RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/2381-v
Maciej Kmieciak1, Amir Toor2, Laura Graham3, Harry D. Bear3, Masoud H. Manjili1
1Department of Microbiology & Immunology,Virginia Commonwealth University- Massey Cancer Center, 2Department of Internal Medicine,Virginia Commonwealth University- Massey Cancer Center, 3Department of Surgery,Virginia Commonwealth University- Massey Cancer Center
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Opisany jest skuteczny protokół ekspansji ex vivo komórek T reagujących na nowotwór z węzłów chłonnych drenujących guz lub innych wtórnych tkanek limfatycznych gospodarzy zawierających nowotwór. Protokół ten selektywnie rozszerza limfocyty T specyficzne dla nowotworu do stosowania w immunoterapii adoptywnej raka piersi.
Celem tego eksperymentu jest wywołanie aktywacji limfocytów T przez jeden jon mycyny statyny Brios, a także różnicowanie limfocytów T przez cytokiny łańcucha gamma, rozpoczynając się od izolacji uczulonych na nowotwór limfocytów T ze śledziony i węzłów chłonnych. Następnie aktywuj za pomocą brios statyny jeden i jon mycyny dwóch mimetyki sygnału wewnątrzkomórkowego, które zwiększają odpowiednio aktywność kinazy białkowej C i wewnątrzkomórkowego wapnia. Hodowla w obecności IL siedem IL 15 i IL dwa do różnicowania i ekspansji komórek T reagujących na nowotwór.
Potężne połączenie wyników interferonu gamma EISA i testu cytotoksyczności może rzucić światło na reaktywność guza ekspandowanych limfocytów T i zaoferować potencjalny wgląd w immunoterapię adoptywną. Ta metoda ekspansji exvivo limfocytów T reagujących na nowotwór może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w pytaniach immunologicznych nowotworów, takie jak rola powszechnych cytokin obrazowania gamma w różnicowaniu komórek T reagujących na nowotwór. I jaka jest rola każdego fenotypu limfocytów T, takich jak komórki efektorowe, komórki pamięci efektorowej i komórki pamięci centralnej w generowaniu odpowiedzi pamięci długotrwałej przeciwko rakowi.
Izolacja węzłów chłonnych i śledziony oraz septyczne obchodzenie się z limfocytami są procedurami trudnymi do wdrożenia, ale można się ich szybko nauczyć. Przez obserwację. Transgeniczne samice myszy FVBN 2 0 2 wykazywały ekspresję inaktywowanego nowego transgenu szczura pod regulacją promotora MMTV, w wyniku czego rozwinął się spontaniczny rak sutka między czwartym a 10 miesiącem życia.
W tym protokole te spontaniczne myszy z nowotworem są wykorzystywane jako dawcy komórek T reagujących na nowotwór. Aby rozpocząć izolowanie węzłów chłonnych i śledziony drenującej guz od myszy transgenicznych zawierających FVBN 2 0 2. Teraz przygotuj zawiesinę jednokomórkową w lodowatym RPMI 1640 uzupełnioną 10% FB sce Hodowla w ilości od 10 do sześciu komórek na mililitr w kompletnym pożywce zawierającej 15% FBS z jedną mikromolową cyną pięć nano molowych statyn brios jeden i 80 jednostek na mililitr.
IL dwa przez 16 godzin z naszą pożywką PMI w równowadze w temperaturze 37 stopni Celsjusza, umyj komórki trzy razy, a następnie hoduj w temperaturze od 10 do sześciu komórek na mililitr w kompletnym podłożu z 10 nanogramami na mililitr, każda z IL siedem i IL 15 przez 24 godziny. W celu dalszej aktywacji komórek wykonuj impuls z dodatkiem 40 jednostek na mililitr IL dwie przez 24 godziny. Teraz podziel komórki i hoduj je z 10 nanogramami na mililitr, każdy z IL siedem i IL 15 przez kolejne cztery dni, jeśli to konieczne, zmień pożywkę i dziel komórki co dwa dni.
Zbierz rozszerzone pierwotne limfocyty T przez odwirowanie, policz komórki za pomocą mikroskopii świetlnej i oblicz krotne zwiększenie limfocytów T. Teraz przygotuj komórki do cytometrii przepływowej, aby określić proporcję limfocytów T CD ośmiu dodatnich i CD czterech dodatnich. Najpierw blokuj niespecyficzne wiązanie przeciwciał z receptorami FC poprzez inkubację komórek z przeciwciałem anty CD 16, CD 32 przez 20 minut na lodzie.
Następnie umyj komórki dwukrotnie dwoma mililitrami lodowatego PBS uzupełnionego 1% azydkiem sodu, wybarwić komórki przez inkubację z przeciwciałami Fitz CD cztery i PE CD osiem przez 20 minut na lodzie. Przemyć dwukrotnie dwoma mililitrami lodowatego PBS uzupełnionego 1% FBS i 0,1% azydku sodu. Na koniec utrwal komórki za pomocą 1% aldehydu paraform i przeanalizuj próbki na Beckman Coulter FC 500 za pomocą oprogramowania Summit w wersji 4.3 w sześciodołkowych płytkach hodowlanych, pipetuj limfocyty T komórkami guza sutka w stosunku 10 do jednego efektora do celu i trzy mililitry na dołek.
Kompletna pożywka zawierająca 20 jednostek na mililitr IL dwie inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla przez 48 godzin. Wykonaj barwienie przeciwciał w trzech kolorach dla nowych, a następnie PE anty-US IgG i Xin five fite i jodku propidyny zgodnie z faktami bramki protokołu producenta na nowych dodatnich komórkach nowotworowych i przeanalizuj żywotność komórek nowotworowych za pomocą Xin pięć pi. Aktywacja limfocytów T za pomocą BI przez 16 godzin powoduje zabicie naiwnych limfocytów T, które nie są uwrażliwione na guz in vivo.
Po biselektywności limfocytów T reagujących na nowotwór, rozszerzają się one do 2,8 razy w ciągu sześciodniowej hodowli z cytokinami łańcucha gamma, zarówno limfocyty T CD 8-dodatnie, jak i CD 4-dodatnie są równomiernie rozszerzone cytokinami łańcucha gamma. Po sześciodniowej hodowli ex vivo, ekspandowane limfocyty T ex vivo wykazują wysoką reakcję na nowotwory, na które myszy dawcy były uwrażliwione, co oceniano na podstawie produkcji interferonu gamma. W obecności nowego dodatniego raka sutka myszy lub komórek nowotworowych MMC, ekspandowane limfocyty T ex vivo mogą indukować apoptozę w nowych dodatnich komórkach nowotworowych MMC, tak że żywotność komórek nowotworowych spada z 92% do 61% w ciągu 48 godzin.
Podejmując się tej procedury, należy pamiętać o pracy w warunkach aseptycznych. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wybierać i rozszerzać aktywne komórki T guza do adaptacyjnej terapii komórek T nowotworów.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
08:52
Related Videos
17.6K Views
07:18
Related Videos
15.7K Views
11:18
Related Videos
13.2K Views
05:00
Related Videos
1.4K Views
12:58
Related Videos
9.7K Views
11:15
Related Videos
8.2K Views
10:57
Related Videos
10.8K Views
11:11
Related Videos
11.3K Views
06:16
Related Videos
13.2K Views
11:51
Related Videos
9.6K Views