RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od ustawienia światła wzbudzającego dla mikroskopu dwufotonowego.
Weźmy znieczulone transgeniczne szczenię myszy z okrągłym szklanym okienkiem do obrazowania i płytką głowy wszczepioną w czaszkę.
Neurony wyrażają białka czerwonej fluorescencji, aby ułatwić obrazowanie.
Wyczyść szklane okienko do obrazowania i przymocuj szczenię do stolika obrazowania dwufotonowego.
Dopasuj okienko obrazowania do obiektywu mikroskopu, regulując głowę szczeniaka.
Użyj poduszki grzewczej, aby utrzymać temperaturę ciała szczeniaka.
Dostosuj natężenie przepływu środka znieczulającego.
Nałóż kroplę wody na szkiełko nakrywkowe, a następnie opuść soczewkę obiektywu mikroskopu.
Mikroskopia dwufotonowa wykorzystuje dwa fotony światła do aktywacji białek fluorescencyjnych, umożliwiając szczegółowe obrazowanie neuronów przy minimalnym szumie tła i fotowybielaniu.
Uchwyć obrazy neuronów na różnych głębokościach, aby zobrazować ich strukturę
Na koniec ułóż obrazy, aby wygenerować trójwymiarową reprezentację neuronu, w tym ich projekcje neuronalne, aby zbadać zmiany morfologiczne związane ze wzrostem.
Aby rozpocząć obrazowanie, najpierw ustaw dwufotonową długość fali lasera. Do wzbudzenia RFP użyj długości fali 1,000 nanometrów. Przetrzyj powierzchnię szkiełka nakrywkowego 70% etanolem. Przymocuj znieczulone szczenię do tytanowej płytki na stoliku do obrazowania za pomocą tytanowego pręta. Użyj stolika goniometru, aby wyregulować głowicę tak, aby szkiełko nakrywkowe było równoległe do soczewki obiektywu.
Utrzymuj temperaturę ciała szczeniaka podczas obrazowania, używając poduszki grzewczej ustawionej na 37 stopni Celsjusza i zmniejsz stężenie izofluranu do 0,7% do 1%. Umieść stolik obrazowania pod soczewką obiektywu 20X mikroskopu dwufotonowego. Nałóż jedną kroplę wody na szkiełko nakrywkowe.
Ustaw oprogramowanie tak, aby pobierało obrazy stosu z w odstępach 1,4 mikrona. W przypadku obrazowania neuronów warstwy czwartej ustaw szerokość z w zakresie od 150 do 300 mikronów, aby zobrazować całą morfologię dendrytyczną. Użyj powolnego skanowania i uśredniania, aby uzyskać wyraźne obrazy pokazujące morfologię neuronów.
Uzyskanie całej morfologii dendrytycznej zajmuje zwykle więcej niż 20 minut.
Related Videos
08:17
Related Videos
8.3K Views
09:03
Related Videos
5.2K Views
10:03
Related Videos
14.4K Views
03:13
Related Videos
657 Views
02:36
Related Videos
549 Views
02:58
Related Videos
743 Views
11:24
Related Videos
14.1K Views
09:53
Related Videos
18.8K Views
16:45
Related Videos
12K Views
06:24
Related Videos
12.7K Views