-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Przygotowanie rusztowań fibrynowych 3D do zastosowań w hodowlach komórek macierzystych
Przygotowanie rusztowań fibrynowych 3D do zastosowań w hodowlach komórek macierzystych
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
Preparation of 3D Fibrin Scaffolds for Stem Cell Culture Applications

Przygotowanie rusztowań fibrynowych 3D do zastosowań w hodowlach komórek macierzystych

Full Text
25,775 Views
07:04 min
March 2, 2012

DOI: 10.3791/3641-v

Kathleen Kolehmainen1, Stephanie M. Willerth2

1Department of Biology,University of Victoria , 2Department of Mechanical Engineering, Division of Medical Sciences,University of Victoria

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ta praca szczegółowo opisuje przygotowanie rusztowań 3D fibrynowych do hodowli i różnicowania plutipotencjalnych komórek macierzystych. Takie rusztowania mogą być używane do badań przesiewowych wpływu różnych związków biologicznych na zachowanie komórek macierzystych, a także modyfikowane tak, aby zawierały systemy dostarczania leków.

Ogólnym celem tej procedury jest przygotowanie rusztowań 3D fibrynowych do hodowli i różnicowania pluripotencjalnych komórek macierzystych, w tym embrionalnych i indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych. Osiąga się to poprzez najpierw przygotowanie roztworów fibrynogenu i dializowanie ich przez noc w celu usunięcia cząsteczek hamujących polimeryzację. Drugim etapem procedury jest polimeryzacja dolnej warstwy bazowej fibryny w każdym dołku 24-dołkowej płytki do hodowli tkankowej.

Trzecim krokiem procedury jest wysiew. Pojedynczy korpus zarodka jest pozyskiwany z pluripotencjalnych komórek macierzystych na podstawową warstwę rusztowania, a następnie dodawana jest druga warstwa fibryny w celu całkowitej enkapsulacji. Ostatnim etapem zabiegu jest dodanie odpowiednich pożywek do hodowli komórkowych do rusztowań.

W zależności od zastosowania, ostatecznie można uzyskać wyniki, które pokazują, że ciała zarodkowe pochodzące z pluripotencjalnych komórek macierzystych mogą być z powodzeniem hodowane w 3D fibrynie, rusztowaniach na bazie biomateriału. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z tradycyjnymi metodami hodowli komórkowych 2D jest to, że można obserwować i manipulować zachowaniem komórek macierzystych w trzech wymiarach. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące biologii komórek macierzystych poprzez badanie przesiewowe czynników, takich jak związki chemiczne i czynniki wzrostu, które wpływają na zachowanie komórek macierzystych W mikrośrodowisku 3D fibrynogen jest białkiem pochodzącym z krwi, dlatego przed użyciem należy ukończyć odpowiednie szkolenie w zakresie bezpieczeństwa.

Na początek wyjmij liofilizowany fibrynogen z lodówki i pozostaw go na 20 minut, aby osiągnął temperaturę pokojową, dodaj trzy mililitry soli fizjologicznej buforowanej tris do każdej 35-milimetrowej szalki Petriego. Odważ około 100 do 130 miligramów fibrynogenu i rozsyp go na powierzchni TBS w każdym naczyniu. Odczekaj pięć minut, aż fibrynogen zacznie przechodzić do roztworu.

Następnie przykryj szalkę Petriego pokrywką. Inkubować szalki Petriego w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez dwie godziny, aby fibrynogen mógł w pełni przejść do roztworu. Następnie mokry przewód do dializy z TBS Złóż dolny koniec rurki i zaciśnij koniec za pomocą zacisków do dializy, a następnie pipetuj roztwór fibrynogenu z naczyń do rurki do dializy.

Następnie złóż górny koniec i zamknij zacisk za pomocą zacisku do dializy. Umieścić rurkę dializacyjną zawierającą roztwór fibrynogenu w czterolitrowym pojemniku TBS. Wymieszać roztwór.

Używając płytki mieszającej ustawionej na niską prędkość, dializuj roztwór przez noc na płytce przez co najmniej 12 godzin. W tym czasie roztwór T Bs nie musi być zmieniany pod sterylnym kapturem do hodowli tkankowych. Usunąć roztwór fibrynogenu z rurki dializacyjnej i umieścić go w stożkowej rurce.

Przefiltruj roztwór fibrynogenu za pomocą pięciomikronowego filtra strzykawkowego, aby usunąć duże zanieczyszczenia z roztworu. Następnie użyj filtra punktowego 22 mikronów do przefiltrowania, wysterylizuj roztwór fibrynogenu w stożkowej probówce o pojemności 50 mililitrów. Po określeniu całkowitej objętości zmierz absorbancję roztworu fibrynogenu przy 280 nanometrach, często konieczny jest współczynnik rozcieńczenia 50, aby uzyskać absorbancję poniżej jednego.

Obliczyć stężenie białka obecnego w roztworze fibrynogenu, stosując następujące równanie, w którym stężenie fibrynogenu w miligramach na mililitr jest równe dwóm 80-krotnym współczynnikom rozcieńczenia podzielonym przez 1,55, gdzie 1,55 jest współczynnikiem ekstynkcji przy dwóch 80 dla ludzkiego fibrynogenu. Następnie oblicz ilość TBS potrzebną do rozcieńczenia stężenia roztworu do 11,1 miligrama na mililitr fibrynogenu w oparciu o początkową objętość. Końcowe stężenie białka w rusztowaniach fibrynowych wyniesie 10 miligramów na mililitr.

Po polimeryzacji dodać 15 mikrolitrów roztworu trombiny o stężeniu 40 jednostek na mililitr po prawej stronie każdej studzienki w pierwszym rzędzie płytki 24-dołkowej, a następnie dodać 15 mikrolitrów 50-milimolowego roztworu chlorku wapnia po lewej stronie każdej z nich. Na koniec dodaj 270 mikrolitrów roztworu fibrynogenu na płytkę. Potrząśnij płytką z boku na bok i z tyłu do przodu, aby wymieszać roztwory.

Pozwól rządowi zawierającemu mieszaniny polimeryzować przez pięć minut W temperaturze pokojowej rusztowania stają się bardziej nieprzezroczyste w miarę polimeryzacji, kontynuując tworzenie rzędów spolimeryzowanego fibrynogenu pojedynczo, aż do uzyskania pożądanej liczby rusztowań fibrynowych. Po ostatniej pięciominutowej inkubacji inkubuj płytki w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez godzinę, aby całkowicie spolimeryzować rusztowania. Po zakończeniu jednogodzinnej inkubacji.

Zasiej rusztowanie za pomocą pipety o pojemności 20 mikrolitrów, aby wybrać indywidualne ciało zarodka i umieścić je w środku rusztowania fibrynowego. Sprawdź pod mikroskopem, czy każda studzienka zawiera pojedynczy korpus zarodka. Dodaj pięć mikrolitrów roztworu trombiny i pięć mikrolitrów 50-milimolowego roztworu chlorku wapnia na wierzch każdego ciała zarodka, a następnie 90 mikrolitrów roztworu fibrynogenu do każdej studzienki, roztwór powinien utworzyć bańkę otaczającą ciało zarodka.

Inkubować płytkę przez dodatkową godzinę w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby zapewnić polimeryzację po inkubacji, dodać jeden mililitr odpowiedniej pożywki do hodowli komórkowej do każdej studzienki i umieścić płytkę z powrotem w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza. W tym miejscu pokazano reprezentatywne obrazy indukowanych przez myszy pluripotencjalnych komórek macierzystych hodowanych na warstwach żywiących mysie embrionalne fibroblasty. Stosując ośmiodniowy protokół leczenia kwasem retinowym, komórki są indukowane do tworzenia ciał zarodkowych, agregatów komórek zawierających progenitory nerwowe, jak pokazano tutaj.

Rysunek ten przedstawia wygląd ciała zarodka pochodzącego z IPS po trzech dniach hodowli w rusztowaniach fibrynowych 3D. Podobne wyniki uzyskano wcześniej przy użyciu embrionalnych komórek macierzystych myszy. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak umieszczać ciała zarodków w rusztowaniach fibrynowych 3D za pomocą tego dwudniowego procesu.

Nie zapominaj, że praca z fibrynogenem może być niezwykle niebezpieczna i podczas wykonywania tej procedury należy podjąć odpowiednie środki ostrożności, w tym noszenie środków ochrony osobistej i odpowiednią utylizację odpadów.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Rusztowania fibrynowe 3D zastosowania hodowli komórek macierzystych komórki macierzyste mikrośrodowiska 3D nisza komórek macierzystych rusztowania biomateriałowe polistyren tkanki zastępcze polaryzacja komórek tkanki miękkie biomateriały pochodzenia naturalnego biomateriały syntetyczne właściwości mechaniczne właściwości chemiczne odtwarzalność biomateriały naturalne macierz zewnątrzkomórkowa adhezja komórek rusztowania fibrynowe

Related Videos

Obróbka poprodukcyjna włókien elektroprzędzonych dla inżynierii tkankowej

15:52

Obróbka poprodukcyjna włókien elektroprzędzonych dla inżynierii tkankowej

Related Videos

18.5K Views

Inżynieria konstruktów tkankowych na bazie fibryny z miofibroblastów oraz zastosowanie ograniczeń i szczepów do indukowania reorganizacji komórek i kolagenu

12:13

Inżynieria konstruktów tkankowych na bazie fibryny z miofibroblastów oraz zastosowanie ograniczeń i szczepów do indukowania reorganizacji komórek i kolagenu

Related Videos

11.2K Views

Inżynieria tkankowa: budowa wielokomórkowego rusztowania 3D do dostarczania warstwowych arkuszy komórkowych

09:24

Inżynieria tkankowa: budowa wielokomórkowego rusztowania 3D do dostarczania warstwowych arkuszy komórkowych

Related Videos

14.9K Views

Dostosowanie procesu elektroprzędzenia w celu zapewnienia trzech unikalnych środowisk dla trójwarstwowego modelu ściany dróg oddechowych in vitro

11:26

Dostosowanie procesu elektroprzędzenia w celu zapewnienia trzech unikalnych środowisk dla trójwarstwowego modelu ściany dróg oddechowych in vitro

Related Videos

12.8K Views

Wytwarzanie pianek i mikronośników pochodzących z macierzy zewnątrzkomórkowej jako specyficznych tkankowo platform do hodowli i dostarczania komórek

11:19

Wytwarzanie pianek i mikronośników pochodzących z macierzy zewnątrzkomórkowej jako specyficznych tkankowo platform do hodowli i dostarczania komórek

Related Videos

13.8K Views

Rusztowania drukarskie rdzeniowe / skorupowe do inżynierii tkankowej struktur rurowych

05:52

Rusztowania drukarskie rdzeniowe / skorupowe do inżynierii tkankowej struktur rurowych

Related Videos

9.8K Views

System matrycowy 3D pochodzący z fibroblastów mający zastosowanie do oznaczania tworzenia rurki śródbłonka

07:21

System matrycowy 3D pochodzący z fibroblastów mający zastosowanie do oznaczania tworzenia rurki śródbłonka

Related Videos

7.8K Views

Bioreaktor z wieloma wskazówkami do oceny zdolności zapalnej i regeneracyjnej biomateriałów poddanych przepływowi i rozciąganiu

07:51

Bioreaktor z wieloma wskazówkami do oceny zdolności zapalnej i regeneracyjnej biomateriałów poddanych przepływowi i rozciąganiu

Related Videos

6K Views

Stopniowe wysiewanie komórek na mozaikowych rusztowaniach w celu zbadania kiełkujących naczyń krwionośnych

07:49

Stopniowe wysiewanie komórek na mozaikowych rusztowaniach w celu zbadania kiełkujących naczyń krwionośnych

Related Videos

3.8K Views

Przedkliniczne testy leków w skalowalnych tkankach mięśniowych modyfikowanych w 3D

08:07

Przedkliniczne testy leków w skalowalnych tkankach mięśniowych modyfikowanych w 3D

Related Videos

4.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code