RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od zestawu mikroskopu konfokalnego zawierającego nieruchomą, genetycznie zmodyfikowaną nogę Drosophila zamontowaną w przestrzeni między dwoma szkiełkami nakrywkowymi. Aksony neuronu ruchowego w nodze wyrażają znakowane błoną białko fluorescencyjne
.Użyj jednego lasera i dwóch detektorów, aby wychwycić sygnały fluorescencyjne z aksonów neuronów ruchowych i autofluorescencję tła naskórka, który jest najbardziej zewnętrzną warstwą nogi.
Dostosuj ustawienia obrazowania, aby uzyskać optymalną rozdzielczość i jakość obrazu.
Dostosuj jasność, aby zapewnić jasny sygnał aksonalny i nasyconą autofluorescencję naskórka.
Uchwyć obraz zarówno z sygnałem aksonalnym, jak i autofluorescencją naskórka.
Korzystając z odpowiedniego oprogramowania do przetwarzania obrazu, otwórz przechwycony obraz.
Podziel kanały i odejmij autofluorescencję naskórka tła od sygnału aksonalnego.
Dostosuj jasność i kontrast obu sygnałów, aby poprawić klarowność obrazu.
Połącz kanały, aby wygenerować scalony obraz w celu wizualizacji aksonów neuronów ruchowych w segmencie nogi.
Aby zobrazować nogi, użyj lasera o długości fali 488 nm i dwóch detektorów jednocześnie, aby ustawić pierwszą ścieżkę do uzyskania zarówno GFP, jak i autofluorescencji naskórka. Wybierz obiektyw zanurzający się w oleju od 20 do 25x i ustaw rozdzielczość na 1024 na 1024 piksele z 12-bitową głębią. I ustaw odstęp z na 1 mikrometr. Załaduj szkiełko na stolik mikroskopu.
Używając tej samej mocy lasera dla obu detektorów, dostosuj wzmocnienie pierwszego detektora, aby uzyskać jasny sygnał GFP. I dostosuj drugi detektor, aby upewnić się, że niektóre obszary o wysokim sygnale naskórka wytwarzają nasycony sygnał w tym detektorze. Następnie zobrazuj ramiona, używając opcji kafelka lub pozycji, aby uchwycić całe ramię, jeśli ramię jest wysunięte lub zbyt duże, aby można je było sobrazować w jednej klatce.
Aby przetworzyć obraz, otwórz stos konfokalny w ImageJ Fiji. I użyj wtyczki formats, aby otworzyć wszystkie obrazy, które nie są w formacie TIFF. Aby podzielić kanały, wybierz opcję Obraz, Kolor i Podziel kanały. Aby odjąć sygnał naskórka od sygnału GFP, otwórz Kalkulator procesów i obrazów i wybierz stos z detektora pierwszego jako Obraz1.
W oknie operacji wybierz Odejmij i wybierz ścieżkę z Detektora 2 jako Obraz2, tak aby został uzyskany tylko endogenny sygnał GFP. Użyj Image, Stacks, Z Protect, aby wygenerować projekcję maksymalnej intensywności dla endogennego sygnału GFP. Użyj elementów sterujących w oknie sterowania jasnością, aby dostosować jasność i kontrast.
Related Videos
10:13
Related Videos
20.5K Views
08:23
Related Videos
6.6K Views
06:35
Related Videos
9.7K Views
10:10
Related Videos
16.1K Views
10:53
Related Videos
11.4K Views
05:58
Related Videos
9.9K Views
17:51
Related Videos
15.1K Views
04:09
Related Videos
2.8K Views
04:11
Related Videos
430 Views
11:56
Related Videos
8.2K Views