić głowę do tyłu, aż nos zostanie skierowany do góry. W tym momencie igła powinna łatwo wsunąć się do przełyku. Po umieszczeniu igły w żołądku, delikatnie zdeponuj związek. Następnie wyjmij igłę ze zwierzęcia, uważając, aby jej nie obracać. Ważne jest, aby NIE wciskać igły na siłę. Jeśli poczujesz opór, usuń go i spróbuj ponownie. W trakcie wykonywania zabiegu, jeśli zwierzę wykazuje oznaki sinicy lub niewydolności oddechowej lub jeśli z jego pyska wypływa roztwór, należy natychmiast usunąć igłę dozującą i wypuścić zwierzę do klatki.

Na koniec przyjrzyjmy się procedurom podawania miejscowego zwierzętom laboratoryjnym. Zacznij od znieczulenia zwierzęcia. Odbywa się to zwykle za pomocą szybko działającego środka wziewnego, który umożliwia szybką regenerację zwierząt. Aby uzyskać więcej informacji na temat podawania znieczulenia, zobacz inny film z tej kolekcji.

Następnie za pomocą maszynki do strzyżenia włosów usuń całą sierść z obszaru aplikacji. Aby uniknąć skaleczeń, przyłóż płaską powierzchnię maszynki do strzyżenia przy skórze i gol się w kierunku przeciwnym do kierunku wzrostu włosów. Następnie oczyść skórę wodą i osusz ją gazikiem. Teraz za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką nałóż substancję bezpośrednio na skórę. Aby uzyskać najlepsze rezultaty, nałóż kilka cienkich warstw maści lub kremu, zamiast jednorazowego nakładania grubej warstwy. Aby zapobiec przypadkowemu spożyciu miejscowo stosowanego związku z powodu pielęgnacji, umieść małą obrożę lub osłonę, aby zapobiec dotarciu zwierzęcia do dotkniętej części ciała. Ponadto, aby zapobiec przebywaniu w pomieszczeniach przez kolegów z klatki, zwierzęta powinny być trzymane indywidualnie.

Teraz, gdy już rozumiesz te alternatywne drogi podawania, zobaczmy, jak są one obecnie wykorzystywane w badaniach biomedycznych.

Jednym z ważnych zastosowań zgłębnika doustnego jest precyzyjne podawanie substancji w celu zbadania ich bezpośredniego wpływu na przewód pokarmowy. W tym przypadku naukowcy wykorzystali tę metodę do dostarczenia przekształconych drożdży probiotycznych bezpośrednio do żołądka zwierzęcia. A następnie przeprowadzili sekcję plastrów Peyera, które są zorganizowanymi guzkami limfatycznym z jelita cienkiego, aby zbadać przyleganie dostarczonego mikroorganizmu.

Nieinwazyjna droga doustna może być stosowana do naśladowania naturalnego sposobu infekcji przenoszonej przez żywność. W tym eksperymencie naukowiec opracował model doustnego przenoszenia Listeria monocytogenes u myszy poprzez spożycie skażonej żywności. Po zakażeniu naukowcy pobrali różne narządy, takie jak jelito cienkie, okrężnica, śledziona, wątroba i woreczek żółciowy, aby przeanalizować rozprzestrzenianie się infekcji na te tkanki.

Wreszcie, niektórzy badacze są zainteresowani badaniem mechanizmu, za pomocą którego promieniowanie UV może prowadzić do oparzeń słonecznych. W tym przypadku naukowcy wykorzystali drogę miejscową, aby zastosować substancję farmakologiczną, która indukuje produkcję melaniny naskórka - środka chroniącego przed promieniowaniem UV. Następnie zastosowali protokół, który jest podobny do badań na ludziach, aby zbadać działanie ochronne środka stosowanego miejscowo przeciwko rumieniowi wywołanemu promieniowaniem UV.

Właśnie obejrzałeś drugą część JoVE dotyczącą metod podawania związków związanych z dawkowaniem doustnym i miejscowym. Powinieneś teraz zrozumieć, w jaki sposób można doustnie dawkować zwierzęciu przy użyciu paszy lub wody i jak można wykonać bardziej precyzyjne, doustne podawanie przez zgłębnik. Na koniec należy zapoznać się z rozważaniami i metodą podawania miejscowego oraz zastosowaniami tych różnych technik. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Explore More Videos

Podawanie związku Dawkowanie doustne Droga miejscowa Substancja eksperymentalna Woda pitna Wprowadzanie pokarmu Zgłębnik doustny Środek miejscowy Powierzchnia skóry Zalety Ograniczenia Zwierzęta laboratoryjne Aplikacje Tabletki Kapsułki Płyn Gryzonie Sacharoza

Related Videos

Techniki obchodzenia się z gryzoniami i ich krępowania

13:40

Techniki obchodzenia się z gryzoniami i ich krępowania

Lab Animal Research

190.6K Wyświetlenia

Podstawowe procedury pielęgnacyjne

14:44

Podstawowe procedury pielęgnacyjne

Lab Animal Research

30.2K Wyświetlenia

Podstawy hodowli i odsadzania

13:54

Podstawy hodowli i odsadzania

Lab Animal Research

38.1K Wyświetlenia

Identyfikacja gryzoni I

13:04

Identyfikacja gryzoni I

Lab Animal Research

59.4K Wyświetlenia

Identyfikacja gryzoni II

13:46

Identyfikacja gryzoni II

Lab Animal Research

27.8K Wyświetlenia

Podawanie związków I

15:06

Podawanie związków I

Lab Animal Research

109.5K Wyświetlenia

Podawanie związków III

12:34

Podawanie związków III

Lab Animal Research

34.4K Wyświetlenia

Podawanie związków IV

12:21

Podawanie związków IV

Lab Animal Research

56.8K Wyświetlenia

Pobranie krwi I

16:35

Pobranie krwi I

Lab Animal Research

187.8K Wyświetlenia

Pobranie krwi II

12:27

Pobranie krwi II

Lab Animal Research

80.8K Wyświetlenia

Indukcja i podtrzymanie znieczulenia

12:35

Indukcja i podtrzymanie znieczulenia

Lab Animal Research

54.8K Wyświetlenia

Rozważania dotyczące chirurgii gryzoni

10:12

Rozważania dotyczące chirurgii gryzoni

Lab Animal Research

24.0K Wyświetlenia

Diagnostyczna sekcja zwłok i pobieranie tkanek

18:52

Diagnostyczna sekcja zwłok i pobieranie tkanek

Lab Animal Research

62.8K Wyświetlenia

Pobieranie sterylnych tkanek

12:24

Pobieranie sterylnych tkanek

Lab Animal Research

36.4K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code