RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od zwoju korzenia grzbietowego lub tkanek DRG w podłożu bez surowicy. Tkanka DRG zawiera neurony czuciowe i satelitarne komórki glejowe osadzone w macierzy zewnątrzkomórkowej, ECM.
Wysiewaj je na szalce hodowlanej pokrytej galaretowatą mieszanką białek, aby zwiększyć przyczepność tkanek.
Z biegiem czasu komórki glejowe uwalniają neurotroficzne czynniki wzrostu, które umożliwiają rozszerzenie neuronów, tworząc hodowlę eksplantatów DRG.
Aby rozwinąć zdysocjowaną hodowlę komórkową, weź te eksplantaty DRG w probówce. Potraktuj je kolagenazą, aby zdegradować ECM, a następnie trypsyną, która zakłóca połączenia komórkowe, uwalniając neurony i komórki glejowe.
Dodaj pożywkę wzbogaconą serum, aby zatrzymać reakcję enzymatyczną.
Kilkakrotnie pipetować zawartość, aby utworzyć zawiesinę jednokomórkową i przefiltrować ją w celu usunięcia zanieczyszczeń.
Odwirować tę zawiesinę komórkową i usunąć supernatant zawierający enzym.
Ponownie zawiesić komórki w podłożu neurobazalnym i przenieść je na płytkę pokrytą lamininą.
Satelitarne komórki glejowe i neurony czuciowe przylegają do płytki pokrytej lamininą, tworząc zdysocjowaną hodowlę komórkową.
Przenieś każdy DRG na suchą, szklaną szalkę Petriego. Pod mikroskopem chirurgicznym oczyść i odetnij nadmiar włókien i tkanki łącznej nadal przyczepionych do DRG za pomocą ostrza. DRG jest łatwo rozpoznawalny jako wybrzuszona, przezroczysta struktura wzdłuż białego nerwu rdzeniowego, a naczynia krwionośne często znajdują się wokół DRG.
Następnie umieść oczyszczone z DRG na nowej szalce Petriego zawierającej lodowato zimne podłoże bez surowicy. Rozcieńczyć galaretowatą mieszaninę białek w lodowatym podłożu bez surowicy w stosunku 1 do 1. Następnie utrzyj DRG ex vivo na płytkach 12-dołkowych, wstępnie pokrytych 10 lub 20 mikrolitrami galaretowatej mieszanki białek i utrzymuj je w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 do 60 minut.
Teraz delikatnie dodaj 1,5 do 2 mililitrów pożywki bez surowicy do systemu hodowlanego, aby pokryć cały eksplant i utrzymać eksplantaty w warunkach hodowli. Zmieniaj pożywkę DRG co 72 godziny. i pozwól DRG rosnąć tak długo, jak to konieczne.
Jest to krytyczny krok, ponieważ DRG jest zakotwiczony w szklanej płytce za pomocą galaretowatej mieszanki białek. Dlatego czas polimeryzacji i umiejętności pipetowania mają kluczowe znaczenie, aby uniknąć unoszenia się na wodzie.
W tej procedurze umieść cały zebrany DRG w sterylnej probówce o pojemności 1,5 mililitra z pożywką F12 zawierającą kolagenazę IV i inkubuj ją w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 45 minut. Następnie zastąp świeżą pożywkę zawierającą kolagenazę IV i inkubuj próbkę przez kolejne 45 minut. Następnie potraktuj eksplantaty 2 mililitrami pożywki F12 zawierającej 0,025% trypsyny w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 minut.
Natychmiast po podaniu kolagenazy dożylnie inkubować je z 2 mililitrami pożywki F12 zawierającej płodową surowicę bydlęcą w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 15 minut. Następnie umyj eksplantaty trzykrotnie 2 mililitrami pożywki F12 i przystąp do mechanicznej dysocjacji za pomocą szklanej pipety, aż podłoże stanie się mętne.
Następnie przefiltruj zdysocjowaną kulturę komórkową przez filtr 0,22 mikrometra, aby usunąć wszelkie zanieczyszczenia i nadmiar tkanki łącznej. Następnie odwiruj przefiltrowany lizat komórkowy przez dwie minuty. Usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy w 500 mikrolitrach pożywki neuro-podstawowej. Umieść zdysocjowane komórki na szkiełkach pokrytych lamininą w preferowanej gęstości komórek.
Related Videos
07:51
Related Videos
10.2K Views
11:36
Related Videos
9.8K Views
08:57
Related Videos
2.4K Views
09:42
Related Videos
27K Views
04:25
Related Videos
682 Views
05:34
Related Videos
913 Views
02:11
Related Videos
482 Views
05:18
Related Videos
553 Views
09:17
Related Videos
21.8K Views
09:48
Related Videos
8.7K Views