Mikroskopia dwufotonowa do obrazowania morfologii neuronów u szczeniaka myszy

0 wyświetleń2:52 min • May 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od ustawienia światła wzbudzającego dla mikroskopu dwufotonowego.

Weźmy znieczulone transgeniczne szczenię myszy z okrągłym szklanym okienkiem do obrazowania i płytką głowy wszczepioną w czaszkę.

Neurony wyrażają białka czerwonej fluorescencji, aby ułatwić obrazowanie.

Wyczyść szklane okienko do obrazowania i przymocuj szczenię do stolika obrazowania dwufotonowego.

Dopasuj okienko obrazowania do obiektywu mikroskopu, regulując głowę szczeniaka.

Użyj poduszki grzewczej, aby utrzymać temperaturę ciała szczeniaka.

Dostosuj natężenie przepływu środka znieczulającego.

Nałóż kroplę wody na szkiełko nakrywkowe, a następnie opuść soczewkę obiektywu mikroskopu.

Mikroskopia dwufotonowa wykorzystuje dwa fotony światła do aktywacji białek fluorescencyjnych, umożliwiając szczegółowe obrazowanie neuronów przy minimalnym szumie tła i fotowybielaniu.

Uchwyć obrazy neuronów na różnych głębokościach, aby zobrazować ich strukturę

Na koniec ułóż obrazy, aby wygenerować trójwymiarową reprezentację neuronu, w tym ich projekcje neuronalne, aby zbadać zmiany morfologiczne związane ze wzrostem.

Aby rozpocząć obrazowanie, najpierw ustaw dwufotonową długość fali lasera. Do wzbudzenia RFP użyj długości fali 1,000 nanometrów. Przetrzyj powierzchnię szkiełka nakrywkowego 70% etanolem. Przymocuj znieczulone szczenię do tytanowej płytki na stoliku do obrazowania za pomocą tytanowego pręta. Użyj stolika goniometru, aby wyregulować głowicę tak, aby szkiełko nakrywkowe było równoległe do soczewki obiektywu.

Utrzymuj temperaturę ciała szczeniaka podczas obrazowania, używając poduszki grzewczej ustawionej na 37 stopni Celsjusza i zmniejsz stężenie izofluranu do 0,7% do 1%. Umieść stolik obrazowania pod soczewką obiektywu 20X mikroskopu dwufotonowego. Nałóż jedną kroplę wody na szkiełko nakrywkowe.

Ustaw oprogramowanie tak, aby pobierało obrazy stosu z w odstępach 1,4 mikrona. W przypadku obrazowania neuronów warstwy czwartej ustaw szerokość z w zakresie od 150 do 300 mikronów, aby zobrazować całą morfologię dendrytyczną. Użyj powolnego skanowania i uśredniania, aby uzyskać wyraźne obrazy pokazujące morfologię neuronów.

Uzyskanie całej morfologii dendrytycznej zajmuje zwykle więcej niż 20 minut.

08:17

Precyzyjne mapowanie mózgu w celu wykonywania powtarzalnych obrazowań in vivo dynamiki neuroimmunologicznej u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Przezźrenicowe dwufotonowe obrazowanie in vivo siatkówki myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:03

Mikroskopia wielofotonowa oczyszczonego mózgu mysiego z ekspresją YFP

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:13

Jednoczesne obrazowanie dynamiki mikrogleju i aktywności neuronalnej u wybudzonej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:36

Podłużne obrazowanie dwufotonowe znakowanych fluorescencyjnie neuronów w żywym hipokampie myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:49

Tomografia optyczna całych mózgów myszy z rozdzielczością mikronową z konfokalną mikroskopią arkuszową światła

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:53

Dwufotonowe obrazowanie in vivo kolców dendrytycznych w korze myszy przy użyciu preparatu z rozrzedzoną czaszką

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:45

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:24

In vivo (in vivo) Dwufotonowe obrazowanie neuronów korowych u nowonarodzonych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:34

Podłużne obrazowanie dwufotonowe grzbietowego hipokampa CA1 u żywych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026